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    小劑量氯胺酮對嗎啡耐受細胞δ阿片受體及NMDA受體2B亞型表達的影響

    2012-07-28 09:57:30張秀寧徐貫杰孟雁欣趙申明馬春玲
    中國藥理學(xué)通報 2012年1期
    關(guān)鍵詞:阿片氯胺酮嗎啡

    張秀寧,文 迪,徐貫杰,孟雁欣,叢 斌,趙申明,馬春玲

    (1.河北醫(yī)科大學(xué)第三醫(yī)院麻醉科,河北石家莊 050051;2.河北醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院法醫(yī)學(xué)系,河北省法醫(yī)學(xué)重點實驗室,河北石家莊 050017)

    嗎啡(morphine,Mor)廣泛用于疼痛治療,尤其是晚期癌痛患者,但長期應(yīng)用可產(chǎn)生嗎啡耐受影響其鎮(zhèn)痛效果,其機制可能與阿片受體脫敏和內(nèi)化有關(guān)[1-2]。NMDA受體高表達在嗎啡耐受中亦發(fā)揮重要作用[3]。發(fā)現(xiàn) NMDA受體拮抗劑氯胺酮(ketamine,K)等具有緩解嗎啡耐受的作用已近20年,臨床研究[4]與動物研究[5-6]關(guān)于小劑量氯胺酮防止嗎啡耐受發(fā)生有大量報道,然而此作用的分子機制迄今尚未闡明。本研究擬在建立嗎啡耐受細胞模型基礎(chǔ)上,通過觀察小劑量氯胺酮對δ阿片受體1(DOR-1)和NMDA受體2B亞型(NR2B)的影響,初步探討氯胺酮調(diào)節(jié)嗎啡耐受的受體機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料 PC-12(上海拜力生物科技有限公司),DMEM/高糖培養(yǎng)基(美國Gibco公司),胎牛血清、青/鏈霉素、EDTA-胰酶(美國 PA公司),鹽酸嗎啡注射液(沈陽第一制藥廠),鹽酸氯胺酮注射液(福建古田藥業(yè)有限公司),TRIzol(美國 Invitrogen公司),DEPC(美國 Invitrogen公司),PrimeScriptTMRT regent Kit、SYBR Premix Ex TaqTMPCR 試劑盒(日本TaKaRa公司),LanceTM384cAMPKit(美國PerkinElmer公司),PCR 儀、7500型 Real-Time PCR儀(美國AB公司),多功能酶標儀(瑞士Tecan公司)。

    1.2 細胞培養(yǎng)及嗎啡耐受細胞模型建立 PC-12細胞接種于含10%胎牛血清、1×105U·L-1青霉素、1×105U·L-1鏈霉素的DMEM/高糖培養(yǎng)基中,在37℃下持續(xù)通入5%CO2和95%空氣進行培養(yǎng)。將細胞按4×108cells·L-1的密度接種在50 ml培養(yǎng)瓶中,置培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后更換培養(yǎng)基,48 h后細胞貼壁面積約80% ~90%,細胞傳代于6孔板,細胞密度2×108cells·L-1,每孔2 ml培養(yǎng)基,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,細胞貼壁面積約70%,更換為不含胎牛血清的培養(yǎng)基,加入不同因素進行處理。

    參照文獻[7]建立嗎啡耐受細胞模型,加入10 μmol·L-1嗎啡作用48 h,以cAMP含量增加檢驗?zāi)P徒⑹欠癯晒Α?/p>

    1.3 cAMP含量測定 10 μmol·L-1嗎啡分別作用細胞0.5、6、24和48 h,1 ×PBS沖洗細胞2 次,加入 Versene's 液(g·L-1,EDTA 0.37,NaCl 8.00,KCl 0.20,KH2PO40.20,Na2HPO41.15,葡萄糖 0.20,pH 7.4),室溫孵育3~5 min后收集細胞,4℃、300×g離心5 min,棄上清。1×HBSS液(g·L-1,CaCl20.14,KCl 0.40,KH2PO40.06,MgCl2·6 H2O 0.10,MgSO4·7 H2O 0.10,NaCl 8.00,NaHCO30.35,葡萄糖1.00,Na2HPO4·7 H2O 0.09,pH 7.4)沖洗1 次,1×HBSS液重懸細胞并計數(shù),調(diào)整細胞濃度為2×109cells·L-1。使用時間分辨熒光免疫分析cAMP試劑盒測定細胞內(nèi)cAMP含量。

    1.4 DOR-1和NR2B表達測定 應(yīng)用Real-Time PCR檢測PC-12細胞DOR-1和NR2B表達:1×PBS沖洗細胞兩次,加入TRIzol提取細胞總RNA,各組取500 ng總RNA經(jīng)PrimeScriptTM反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成 cDNA,反轉(zhuǎn)錄程序:37℃ 15 min,85℃ 5 s.Premix Ex TaqTM試劑盒擴增目的基因,所用引物由上海生物技術(shù)工程公司合成。引物序列:DOR-1(上游 5'-CAACGTGCTCGTCATGTTTGG-3',下 游 5'-CAGGTACTTGGCGCTCTGGAA-3');NR2B(上游5'-TGCACAATTACTCCTCGACG-3',下 游 5'-TCCGATTCTTCTTCTGAGCC-3');GAPDH(上游5'-GGCATGGACTGTGGTCATGA-3',下 游 5'-TTCACCACCATGGAGAAGGC-3');擴增條件:95℃ 30 s,95℃ 5 s,60℃ 34 s,45個循環(huán)。PCR產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳驗證。GAPDH基因為內(nèi)參基因?!鳌鰿t法分析目的基因相對表達量。

    2 結(jié)果

    2.1 嗎啡鎮(zhèn)痛/耐受PC-12細胞模型的建立 參照文獻[7]成功建立嗎啡耐受細胞模型,以10 μmol·L-1嗎啡處理 PC-12 細胞 0.5、6、24、48 h 后測量細胞內(nèi)cAMP含量。處理0.5 h組細胞內(nèi)cAMP含量(2.23±0.26)pmol·L-1明顯低于對照組(3.05±0.32)pmol·L-1(P=0.008)。48h 組細胞內(nèi)cAMP含量(3.86±0.29)pmol·L-1高于對照組(P=0.021)。6 h 組(2.94 ±0.76)pmol·L-1和 24 h組(3.10 ±0.42)pmol·L-1,與對照組相比差異均無顯著性(P=0.698和P=0.868)。見Fig 1。

    2.2 不同劑量氯胺酮作用PC-12細胞48 h cAMP含量 不同劑量氯胺酮(0.5、5、50 μmol·L-1)組cAMP含量(3.32±0.50)、(3.22±0.30)、(3.25±0.25)pmol·L-1與對照組(3.31 ±0.40)pmol·L-1相比差異無顯著性(P=0.99、P=0.73、P=0.81),見Fig 2。

    2.3 氯胺酮聯(lián)合嗎啡作用細胞48 h cAMP含量10 μmol·L-1嗎啡單獨作用 cAMP 含量(4.53 ±0.40)pmol·L-1高于對照組(3.73 ± 0.25)pmol·L-1(P=0.005)。嗎啡與 0.5 μmol·L-1氯胺酮聯(lián)合作用cAMP含量(2.86±0.18)pmol·L-1明顯低于對照組(P=0.013)和嗎啡組(P=0.001)。嗎啡與5、50 μmol·L-1氯胺酮聯(lián)合作用 cAMP 含量分別為(3.44 ±0.33)pmol·L-1和(3.64 ±0.35)pmol·L-1,均明顯低于嗎啡組(P=0.002,P=0.006),與對照組相比差異無顯著性(P=0.478,P=0.938),見Fig 3。

    Fig 1 cAMP levels in PC-12 cells treated with 10 μmol·L-1morphine for different times

    Fig 2 cAMP levels in PC-12 cells treated with different concentrations of ketamine for 48 hours

    2.4 嗎啡耐受細胞模型DOR-1的表達 應(yīng)用Real-Time PCR檢測細胞DOR-1受體表達,結(jié)果顯示:嗎啡作用細胞48 h后與對照組相比表達下降(0.55±0.11)倍(P=0.005),單獨應(yīng)用 0.5 μmol·L-1氯胺酮組(0.98±0.82)與對照組相比差異無顯著性(P=0.99),與對照組相對表達值為0.98±0.82。0.5 μmol·L-1氯胺酮與 10 μmol·L-1嗎啡聯(lián)合作用(1.03±0.02)與嗎啡組(0.55±0.11)相比DOR-1表達明顯增高(P=0.003),與對照組相比差異無顯著性(P=0.840),見Fig 4。

    Fig 3 cAMP levels in PC-12 cells treated with 10 μmol·L-1morphine(Mor)in the presence and absence of different concentrations(K,μmol·L-1)of ketamine for 48 hours

    Fig 4 Level of DOR-1 expression in PC-12 cells treated with 10 μmol·L-1morphine(Mor),0.5 μmol·L-1ketamine(K),and 10 μmol·L-1morphine plus 0.5 μmol·L-1ketamine

    2.5 嗎啡耐受細胞模型NR2B的表達 應(yīng)用Real-Time PCR 檢測 NR2B 表達結(jié)果顯示,10 μmol·L-1嗎啡作用細胞48 h,NR2B表達(18.09±3.69)較對照組(1.00±0.01)增高(P=0.016),單獨應(yīng)用0.5 μmol·L-1氯胺酮組(1.36 ±0.61)與對照組相比差異無顯著性(P=0.99)。嗎啡聯(lián)合應(yīng)用0.5 μmol·L-1氯胺酮組NR2B表達(2.49±0.83)與嗎啡組相比明顯降低(P=0.017),與對照組相比差異也有顯著性(P=0.042),見 Fig 5。

    3 討論

    嗎啡是目前臨床癌痛患者常用的鎮(zhèn)痛藥,但長期應(yīng)用易產(chǎn)生耐受而嚴重影響其鎮(zhèn)痛效果。在單獨使用嗎啡無效的癌痛患者中,輔以小劑量(肌注小于2 mg·kg-1、靜脈或硬膜外注射小于 1 mg·kg-1或靜脈持續(xù)輸注≤20 μg·kg-1·min-1)氯胺酮治療,可使62%的患者得到長達8周的疼痛改善[8],而小劑量氯胺酮本身無明顯鎮(zhèn)痛作用。其相關(guān)分子機制尚不清楚,尤其NMDA受體亞單位和阿片δ受體在其中的相關(guān)作用報道甚少。

    Fig 5 Level of NR2B expression in PC12 cells treated with 10 μmol·L-1morphine(Mor),0.5 μmol·L-1ketamine(K),and 10 μmol·L-1morphine plus 0.5 μmol·L-1ketamine

    目前,普遍認為嗎啡與阿片受體結(jié)合,主要通過抑制AC-cAMP信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路產(chǎn)生鎮(zhèn)痛作用[9],嗎啡長時程處理導(dǎo)致抑制作用降低,引起細胞內(nèi)AC-cAMP通路適應(yīng)性上調(diào),cAMP含量增加,因此通常以cAMP是否明顯增加作為嗎啡耐受細胞模型建立的依據(jù)[9-10]。本實驗以10 μmol·L-1嗎啡處理 PC-12細胞48 h后cAMP含量明顯升高,提示嗎啡耐受細胞模型建立成功。

    阿片受體主要包括μ、δ、κ等亞型,有研究表明[11],將小鼠δ受體1(DOR-1)基因外顯子敲除后,應(yīng)用DOR特異受體激動劑D青霉胺2、D青霉胺5內(nèi)啡肽([D-Pen2,D-Pen5]enkephalin,DPDPE)進行鎮(zhèn)痛測試,結(jié)果顯示DPDPE耐受缺失,表明阿片耐受形成與DOR-1相關(guān)。而小劑量氯胺酮防止嗎啡耐受發(fā)生是否和DOR-1相關(guān)未見報道,本實驗結(jié)果證實嗎啡耐受細胞DOR-1表達較對照組下降,而小劑量氯胺酮與嗎啡聯(lián)合作用可防止DOR-1的下調(diào),提示小劑量氯胺酮可通過調(diào)節(jié)DOR-1表達緩解嗎啡耐受。

    NMDA受體是谷氨酸特異性離子通道受體,由NR1、NR2(A、B、C、D)和 NR3(A、B)組成[12]。氯胺酮是非特異性NMDA受體拮抗劑,Bajo等[13]發(fā)現(xiàn)嗎啡耐受SD大鼠中,腦伏核和中央杏仁核NR1和NR2B表達升高,而NR2A表達無變化,表明嗎啡長時程作用引起耐受過程有NMDA受體參與,但各亞單位作用不同,且NR2B在傷害性感受發(fā)生和維持中有重要作用[12]。本實驗研究發(fā)現(xiàn)嗎啡耐受發(fā)生時NR2B表達上調(diào),與 Bajo等[13]在體研究結(jié)果一致,而小劑量氯胺酮與嗎啡聯(lián)合作用可使上調(diào)的NR2B下降,提示小劑量氯胺酮可通過調(diào)節(jié)NR2B表達緩解嗎啡耐受。

    以往對DOR-1和NR2B在小劑量氯胺酮抑制嗎啡耐受機制的研究多在整體水平進行,本實驗首次在細胞水平同時觀察DOR-1和NR2B在此過程的變化,為進一步探討其受體后信號傳導(dǎo)機制提供了實驗依據(jù)。綜上,小劑量氯胺酮可防止嗎啡鎮(zhèn)痛耐受發(fā)生,其受體機制可能與阻止嗎啡引起的細胞DOR-1表達下調(diào)及NR2B表達上調(diào)有關(guān)。

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