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    重組酵母產(chǎn)人IFN-α2a與LL-37融合蛋白的工藝優(yōu)化

    2014-03-21 11:47:32張明杰
    生物技術(shù)通報(bào) 2014年11期
    關(guān)鍵詞:發(fā)酵液抗菌條件

    張明杰

    (廣東紫金正天藥業(yè)有限公司,河源 517000)

    重組酵母產(chǎn)人IFN-α2a與LL-37融合蛋白的工藝優(yōu)化

    張明杰

    (廣東紫金正天藥業(yè)有限公司,河源 517000)

    通過(guò)單因素試驗(yàn)探索重組酵母P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳條件。結(jié)果顯示,重組酵母菌產(chǎn)蛋白酶的最佳表達(dá)條件是利用BMMY為誘導(dǎo)培養(yǎng)基,以接種量OD600=5.5、溫度26℃、pH6.0、誘導(dǎo)劑(甲醇)為每隔24 h添加1.0%、振蕩速度為200 r/min條件下連續(xù)誘導(dǎo)144 h。在最佳培養(yǎng)條件下,發(fā)酵液中的LL-37最高抗菌活性達(dá)27.9 mm。與初始的發(fā)酵條件相比,人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的產(chǎn)量提高了32.29%。

    干擾素α2a LL-37 工藝

    英國(guó)科學(xué)家Isaacs和Lindenmann于1957年發(fā)現(xiàn)一種能干擾病毒感染的細(xì)胞因子,命名為干擾素[1]。隨著人類(lèi)研究的深入,不斷發(fā)現(xiàn)了許多新的干擾素分子。目前,人類(lèi)在哺乳動(dòng)物中發(fā)現(xiàn)的干擾素共有10個(gè)家族,其中人干擾素有7個(gè)家族。按其功能和作用方式,可將人干擾素細(xì)分為I型、II型和III型。I型包括α、β、ε、τ、ω、κ,具有抗病毒和抗腫瘤的功能;II 型包括γ,具有調(diào)節(jié)免疫的功能[2];III型為干擾素樣蛋白,功能與I型類(lèi)似,但受體不同[3]。人IFN-α2a是由165個(gè)氨基酸殘基構(gòu)成,具有防治病毒性疾病[4]和惡性腫瘤[5]的功能。LL-37是目前在人體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的抗菌肽Cathelicedin家族中唯一的成員,對(duì)革蘭氏陽(yáng)性菌和陰性菌均具有較廣譜的抗性[6]。除此之外,LL-37還具有免疫調(diào)節(jié)作用,可趨化單核細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞、中性粒細(xì)胞和肥大細(xì)胞等[7]。當(dāng)人體受到病原微生物、炎癥或創(chuàng)傷刺激,LL-37的表達(dá)水平就會(huì)上升[8]。動(dòng)物試驗(yàn)表明,LL-37可明顯降低銅綠假單胞菌感染小鼠的死亡率[2]。

    將人LL-37基因與IFN-α2a融合表達(dá),形成同時(shí)具有抗病毒、抗腫瘤和抗菌的三重功效的新功能蛋白,在一些特殊的臨床治療中存在潛在的市場(chǎng)需求。本課題組前期的工作實(shí)現(xiàn)了在畢赤酵母(Pichia pastoris)GS115表達(dá)三功能的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白。在進(jìn)入工業(yè)化生產(chǎn)之前,有必要建立所構(gòu)建的基因工程菌工藝條件,并對(duì)產(chǎn)品的應(yīng)用

    性能進(jìn)行驗(yàn)證。本研究通過(guò)單因素試驗(yàn)旨在探索重組酵母P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳條件。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試驗(yàn)菌株 P. pastoris GS115LI,表達(dá)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白。大腸桿菌(Escherichia coli)ATCC 25922,用于檢測(cè)融合蛋白的抗菌活性。

    1.1.2 培養(yǎng)基

    1.1.2.1 YPD培養(yǎng)基 酵母提取物10 g/L,蛋白胨20 g/L,葡萄糖20 g/L,121℃滅菌30 min。

    1.1.2.2 BMGY培養(yǎng)基 見(jiàn)參考文獻(xiàn)[10]。

    1.1.2.3 BMMY培養(yǎng)基 同BMGY培養(yǎng)基,僅將其中的甘油10 mL換為甲醇5 mL。

    1.1.2.4 初始培養(yǎng)基 種子培養(yǎng):保藏的菌種先經(jīng)YPD活化,后將入BMGY培養(yǎng)基,接種量2%,后振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)條件:溫度28℃,轉(zhuǎn)速200 r/min,培養(yǎng)時(shí)間24 h。

    誘導(dǎo)培養(yǎng):種子培養(yǎng)液離心去培養(yǎng)液,后接種入BMMY培養(yǎng)液,使酵母OD600值達(dá)6.0,在溫度28℃與轉(zhuǎn)速150 r/min下振蕩培養(yǎng),每24 h補(bǔ)充甲醇0.5%(體積比)誘導(dǎo)表達(dá)[11],重復(fù)誘導(dǎo)5次。

    1.2 方法

    1.2.1 單因素發(fā)酵試驗(yàn)

    1.2.1.1 誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 按出發(fā)條件進(jìn)行誘導(dǎo),誘導(dǎo)過(guò)程中每12 h取樣分析發(fā)酵液抗菌活性,直至檢測(cè)的抗菌活性不再上升。

    1.2.1.2 接種量對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 按前述確定的最佳誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng),分別調(diào)節(jié)接種量以O(shè)D600計(jì)為3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5和7.0,其它條件不變。誘導(dǎo)完成后取發(fā)酵液分析抗菌活性。

    1.2.1.3 溫度對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 在出發(fā)條件的基礎(chǔ)上,按前述確定的最佳誘導(dǎo)時(shí)間與接種量,改變誘導(dǎo)溫度,分別置于24℃、26℃、28℃、30℃和32℃下振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)完后取樣檢測(cè)產(chǎn)物的抗菌活性。

    1.2.1.4 溶氧對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 通過(guò)改變搖床的轉(zhuǎn)速探索溶氧對(duì)重組P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響。分別選擇搖床轉(zhuǎn)速為120、160、240和280 r/min進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),其它條件參照前述選擇的最佳條件。誘導(dǎo)結(jié)束后取發(fā)酵液分析抗菌活性。

    1.2.1.5 誘導(dǎo)劑(甲醇)添加量對(duì)P. pastoris GS115-LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 通過(guò)改變誘導(dǎo)劑甲醇的添加量分別對(duì)體積比為0.6%、0.8%、1.0%、1.2%、1.4%和1.6%的菌株進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)。其它誘導(dǎo)條件為前述所確定的最佳條件。誘導(dǎo)結(jié)束后取發(fā)酵液分析抗菌活性。

    1.2.1.6 pH對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響 為了探索pH對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響,分別選擇pH為5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5和8.0進(jìn)行試驗(yàn)。其它發(fā)酵條件為前述優(yōu)化的最佳條件。誘導(dǎo)結(jié)束后取發(fā)酵液分析抗菌活性。

    1.2.2 驗(yàn)證試驗(yàn) 在上述確定的最適培養(yǎng)和誘導(dǎo)表達(dá)條件下,重復(fù)試驗(yàn)3次,進(jìn)行驗(yàn)證。

    1.2.3 發(fā)酵液中人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的抗菌活性分析 培養(yǎng)液中LL-37的活性測(cè)定參照文獻(xiàn)[5]。用E. coli ATCC 25922作為檢測(cè)菌種,用雙層瓊脂糖打孔法測(cè)定。底層培養(yǎng)基上打直徑3 mm的圓孔,每孔加10 μL發(fā)酵液,37℃孵化3 h后,在底層上覆蓋一層營(yíng)養(yǎng)瓊脂,37℃繼續(xù)培養(yǎng)20 h,測(cè)量無(wú)菌生長(zhǎng)的透明圈直徑。

    2 結(jié)果

    2.1 誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)的影響

    誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結(jié)果(圖1)顯示,誘導(dǎo)開(kāi)始后的前24 h,發(fā)酵液中檢測(cè)出的以抗菌活性表示的融合蛋白產(chǎn)量上升較慢,這可能與菌體本身處于環(huán)境適應(yīng)期的延遲期有關(guān);而后產(chǎn)量呈直線上升,至第132 h,此后產(chǎn)量緩慢上升,至144 h達(dá)到最大值25.3 mm;此后24 h的誘導(dǎo)期內(nèi),融合蛋白產(chǎn)量出現(xiàn)輕微下降,可能是由于宿主老化后,產(chǎn)品有所降解引起。根據(jù)以上試驗(yàn)結(jié)果,確定144 h為最佳誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)。

    圖1 誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響

    2.2 接種量的影響

    接種量對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結(jié)果(圖2)顯示,隨著接種量自O(shè)D600=3.5上升,在其它條件不變的情況下,發(fā)酵液中以LL-37抗菌活性表示的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白逐漸上升,至接種量達(dá)到OD600=5.5后,達(dá)到最大值約26.0 mm;之后,呈現(xiàn)逐漸下降的趨勢(shì)。這表明,當(dāng)OD600<5.5,發(fā)酵液中的酵母濃度太少,導(dǎo)致表達(dá)能力低。在OD600=5.5時(shí)達(dá)到飽和。之后再升高酵母濃度,可能由于營(yíng)養(yǎng)或溶氧供應(yīng)受限,從而導(dǎo)致產(chǎn)物的合成能力不升反降。在此,選擇接種量為OD600≈5.5作為最佳的接種條件。

    圖2 接種量對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響

    2.3 溫度的影響

    溫度對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結(jié)果(圖3)顯示,在溫度為26℃時(shí),以抗菌活性表示的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白產(chǎn)量最高,可達(dá)26.5 mm以上。溫度低于26℃,產(chǎn)量會(huì)有所下降,可能與低溫下酵母代謝活性受影響有關(guān)。溫度高于26℃,產(chǎn)量也出現(xiàn)下降,可能與在溫度高時(shí),酵母自身代謝加快后,衰老同樣加快的原因。綜合上述情況,選擇26℃作為誘導(dǎo)時(shí)的最佳溫度條件。

    圖3 溫度對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響

    2.4 溶氧的影響

    在搖瓶階段,溶氧難以直接測(cè)定,故只能采用以搖床振蕩轉(zhuǎn)速為依據(jù)來(lái)進(jìn)行探索。溶氧對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結(jié)果(圖4)顯示,在振蕩轉(zhuǎn)速低于200 r/min時(shí),由于溶氧處于受限狀態(tài),故以抗菌活性表示的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白產(chǎn)量較低。振蕩轉(zhuǎn)速高于200 r/min后,產(chǎn)量不再繼續(xù)上升,表明此階段溶氧已經(jīng)到達(dá)飽和。綜合考慮效應(yīng)與成本,選擇200 r/min作為誘導(dǎo)表達(dá)時(shí)最佳的溶氧控制條件。

    圖4 溶氧對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響

    2.5 誘導(dǎo)劑(甲醇)添加量的影響

    誘導(dǎo)劑(甲醇)添加量對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)

    人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結(jié)果(圖5)顯示,甲醇濃度添加量為1.0%(以體積比計(jì),下同)時(shí),以抗菌活性計(jì)的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白表達(dá)量達(dá)最大,約為27 mm。低于1.0%,可能是由于誘導(dǎo)的強(qiáng)度不夠,表達(dá)速度下降,致使產(chǎn)物產(chǎn)量下降。高于1.0%,可能是由于誘導(dǎo)強(qiáng)度太大,超出了宿主菌的代謝負(fù)荷,反而產(chǎn)生負(fù)作用,從而也使表達(dá)量下降。綜合考慮選擇1.0%為誘導(dǎo)的最佳甲醇用量。

    圖5 甲醇添加量對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響

    2.6 pH的影響

    pH對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響結(jié)果(圖6)顯示,試驗(yàn)條件下,pH6.0時(shí)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的表達(dá)量最高,達(dá)到27.5 mm以上。pH主要通過(guò)影響細(xì)胞膜及基質(zhì)的帶電狀態(tài),從而影響膜對(duì)基質(zhì)的通透性,再傳遞到對(duì)產(chǎn)物產(chǎn)量的影響。酵母的最適生長(zhǎng)pH為偏酸性的環(huán)境,此處產(chǎn)物最佳表達(dá)量所需的pH6.0,恰好可在不影響宿主本身生長(zhǎng)條件下實(shí)現(xiàn)產(chǎn)物的最佳表達(dá),故確定pH6.0為最佳條件。

    圖6 pH對(duì)P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的影響

    2.7 最佳工作條件驗(yàn)證

    根據(jù)前面的試驗(yàn)結(jié)果,確定P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳工藝條件為利用BMMY培養(yǎng)基,接種量以O(shè)D600計(jì)為5.5、溫度26℃、pH6.0、誘導(dǎo)劑(甲醇)為每隔24 h添加1%、振蕩速度為200 r/min條件下連續(xù)誘導(dǎo)144 h。在該工藝條件下重復(fù)驗(yàn)證3次,得到結(jié)果(以LL-37抗菌活性計(jì))分別為27.8、28.1和27.9 mm,平均值為27.93±0.12(mm)。該結(jié)果與出發(fā)培養(yǎng)條件下的表達(dá)量(21.1 mm,參考1.2.1.1誘導(dǎo)時(shí)間120 h時(shí)的結(jié)果)相比,產(chǎn)物產(chǎn)量提高了32.39%。

    3 討論

    LL-37作為人源性抗菌肽,已經(jīng)在臨床上獲得廣泛的應(yīng)用。由于其分子小,與其它蛋白多肽或蛋白類(lèi)藥物融合表達(dá)時(shí),不易對(duì)與其融合蛋白的功能產(chǎn)生影響,因此將LL-37與其它蛋白融合表達(dá)生產(chǎn)多功能藥物成為可能[13]。例如,將LL-37與人酸性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子融合表達(dá)形成的新蛋白,既具有酸性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子促進(jìn)傷口愈合的功能,又具有防止傷口感染的功能[14]。受此思路的啟發(fā),將LL-37與人IFN-α2a融合表達(dá),構(gòu)建出了同時(shí)具有抗癌、抗病毒和抗菌的三效藥物。發(fā)酵工藝是將構(gòu)建的蛋白轉(zhuǎn)化為產(chǎn)物的關(guān)鍵。

    從單因素試驗(yàn)的各因素變化所引起的人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白表達(dá)水平的波動(dòng)情況分析,接種量、時(shí)間和pH是3個(gè)較為敏感的量,其它屬于次敏感量,這可能預(yù)示著這些因素對(duì)表達(dá)產(chǎn)量的關(guān)鍵程度。接種量主要影響發(fā)酵時(shí)延遲期的長(zhǎng)短和菌體與營(yíng)養(yǎng)之間的協(xié)調(diào)關(guān)系。接種量小,延遲期長(zhǎng),產(chǎn)物合成量低;接種量大,菌體濃度高,會(huì)引起營(yíng)養(yǎng)競(jìng)爭(zhēng)[15]。pH不僅影響宿主菌對(duì)外源基因的表達(dá),同時(shí)也可能對(duì)產(chǎn)物的穩(wěn)定性及活性產(chǎn)生影響[16]。適宜的培養(yǎng)條件,有利于提高細(xì)胞的相對(duì)活性和延長(zhǎng)細(xì)胞的高相對(duì)活性狀態(tài),從而實(shí)現(xiàn)融合蛋白產(chǎn)量的最大化累積[17,18]。各因素之間的影響還需要通過(guò)正交試驗(yàn)或序貫試驗(yàn)設(shè)計(jì),利用統(tǒng)計(jì)學(xué)的原理進(jìn)行詳細(xì)分析。

    試驗(yàn)中為了操作的方便,僅以LL-37的抗菌

    活性進(jìn)行表征。經(jīng)過(guò)在菌種構(gòu)建階段的試驗(yàn)確認(rèn),LL-37的抗菌活性檢測(cè)與IFN-α2a干擾素活性檢測(cè)結(jié)果是相一致的,表明二者既實(shí)現(xiàn)了融合,而且融合蛋白還同時(shí)保留了二者各自獨(dú)立時(shí)的活性(結(jié)果發(fā)表在本課題組另一篇文章中)。

    本試驗(yàn)所有數(shù)據(jù)均是建立在搖瓶的試驗(yàn)基礎(chǔ)之上的。眾所周知,搖瓶并不能真正代替發(fā)酵罐的生產(chǎn),因此本試驗(yàn)的結(jié)果還只能是發(fā)酵生產(chǎn)的參考。在達(dá)到生產(chǎn)水平之前,還需通過(guò)小型發(fā)酵罐進(jìn)一步優(yōu)化工藝參數(shù),再逐步放大至生產(chǎn)規(guī)模。

    4 結(jié)論

    本研究確定了重組畢赤酵母P. pastoris GS115LI產(chǎn)人LL-37基因與IFN-α2a融合蛋白的最佳工藝條件為利用BMMY培養(yǎng)基、接種量以O(shè)D600=5.5、溫度26℃、pH6.0、誘導(dǎo)劑(甲醇)為每隔24 h添加1%、振蕩速度為200 r/min條件下連續(xù)誘導(dǎo)144 h。與出發(fā)條件相比,產(chǎn)量提高了32.29%。

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    [18]Lo TM, Teo WS, Ling H, et al. Microbial engineering strategies to improve cell viability for biochemical production[J]. Biotechnology Advances, 2013, 31(6):903-914.

    (責(zé)任編輯 馬鑫)

    The Process Optimization of Pichia pastoris GS115LI for Producing Fused Protein of LL-37 and IFN-α2a

    Zhang Mingjie
    (Pharmaceutical Co.,Ltd. Guangdong Zijing Zhengtian,Heyuan 517000)

    With experiments of single factor, the optimal process of recombinant P. pastoris GS115LI for producing fused protein of LL-37 and IFN-α2a were using BMMY as inducing medium, inoculum as OD600=5.5, temperature as 26℃, pH6.0, inducing chemical(methanol)adding amount as 1.0% every 24 h, incubating shaking speed as 200 r/min, and inducing time as 144 h. Under those optimal conditions, the 27.9 mm of LL-37 antimicrobial activity could be gotten. Compared with the original conditions, the productivity of fused protein of LL-37 and IFN-α2a was increased as 32.29%.

    Interferon-α2a LL-37 Fermentation process

    2014-03-18

    廣東省重大科技專項(xiàng)(2011A080502011)

    張明杰,教授,研究方向:微生物工程技術(shù);E-mail:mingjiezh@126.com

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