楊 帆,李福英,何雄飛,曾潤穎,產(chǎn)竹華
(國家海洋局海洋生物遺傳資源重點實驗室 國家海洋局第三海洋研究所,廈門 361005)
脂肪酶(Lipase,EC 3.1.1.3)也叫三酰甘油脂水解酶,是一類重要的酯鍵水解酶,能夠在油-水界面上催化天然油脂(甘油三脂)生成游離的脂肪酸、甘油和甘油單酯或甘油二酯,廣泛存在于動物、植物和微生物中[1-3]?,F(xiàn)代工業(yè)中脂肪酶經(jīng)常被應(yīng)用于油脂水解[4]、食品加工[5]、食品品質(zhì)改良[6,7]、疾病診斷[8]、催化藥物合成[9-11]、皮革生產(chǎn)、可生物降解的無污染洗滌劑的研發(fā)[12]和生物柴油的生產(chǎn)等方面[13, 14]。在諸多來源的脂肪酶中,微生物脂肪酶是工業(yè)用脂肪酶的重要來源,是生物技術(shù)和有機化學(xué)應(yīng)用中使用最為廣泛的酶類之一。其原因在于微生物種類多、繁殖快,易發(fā)生遺傳變異,產(chǎn)生的脂肪酶具有比動植物脂肪酶作用更廣的 pH 值、反應(yīng)溫度范圍以及底物專一性;而且微生物來源的脂肪酶一般都是分泌性的胞外酶,適合于工業(yè)化大生產(chǎn)和樣品提純[15]。隨著工業(yè)的發(fā)展與人類需求的不斷擴大,得到一株高產(chǎn)、性質(zhì)特殊的產(chǎn)脂肪酶菌株越來越成為脂肪酶應(yīng)用研究開發(fā)的關(guān)鍵。在加緊尋找自然界中的優(yōu)秀產(chǎn)酶菌株之外,誘變育種也是獲得高產(chǎn)菌株的有效手段。
誘變育種是使用物理或化學(xué)誘變劑處理菌株,促進其突變率大幅提高,然后采用簡便、快速和高效的篩選方法,從中挑選少數(shù)符合育種目的的突變株,達到提高代謝產(chǎn)物的產(chǎn)量、改進產(chǎn)品質(zhì)量、擴大品種和簡化生產(chǎn)工藝的目的[16-18]。本文從一株深海產(chǎn)低溫脂肪酶的菌株Dspro004出發(fā),通過紫外誘變得到了高產(chǎn)菌株,并進行了該突變菌株的遺傳穩(wěn)定性的測試,為該菌株今后的工業(yè)生產(chǎn)奠定了良好的實驗基礎(chǔ)。
本文實驗采用的野生菌株Dspro004分離自東太平洋(107°38′ 23″ W,13°19′ 40″ N)水深4950 m的深海沉積物,采用脂肪酶篩選培養(yǎng)基篩選獲得并保存于本實驗室。
1)LB培養(yǎng)基:Yeast Extract 0.5%,Tryptone 1%,NaCl 1%。
2)脂肪酶篩選培養(yǎng)基:豬油1%,Yeast Extract 0.5%,瓊脂1.5%,由原位海水配制。
三丁酸甘油酯篩選培養(yǎng)基:三丁酸甘油酯1%,Yeast Extract 0.5%,瓊脂1.5%,由原位海水配制。
1.3.1 誘變劑量的確定
將Dspro004菌種接種至液體LB培養(yǎng)基中,繪制生長曲線并確定其對數(shù)期。取對數(shù)生長期的菌液,經(jīng)5000 r/min離心5 min,棄去上清液。用滅菌的生理鹽水(0.85% NaCl)溶液洗滌菌體兩次以除去培養(yǎng)基成分,繼續(xù)用生理鹽水調(diào)節(jié)菌液OD600至0.6~0.7,取5 mL稀釋后的菌液至直徑60 mm的無菌培養(yǎng)皿中進行紫外照射誘變。紫外照射條件為:輸出功率2×6 W,距離30 cm。紫外燈預(yù)熱20 min后,放入菌液,在黑暗條件下進行紫外照射,同時進行磁力攪拌。照射不同時間后,立刻取出500 μL菌液在20℃下避光孵育30 min。在紅光環(huán)境中,用生理鹽水進行梯度稀釋,取10-4,10-5兩個稀釋度的菌液各100 μL,均勻涂布LB平板,每個梯度設(shè)置3個平行樣。按相同方法對未經(jīng)照射的出發(fā)菌株進行孵育和稀釋涂布,以作為對照平板。涂布完畢后將平板放置在20℃下避光培養(yǎng)1~4 d,待菌落長出后計數(shù)菌落,統(tǒng)計致死率[19]。
1.3.2 誘變篩選
在誘變預(yù)實驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,選擇合適的致死率所對應(yīng)的誘變時間,進行紫外照射。之后避光孵育30 min,并用滅菌生理鹽水進行梯度稀釋,取10-5稀釋度的菌液100 μL在三丁酸甘油酯篩選平板上進行均勻涂布。置于15℃下避光培養(yǎng)3~5 d,根據(jù)透明圈大小篩選突變菌株。
挑選透明圈較大的菌落用液體LB培養(yǎng)基在15℃、200 r/min的條件下振蕩培養(yǎng)48 h,取發(fā)酵液上清,利用pNPP法測定脂肪酶活力。將復(fù)篩平板上的高活力突變菌株與出發(fā)菌株一起,進行連續(xù)傳代培養(yǎng),每一代進行保種并測定酶活。其中每個菌株均設(shè)3個平行樣,取平均值作為結(jié)果。各代均以出發(fā)菌株作為對照,以確定突變菌株的高產(chǎn)能力是否穩(wěn)定遺傳。
脂肪酶作用于底物(p-NPP) 后會產(chǎn)生黃色的對硝基酚p-Nitrophenol(p-NP),該產(chǎn)物在405nm處具有光吸收值。通過該光譜法可以檢測培養(yǎng)基中脂肪酶的活力。脂肪酶活單位U定義為:1 min酶解底物釋放出1 μmol的p-Nitrophenol所需的酶量為一個酶活單位。
配制終濃度為100 μmol/L的p-Nitrophenyl palnitate溶液,配制時先用5 mL的異丙醇溶解pNPP粉末,再用0.05 mol/L,pH9.0的Tris-HCl定容至100 mL。向2955 μL底物溶液中加入15μL(0.1 μg/μL)脂肪酶液,在25℃下反應(yīng)10 min后加入30μL的NaOH(5 mol/L)溶液終止反應(yīng),測定OD405值。
通過對野生菌株不同時間的紫外誘變菌液的涂板計數(shù),得到對應(yīng)誘變時間的致死率結(jié)果(圖1)。致死率在70%~80%之間時,產(chǎn)生正突變的幾率較高,更有利于進一步篩選[21]。涂板計數(shù)結(jié)果表明:當(dāng)功率為12W,照射距離為30 cm,照射時間為20 min時,致死率達到81.3%,因此選定20 min為最佳照射時間。稀釋度為10-4時可以看清菌落,但是透明圈分辨起來困難,故而稀釋度為10-5時效果最佳。
圖1 Dspro004菌株紫外誘變效果
將紫外照射后的菌液在三丁酸甘油篩選平板上均勻涂布,20℃下培養(yǎng)3 d出現(xiàn)透明圈。統(tǒng)計菌落數(shù),與出發(fā)菌株相比,致死率約為79.1%,符合正向突變有利篩選條件。以出發(fā)菌株為對照,挑選出90株透明圈/直徑比(HE)值均大于對照的變異菌株,依次編號為UM1~UM90。
從上述平板中挑選誘變后HE值較大的菌落UM3、UM5、UM14、UM16、UM32、UM49、UM55在液體LB培養(yǎng)基中進行15℃、48 h的搖培,并取發(fā)酵液測定脂肪酶活力。結(jié)果表明(圖2),相對于出發(fā)菌株,菌株UM3活力可達到2560 U/mg,相對出發(fā)菌株提高33.9%,活力提高最明顯。
選取菌株UM3進行遺傳穩(wěn)定性試驗,與出發(fā)菌株同時進行了20代傳代培養(yǎng)和酶活測定(表1)。各代菌體發(fā)酵液的平均酶活力相對出發(fā)菌株酶活保持在134%~139%之間,酶活力保持在2540~2710 U/mg,并且同代無顯著差異,表明該菌株的產(chǎn)酶具有較好的遺傳穩(wěn)定性。
圖2 Dspro004突變菌株復(fù)篩結(jié)果
表1 UM3突變株的遺傳穩(wěn)定性實驗
2.3.1 溫度對酶活性的影響
分別測定菌株UM3脂肪酶在不同溫度下(5℃~70℃)水解底物的活力,以研究其最適作用溫度。結(jié)果表明,酶在20℃~30℃范圍具有較高的酶活力,酶的最適反應(yīng)溫度為30℃(圖3),表現(xiàn)出明顯的冷適應(yīng)特征,因此該酶可確定為低溫脂肪酶,后續(xù)實驗脂肪酶活力測定均在30℃下進行。
圖3 溫度對脂肪酶活力的影響
2.3.2 pH值對酶活性的影響
用磷酸氫鈉-檸檬酸鈉(pH值4~8)、Tris-HCl(pH值7~8)、NaHCO3-Na2CO3(pH值8~10)、Na2HPO4-NaOH(pH值11)緩沖液配制pNPP底物溶液,測定不同pH值下脂肪酶的酶活力。實驗表明(圖4),酶在pH值7.5~9.5的范圍具有較高的酶活力,酶的最適反應(yīng)pH值為8.5,表明該酶為堿性脂肪酶。
圖4 pH值對脂肪酶活力的影響
2.3.3 酶的熱穩(wěn)定性
將酶液放置不同溫度下保溫一定時間后取出酶液,測定殘余脂肪酶的活力,在最適溫度下反應(yīng)。實驗結(jié)果表明(圖5),該脂肪酶在20℃~30℃具有良好的熱穩(wěn)定性,20℃保持12 h后仍具有80%以上的活力,30℃下保持12 h后酶活力仍有70%。40℃保溫2 h活力剩余72%,4 h僅余6%。50℃以上0.2 h基本喪失酶活。
圖5 溫度對脂肪酶穩(wěn)定性的影響
2.3.4 酶液對pH值的耐受性
圖6 pH值對脂肪酶穩(wěn)定性的影響
分別將酶液加入pH值6~9的磷酸鹽緩沖液冰浴中保存一定時間后,將酶液在最適反應(yīng)溫度下測定殘余酶活力。結(jié)果表明,在pH值8條件下保持12 h后殘余酶活力仍有80%,在pH值7條件下保持12 h后殘余酶活力為75%,在pH值6和pH值9條件下穩(wěn)定性較差,保持12 h后分別剩余51%和46%(圖6)。
與傳統(tǒng)的誘變育種相比,建立在現(xiàn)代基因操作技術(shù)基礎(chǔ)上的基因改造更為精確,但誘變育種往往能帶來更為復(fù)雜的連鎖反應(yīng)結(jié)果,且更簡便易行、快速、收效大,因而在實際工業(yè)應(yīng)用中被更多地采用。紫外誘變安全簡便,對環(huán)境毒害作用小,不易回復(fù)突變,因此本文采用紫外照射作為誘變劑篩選脂肪酶高產(chǎn)菌株。選擇致死率為81%的誘變劑量,獲得了酶活力最高達到2710 U/mg的突變株,產(chǎn)酶活力比出發(fā)菌株提高了約39%。雖然這與工業(yè)生產(chǎn)菌株的4000~6000U/mg[22]還有一定差距,希望通過進一步的發(fā)酵條件的優(yōu)化和代謝的調(diào)控來提高脂肪酶產(chǎn)量。
對于生產(chǎn)菌株來說,必須要具備穩(wěn)定的遺傳性狀才能在工業(yè)生產(chǎn)上廣泛應(yīng)用。本文所篩選到的菌株UM3突變株連續(xù)20代繼代培養(yǎng)結(jié)果表明,該突變株的遺傳性狀穩(wěn)定,為未來該菌株的實際工程應(yīng)用奠定了良好的實驗基礎(chǔ)。
[1]Kaushik R,Saran S,Isar J,et al. Statisticaloptimization ofmedium components and growth conditions by response surfacemethodology to enhance lipase production by Aspergillus carneus[J]. JournalofMolecular CatalysisB: Enzymatic,2006,40: 121-126.
[2]Macrae A,Hammond R. Present and future applications of lipases[J]. Biotechnology & Genetic Engineering Reviews,1985,3: 193-217.
[3]Shimizu S,Nakano M. Structural characterization of tracylglycerol in several oils containing gamma-linolenic acid[J]. Bioscience,Biotechnology,and Biochemistry,2003,67(1):60-67.
[4]Slim C,Ahmed F,Nabil M,et al. Crab digestive lipase acting at high temperature: purification and biochemical characterization[J]. Biochimie,2007,89(8):1012-1018.
[5]苗君蒞,張鋒華,孟令杰,等. 脂肪酶酶解稀奶油產(chǎn)物對牛奶的增香作用[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(4): 281-283.
[6]錢 露,李慶龍,王 晶. 國產(chǎn)脂肪酶在面條專用粉中的應(yīng)用初探[J]. 現(xiàn)代面粉工業(yè),2012,3: 21-25.
[7]韋 偉,馮鳳琴. sn-1,3位專一性脂肪酶在食品中的應(yīng)用[J]. 中國糧油學(xué)報,2012,27(2): 122-126.
[8]杭永倫,黃遠帥. 血清脂肪酶測定對急性胰腺炎的診斷價值[J]. 檢驗醫(yī)學(xué),2012,27 (6): 491-494.
[9]Liu Y,Wang F,Tan T. Cyclic ressolution of racemic ibuprofen via coupled efficient lipase and acid-base catalysis[J]. Chirality,2009,21(3): 349-353.
[10]Yin C,Liu T,Tan T. Synthesis of vitamin A esters by immoblized Candida sp. lipase in organic media[J]. Chinese Journal of Chemical Engineering,2006,14(1):81-86.
[11]潘志杰,陳小娥,王衛(wèi)飛,等. 脂肪酶催化魚油醇解富集EPA和DHA的研究[J]. 油脂工程,2012,1: 40-43.
[12]Hemachander C,Puvanakrishnan R. Lipase from Ralstonia pickettii as additive in laundry detergent formulations[J]. Process Biochemistry,2000,35(8):809-814.
[13]譚天偉,魯吉珂,聶開立,等. 酶法合成生物柴油工業(yè)化研究進展[J]. 生物工程學(xué)報,2010,26(7):903-906.
[14]李 艾,郝玉翠,金昌磊. 固定化脂肪酶催化大豆油制備生物柴油的工藝條件研究[J]. 唐山學(xué)院學(xué)報,2012,25(3): 31-34.
[15]葉 慧,雷建平,左建軍,等. 微生物脂肪酶概況及其動物營養(yǎng)效應(yīng)的研究進展[J]. 飼料工業(yè),2012,33 (12): 37-40.
[16]施巧琴,吳松剛,工業(yè)微生物育種學(xué)[M]. 北京,科學(xué)出版社,2009.
[17]馬 瓊.米曲霉纖維素酶高產(chǎn)菌株的誘變育種研究[J]. 食品化學(xué),2009,30(19):2007-2009.
[18]閔偉紅,林小秋,馮 琦,等.蛋氨酸高產(chǎn)菌株誘變育種[J]. 食品化學(xué),2008,29(11):456-459.
[19]諸葛健,沈 微,方慧英,等. 工業(yè)微生物實驗與研究技術(shù)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2007: 213- 219.
[20]Rashid N,Shimada Y,Ezaki S,et al. Low-temperature lipase from psychrotrophic Pseudomonas sp. strain KB700A[J]. Applied and Environmental Microbiology,2001,67(9): 4064-4069.
[21]張樹政. 酶制劑工業(yè)(下冊). 脂肪酶[M]. 北京:科學(xué)出版社,1998: 655-670.
[22]汪小鋒,王 俊,楊江科,等. 微生物發(fā)酵生產(chǎn)脂肪酶的研究進展[J]. 生物技術(shù)通報,2008,4: 47-53.