劉振華,張清華,趙佳麗,王敏忠,杜怡峰
(山東大學(xué)附屬省立醫(yī)院,濟(jì)南 250021)
目前,腦出血血腫穿刺清除術(shù)的最佳時(shí)機(jī)尚無(wú)定論。單從手術(shù)角度考慮,血腫抽吸的理想時(shí)間為出血后4~8 d,此時(shí)血腫大部分液化有利于清除,但血腫對(duì)腦組織的壓迫時(shí)間過(guò)長(zhǎng),腦損傷恢復(fù)的可能性小。近年研究[1~3]證實(shí),一些細(xì)胞因子或炎癥介質(zhì)與出血性腦血管疾病的發(fā)生、發(fā)展有關(guān),其中以白細(xì)胞介素6(IL-6)和腫瘤壞死因子α(TNF-α)關(guān)系最為密切。2010~2011年,我們觀察了不同時(shí)機(jī)的血腫穿刺清除術(shù)對(duì)大鼠腦出血灶周組織中IL-6、TNF-α表達(dá)的影響,旨在為臨床手術(shù)時(shí)機(jī)的選擇提供理論依據(jù)。
1.1 材料 健康成年雄性Wistar大鼠90只,體質(zhì)量260~320 g,購(gòu)自山東大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心;大鼠腦立體定向儀,微量注射儀(購(gòu)于瑞沃德生命科技有限公司),微量注射器 (上海高鴿工貿(mào)有限公司);IL-6、TNF-α抗體(均為非結(jié)合多克隆兔抗體)SP免疫組化試劑盒及DAB顯色試劑盒購(gòu)于北京博奧森生物技術(shù)有限公司。
1.2 方法
1.2.1 分組與造模 將大鼠隨機(jī)分為對(duì)照組、模型組和手術(shù)組各30例。模型組和手術(shù)組參照Rosenberg等[4]報(bào)道的方法制備大鼠腦出血模型。術(shù)前禁食,自由飲水。用10%水合氯醛腹腔麻醉大鼠(350 mg/kg),將其俯臥位固定在立體定向儀上;沿頭皮正中作一長(zhǎng)約10 mm切口,暴露前囟;于前囟前0.2 mm中線旁開(kāi)3 mm處鉆一直徑為0.5 mm的孔,進(jìn)針深度為5.5 mm(尾殼核位置)。剪尾取血,在8 min內(nèi)緩慢注入自體未抗凝動(dòng)脈血50 μL;注血結(jié)束留針10 min后緩慢退針,局部用骨蠟封閉后縫合皮膚。對(duì)照組手術(shù)過(guò)程同上,注射等量生理鹽水。操作均在無(wú)菌條件下進(jìn)行,術(shù)畢將大鼠放回籠中飼養(yǎng),自由活動(dòng),進(jìn)食進(jìn)水。Bederson評(píng)分[5]≥2分者為造模成功。手術(shù)組在造模成功后6、12、24、48、72 h行血腫穿刺清除術(shù)(每次6只):將大鼠重新麻醉后固定在定位儀上,坐標(biāo)值同前;用頭皮針連接微量注射器抽取尿激酶 10 μL[6,7],沿鉆孔處進(jìn)針深約 6.3 mm,5 min內(nèi)注入尿激酶;待約45 min后用1 mL注射器代替微量注射器連接真空管外端,利用負(fù)壓輕柔緩慢抽吸血腫,抽吸量為總量的30% ~40%;緩慢退針,常規(guī)創(chuàng)口消毒后縫合皮膚。
1.2.2 大鼠腦出血灶周組織中IL-6、TNF-α 的檢測(cè)手術(shù)組于術(shù)后4 h、造模組和對(duì)照組均于造模后6、12、24、48、72 h 各斷頭處死 6 只大鼠,取血腫靠近皮層側(cè)(尾狀核平面)腦組織約2 mm3,用4%多聚甲醛固定,常規(guī)脫水,石蠟包埋,切片厚度約4 μm。采用免疫組化SP法染色,按試劑盒說(shuō)明書操作,陽(yáng)性細(xì)胞為細(xì)胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)黃色或棕黃色顆粒。每組隨機(jī)選取5個(gè)不重疊視野,在400倍顯微鏡下進(jìn)行觀察,計(jì)數(shù)陽(yáng)性細(xì)胞數(shù),取平均值。
1.2.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS18.0統(tǒng)計(jì)軟件。所得數(shù)據(jù)以表示,組間比較用t檢驗(yàn),多組、多時(shí)點(diǎn)的比較采用Post-hoc方差分析。P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
不同時(shí)點(diǎn)各組大鼠腦出血灶周組織中TNF-α、IL-6陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)比較,見(jiàn)表1。
表1 不同時(shí)點(diǎn)各組大鼠腦出血灶周組織中TNF-α、IL-6 陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)比較(個(gè)/HP,)
表1 不同時(shí)點(diǎn)各組大鼠腦出血灶周組織中TNF-α、IL-6 陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)比較(個(gè)/HP,)
注:與對(duì)照組同時(shí)點(diǎn)比較,*P<0.05;與模型組同時(shí)點(diǎn)比較,#P <0.05;與同組前一時(shí)點(diǎn)比較,△P <0.05
組別 TNF-α陽(yáng)性細(xì)胞 IL-6陽(yáng)性細(xì)胞對(duì)照組6 h 2.32 ±0.30 21.05 ±7.6212 h 2.51 ±0.51 27.23 ±11.2024 h 3.25 ±0.43 32.31 ±12.2248 h 2.96 ±0.28 37.52 ±16.2472 h 2.08 ±0.35 42.20 ±11.33模型組6 h 7.31 ±0.34* 47.83 ±16.74*12 h 23.24 ±0.81*△ 66.29 ±18.13*△24 h 28.17 ±0.63*△ 68.26 ±19.22*△48 h 21.26 ±0.55*△ 73.82 ±19.25*△72 h 17.06 ±0.52* 82.31 ±17.42*△手術(shù)組6 h 4.23 ±0.51*# 34.67 ±17.21*#12 h 14.13 ±1.23*#△ 42.72 ±17.33*#△24 h 16.21 ±0.93*#△ 43.53 ±18.24*#△48 h 13.26 ±0.52*#△ 56.42 ±18.22*#△72 h 11.48 ±0.73*# 63.71 ±17.83*#△
近年來(lái)研究[8,9]表明,自發(fā)性高血壓性腦出血后,積血釋放凝血酶、細(xì)胞毒性物質(zhì)及其他分解產(chǎn)物,造成炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),導(dǎo)致腦水腫及神經(jīng)細(xì)胞凋亡和炎性因子如 IL-1、IL-6、IL-10、TNF-α 等的釋放,引起附近腦組織損害,進(jìn)一步造成血腦屏障的破壞。TNF-α是一種具有廣泛生物學(xué)功能的細(xì)胞因子,可通過(guò)促進(jìn)凝血、增加內(nèi)皮細(xì)胞通透性及誘導(dǎo)黏附分子或其他炎性介質(zhì)等表達(dá),增加血腦屏障的通透性,加重腦損傷。本研究結(jié)果顯示,模型組和手術(shù)組大鼠腦出血后6 h,腦出血灶周組織中TNF-α表達(dá)即增加,24 h達(dá)高峰,以后逐漸下降;而手術(shù)組TNF-α表達(dá)明顯低于模型組、高于對(duì)照組(P均<0.05),且以造模后6 h手術(shù)的大鼠表達(dá)最低(P均<0.05)。提示盡早進(jìn)行微創(chuàng)清除血腫可以減輕血腫周圍組織中TNF-α表達(dá),從而保護(hù)神經(jīng)組織。
在自發(fā)或其他因素的刺激下,淋巴細(xì)胞與多種非淋巴細(xì)胞都能產(chǎn)生IL-6。在中樞神經(jīng)系統(tǒng)IL-6主要源于巨噬細(xì)胞、有活性的星形膠質(zhì)細(xì)胞、小膠質(zhì)細(xì)胞及神經(jīng)內(nèi)皮細(xì)胞等。有學(xué)者認(rèn)為,正常神經(jīng)細(xì)胞中IL-6保持低表達(dá)發(fā)揮中樞介導(dǎo)、神經(jīng)修復(fù)等生理作用,但在腦出血后IL-6表達(dá)增高,參與神經(jīng)損傷過(guò)程。本研究結(jié)果顯示,隨著腦出血時(shí)間的延長(zhǎng),模型組和手術(shù)組大鼠腦出血灶周組織中IL-6表達(dá)逐漸增加,72 h時(shí)最高。說(shuō)明在腦出血急性期IL-6表達(dá)處于高水平,介導(dǎo)了腦出血后的腦組織損傷。
微創(chuàng)穿刺治療操作簡(jiǎn)便,可以早期清除血腫,降低顱內(nèi)壓,挽救患者生命,有利于腦功能康復(fù),具有創(chuàng)傷小、費(fèi)用少、術(shù)后康復(fù)快、技術(shù)易掌握等優(yōu)點(diǎn)[10],但對(duì)于微創(chuàng)治療最佳時(shí)機(jī)的選擇尚無(wú)定論。本研究分別在大鼠腦出血后6、12、24、48、72 h行血腫穿刺清除術(shù),觀察不同時(shí)機(jī)手術(shù)對(duì)腦組織中TNF-α、IL-6表達(dá)的影響。結(jié)果顯示,觀察組6 h手術(shù)大鼠血腫周圍腦組織中TNF-α、IL-6的表達(dá)明顯低于其他時(shí)間手術(shù)大鼠。說(shuō)明在腦出血早期即有腦內(nèi)的炎癥因子激活,超早期(出血后6 h)進(jìn)行血腫清除可解除血腫壓迫引起的腦損傷,還能降低血液分解產(chǎn)物的炎癥反應(yīng)。本研究結(jié)果還顯示,腦出血后腦組織中IL-6表達(dá)高峰較TNF-α表達(dá)高峰出現(xiàn)的晚,可能與TNF-α激活了小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞分泌IL-6有關(guān)。
[1]Wang KW,Cho CL,Chen HJ,et al.Molecular biomarker of inflammatory response is associated with rebleeding in spontaneous intracerebral hemorrhage[J].Eur Neurol,2011,66(6):322-327.
[2]ziedzic T,Bartus S,Klimkowicz A,et al.Intracerebral hemorrhage triggers interleukin-6 and interleukin-10 release in blood[J].Stroke,2002,33(9):2334-2335.
[3]Dziedzic T.Clinical significance of acute phase reaction in stroke patients[J].Front Biosci,2008,13(1):2922-2927.
[4]Rosenberg GA,Mun-Bryce S,Wesley M,et al.Collagenase-induced intracerebral hemorrhage in rats[J].Stroke,1990,21(5):801-807.
[5]Bederson JB,Pitts LH,Tsuji M,et al.Rat middle cerebral artery occlusion:evaluation of the model and development of a neurologic examination[J].Stroke,1986,17(3):472-476.
[6]Wagner KR,Xi G,Hua Y,et al.Ultra-early clot aspiration after lysis with tissue plasminogen activator in a porcine modeI of intracerebral hemorrhage:edema reduction and bloat-brain barrier protection[J].J Neurosurg,1999,90(3):491-498.
[7]Ahumbabic M,Peling J,Del Bigio MR.Intracerebral hemorrhage in the rat-effects of hematoma aspiration[J].Stroke,1998,29(9):1917-1923.
[8]Siddique MS,Mendelow AD.Surgical treatment of intracerebral haemorrhage[J].Br Med Buu,2000,56(2):444-456.
[9]Hua Y,Keep RF,Hoff JT,et al.Brain injury after intracerebral hemorrhage the role of thrombin and iron[J].Stroke,2007,38(Suppl 2):759-762.
[10]Samadani U,Rohde V,A review of stereotaxy and lysis for intracranial hemorrhage[J].Neurosurg Rev,2009,32(1):15-22.