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    緩激肽對(duì)高糖誘導(dǎo)腎系膜細(xì)胞JNK通路活化的影響

    2013-11-15 07:50:46杭州師范學(xué)院醫(yī)學(xué)院附屬余杭醫(yī)院杭州311100
    關(guān)鍵詞:緩激肽阻斷劑系膜

    李 妍 杭州師范學(xué)院醫(yī)學(xué)院附屬余杭醫(yī)院 杭州 311100

    趙久陽(yáng) 大連醫(yī)科大學(xué)附屬二院

    糖尿病腎?。╠iabetic nephropathy,DN)是一類(lèi)以進(jìn)行性腎臟纖維化為特征的疾病。激肽系統(tǒng)(kallikrein-kinin system,KKS)對(duì)于腎小球硬化和腎間質(zhì)纖維化具有明顯的抑制作用[1-2],而緩激肽(braykinin,BK)是該系統(tǒng)發(fā)揮效應(yīng)的最終作用因子。本實(shí)驗(yàn)采用高糖刺激腎系膜細(xì)胞,使細(xì)胞達(dá)到預(yù)增殖狀態(tài),以磷酸化JNK 蛋白表達(dá)量代表JNK 通路的活化程度,研究BK 對(duì)高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞磷酸化JNK蛋白表達(dá)的影響,深入了解BK 對(duì)糖尿病腎病腎纖維化的保護(hù)作用的機(jī)制,為臨床防治提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑 BK(美國(guó)Calbiochem),BK 受體阻斷劑HOE-140(美國(guó)Sigma),RPMI 1640 培養(yǎng)液(美國(guó)GIBCO),D-Glu(美國(guó)Sigma),SP 600125(美國(guó)Santa Cruz),小鼠抗人P-JNK 一抗(美國(guó)Santa Cruz),辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗小鼠Ig-G 二抗(大連晨玉),胎牛血清(FBS)(天津中科院TBD),醋酸纖維素膜(NC 膜)(美國(guó)Bioshop)。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng)及分組方法 細(xì)胞來(lái)源:永生代成年大鼠腎小球系膜細(xì)胞系購(gòu)自美國(guó)Cambrex。細(xì)胞培養(yǎng):于含10%胎牛血清(FCS)的RPMI1640 培養(yǎng)液、5%CO2、37℃的孵箱中傳代培養(yǎng),生長(zhǎng)至80%融合時(shí),饑餓培養(yǎng)24h,使細(xì)胞同步于G0 期,隨后依實(shí)驗(yàn)?zāi)康牟煌殖刹煌囼?yàn)組。

    實(shí)驗(yàn)分組:按培養(yǎng)液中刺激因素不同分組,每組均為含10%滅活胎牛血清的RPMI1640 培養(yǎng)液。細(xì)胞分組:①對(duì)照組:培養(yǎng)液中測(cè)定其葡萄糖濃度為5mmol/L。②高糖組:培養(yǎng)液中測(cè)定其葡萄糖濃度為30mmol/L。③緩激肽+高糖組:培養(yǎng)液中緩激肽濃度(100ng/mL)預(yù)孵15min 后,加入葡萄糖濃度30mmol/L。④緩激肽B2 受體阻斷劑+緩激肽+高糖組:培養(yǎng)液HOE-140(1μmol/L)預(yù)孵15min 后,加入緩激肽100ng/mL 預(yù)孵15min,再加入葡萄糖濃度30mmol/L。⑤JNK 通路阻斷劑+緩激肽+高糖組:SP-600125(10μmol/L)預(yù)孵15min 后,再加入緩激肽100ng/mL預(yù)孵15min 后,再加入葡萄糖濃度30mmol/L。

    1.3 免疫印跡(Western-blotting)法檢測(cè)JNK 信號(hào)通路的激活 依據(jù)分組不同,將細(xì)胞接種在10cm 的培養(yǎng)皿中,生長(zhǎng)至80%融合的系膜細(xì)胞用無(wú)血清培養(yǎng)基培養(yǎng)24h,然后吸出培養(yǎng)基,換用新的無(wú)血清培養(yǎng)基,并根據(jù)分組加入不同的作用因子,并用含有1mmol/L 釩酸鈉(NaVO4)的冰冷的PBS 沖洗三次終止反應(yīng),加入蛋白裂解液(預(yù)冷)刮下細(xì)胞轉(zhuǎn)移至EP管中,超聲粉碎后12 000rpm 4℃離心20min 取上清。上述操作均于冰上進(jìn)行,以避免蛋白降解。蛋白濃度以Bradford 分析法確定。取5μL 樣品,加入95μL 雙蒸水,再加入3mL Bradford 顯色液后立即混勻。用紫外分光光度儀在595nm 下測(cè)定OD 值,作雙管重復(fù)測(cè)定結(jié)果,通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品蛋白濃度。取樣品行SDS-PAGE 電泳,90V 恒壓轉(zhuǎn)膜2h,用5%牛血清封閉過(guò)夜。封閉后的膜與單克隆小鼠抗人磷酸化JNK(Ⅰ抗)4℃雜交孵育1h,再與辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗小鼠IgG 抗體(Ⅱ抗)室溫孵育雜交1h??贵w均用抗體緩沖液適當(dāng)稀釋?zhuān)s交時(shí)輕搖抗體使之與膜均勻、充分接觸,每次雜交完畢均用TTBS洗去殘余未結(jié)合抗體。將硝酸纖維素膜浸于DAB 顯色液中,于暗處觀察,觀察有清晰的特異條帶出現(xiàn)時(shí),用大量的水沖洗硝酸纖維素膜以終止顯色反應(yīng)。定影,拍照。凝膠掃描分析系統(tǒng)(2020D,美國(guó)Kodak)軟件行圖象掃描及條帶吸光度半定量分析,為消除掃描和分析中的誤差,重復(fù)三次該過(guò)程,并取均值作統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用SPSS13.0 軟件分析數(shù)據(jù),數(shù)據(jù)用均值±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,采用單因素方差分析,P<0.05 認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    對(duì)照組表達(dá)一定基礎(chǔ)水平的磷酸化JNK 蛋白,高糖組較對(duì)照組磷酸化JNK 蛋白的表達(dá)量增多,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);BK 加高糖組的磷酸化JNK 的表達(dá)量與高糖組比較明顯減少(P<0.01),與對(duì)照組比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);加入BK-B2 受體阻斷劑后,與不加阻斷劑組比磷酸化JNK 蛋白的表達(dá)量增多(P<0.05),但仍顯著低于高糖組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)(P<0.05);使用JNK 通路阻斷劑后,JNK 磷酸化蛋白表達(dá)量明顯減少,有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.01),見(jiàn)圖1,圖2。

    圖1 各組總磷酸化JNK 蛋白表達(dá)量

    圖2 磷酸化JNK 蛋白電泳圖(P-JNK 包括P-JNK1和P-JNK2)

    3 討論

    糖尿病腎病是一類(lèi)以進(jìn)行性腎臟纖維化為特征的疾病。在腎小球的各種類(lèi)型細(xì)胞中,系膜細(xì)胞是受高血糖影響最顯著的細(xì)胞。C-Jun 氨基末端激酶(CJunNH2-terminal kinase,JNK)為絲裂原活化蛋白激酶(mitogen activated protein kinases,MAPKs)通路成員之一,是細(xì)胞內(nèi)的一類(lèi)絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,是將胞外刺激信號(hào)傳遞給胞核的主要傳導(dǎo)通路。JNK可被應(yīng)激反應(yīng)如滲透壓的改變、熱休克、炎癥反應(yīng)因子IL-1α、INF-α、DNA 損傷等因素所激活。體內(nèi)研究發(fā)現(xiàn),JNK 在腎損傷的早期發(fā)揮重要作用[3]。因此,我們選用系膜細(xì)胞作為研究對(duì)象來(lái)研究BK 對(duì)高糖誘導(dǎo)系膜細(xì)胞表達(dá)磷酸化JNK 蛋白的影響,探索BK延緩糖尿病腎病腎小球硬化的機(jī)制。

    近年來(lái)發(fā)現(xiàn)激肽釋放酶-激肽系統(tǒng)(kallikreinkinin system,KKS)對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)、細(xì)胞外基質(zhì)的合成及降解起著重要的調(diào)節(jié)作用。BK 的生理作用主要由B2 受體(BKB2R)介導(dǎo),B1 受體(BKB1R)在生理情況下不表達(dá),可能在炎癥、缺血或組織損傷等情況下放大BKB2R 介導(dǎo)的效應(yīng)。

    研究發(fā)現(xiàn),BK 的作用與MAPK 通路關(guān)系密切,而目前研究比較清楚的是BK 對(duì)ERK 通路的影響。實(shí)驗(yàn)表明,BK 可以調(diào)節(jié)ERK 的激活,BK 通過(guò)抑制ERK 的激活可以調(diào)節(jié)增殖狀態(tài)系膜細(xì)胞的增殖[4-5]。而B(niǎo)K 對(duì)JNK 通路影響的文獻(xiàn)卻很少。

    Liu 等[6]報(bào)道,BK 可促進(jìn)鼠的成纖維細(xì)胞JNK磷酸化蛋白的表達(dá),即BK 可以調(diào)節(jié)JNK 通路的激活。關(guān)于BK 對(duì)系膜細(xì)胞JNK 磷酸化蛋白的影響,目前國(guó)內(nèi)很少報(bào)道,研究發(fā)現(xiàn)BK 對(duì)系膜細(xì)胞的調(diào)節(jié)具有雙向性[4,7],即作用于靜止?fàn)顟B(tài)的系膜細(xì)胞引起其增殖,而作用于增殖狀態(tài)下的系膜細(xì)胞時(shí)起抑制增殖的作用。本實(shí)驗(yàn)用高糖刺激系膜細(xì)胞,使其處于增殖狀態(tài),使用B2 受體阻斷劑、JNK 通路阻斷劑(SP600125)后,通過(guò)檢測(cè)磷酸化JNK 蛋白表達(dá)量的變化,觀察BK 對(duì)高糖誘導(dǎo)系膜細(xì)胞表達(dá)JNK 磷酸化蛋白的影響。結(jié)果顯示,高糖組表達(dá)JNK 磷酸化蛋白明顯高于對(duì)照組,而B(niǎo)K 可以抑制高糖誘導(dǎo)細(xì)胞的JNK 磷酸化水平,BK-B2 受體阻斷劑可以阻斷BK的抑制作用,使磷酸化JNK 蛋白表達(dá)量增多,說(shuō)明BK 通過(guò)B2 受體抑制高糖誘導(dǎo)的JNK 磷酸化蛋白的表達(dá)。而加用JNK 阻斷劑可完全阻斷這條通路的激活,磷酸化JNK 蛋白表達(dá)明顯減少,且低于對(duì)照組水平(P<0.01)。本研究發(fā)現(xiàn)BK 可抑制高糖誘導(dǎo)系膜細(xì)胞的磷酸化JNK 蛋白的表達(dá)。推測(cè)BK 抑制DN時(shí)的腎纖維化的作用可能是通過(guò)調(diào)節(jié)磷酸化JNK 蛋白的表達(dá)實(shí)現(xiàn)的。

    Makkinje 等[8]研究顯示,JNK 通路在DN 的持續(xù)發(fā)展過(guò)程中發(fā)揮作用。Ingram 等[9]發(fā)現(xiàn),高糖(30mmol/L)的機(jī)械牽張(14kPa)可以激活體外培養(yǎng)的大鼠系膜細(xì)胞的JNK 通路,而P38MAPK 和ERK 活性變化不明顯。相關(guān)研究報(bào)道高糖環(huán)境下導(dǎo)致的氧化應(yīng)激狀態(tài),激活JNK/SAPK 途徑,刺激系膜細(xì)胞CTGF、FN的合成,導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)的積聚,最終導(dǎo)致腎小球硬化。而本實(shí)驗(yàn)顯示,BK 可以調(diào)節(jié)JNK 通路的激活從而發(fā)揮抑制糖尿病腎病進(jìn)展的作用。

    轉(zhuǎn)錄因子AP-1 是細(xì)胞內(nèi)JNK/SAPK 作用的重要目標(biāo),JNK 通路被激活后,可以通過(guò)轉(zhuǎn)錄因子AP-1 將細(xì)胞外刺激信號(hào)傳導(dǎo)至細(xì)胞核,激活A(yù)P-1 位點(diǎn)的靶基因轉(zhuǎn)錄。核內(nèi)立早基因c-fos、c-jun 編碼的蛋白產(chǎn)物分別形成了Fos 家族(c-Fos、FosB、Foral、Fraz)蛋白和Jun 家族(c-Jun、JunB、Jun 與Fos)二聚體,構(gòu)成轉(zhuǎn)錄因子AP-1。已知單核細(xì)胞趨化蛋白-1、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β、纖維連接蛋白(FN)、層粘連蛋白B 及細(xì)胞周期素D1 等基因啟動(dòng)子中均存在與AP-1 結(jié)合的作用元件(TRE 元件)。故BK 可能是通過(guò)JNK/SAPK/AP-1 途徑調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β、纖維連接蛋白(FN)等基因啟動(dòng)子的結(jié)合而發(fā)揮抑制腎纖維化作用。

    綜上所述,BK 作為一種細(xì)胞因子,可通過(guò)調(diào)節(jié)JNK 磷酸化蛋白表達(dá),來(lái)調(diào)節(jié)JNK 通路的活性,從而在延緩糖尿病腎病腎小球硬化的進(jìn)程中發(fā)揮重要的作用。

    [1]Wolf WC,Yoshida H,Agata J,et al.Human tissue kallikrein gene delivery attenuates hypertension,renal injury,and cardiac remodeling in chronic renal failure[J].Kidney Int,2000,58(2):730-739.

    [2]Schanstra JP,Neau E,Drogoz P,et al.In vivo bradykinin B2 receptor activation reduces renal fibrosis[J].J Clin Invest,2002,110(3):371-379.

    [3]Hamaguchi A,Kim S,Yano M,et al.Activation of glomerular initogen-activated protein klnases in angiotensin II-mediated hypertension[J].J Am Soc Nephrol,1998,9(3):372-380.

    [4]Celine Alric,Christiane Pechet,Eric Cellier,et al.Inhibition of IGF-1-induced Erk1 and 2 activation and mitogenesis in mesangial cells bybradykinin[J].Kidney International,2002,62:412-421.

    [5]Eric Cellier,Marilyne Mage,Johan Duchene,et al.Bradykinin reduces growth factor-induced glomerular ERK1/2 phosphorylation[J].AmJ Physiol Renal Physiol,2003,284:282-292.

    [6]Liu B,Yu J.Microarray and phosphokinase screenings leading to studies on ERK and JNK regulation of connective tissue growth factor expression by angiotensin II 1a and bradykinin B2 receptors in Rat1 fibroblasts[J].J Cell Biochem,2006,97(5):1104-1120.

    [7]Alric C,Pecher C,Schanstra JP,et al.Bradykinin-induced inhibition of cell proliferation and tyrosine kinase activity in rat mesangial cells[J].Int MolMed,2000,5(1):85-93.

    [8]Makkinje A,Quinn DA,Chert A,et al.Cene 33/mig-6,atranscriptionally induci-ble adapter protein that binds GTPCDC42 and activates SAPK/JNK.A potential marker transcript for chronic pathologic conditions,such as diabetic nephropathy.possible role in the response to persistent stress[J].J Biol Chem,2000,275(23):17838-17847.

    [9]Ingram JA,Ly H,Thai K,et al.Mesangial cell signailing cascades in response to mechamical strain and glucose[J].Kidney Int,1999,56:1721-1728.

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