鄒世春,李 青 ,賀竹梅
(1. 中山大學(xué)海洋學(xué)院水產(chǎn)品安全教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 廣州510275;2. 中山大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院水產(chǎn)品安全教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 廣州510275)
在醫(yī)療和養(yǎng)殖等過程中大劑量持續(xù)排放的抗生素選擇壓力下[1-2],生物體不斷地接觸到低于致死濃度的抗生素[3],這將引起細(xì)菌特定的轉(zhuǎn)錄響應(yīng)[4-7],固有抗性菌株和選擇性抗性突變株中的抗性基因(Antibiotic Resistance Genes, ARGs)便被選擇出來。當(dāng)這些抗性基因整合到基因移動元件能夠轉(zhuǎn)移并能在抗生素選擇壓力下能富集的時候,便被視為一種新型污染物而存在[8],這將極大地危害人類健康及生態(tài)系統(tǒng)的穩(wěn)定。四環(huán)素作為一種廣譜抗生素,憑借其殺菌作用顯著及較小副作用的特點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于人類及養(yǎng)殖業(yè)并進(jìn)入周邊環(huán)境,使得存在于環(huán)境微生物染色體上的四環(huán)素抗生基因tet被選擇出來,成為一種新型持久性的環(huán)境污染物。此外,大部分tet基因都能與基因移動單元(如能轉(zhuǎn)移的質(zhì)粒、轉(zhuǎn)座子、整合子等)相連,使tet基因可在種間甚至屬間進(jìn)行轉(zhuǎn)移,造成攜帶有tet基因的細(xì)菌容易在人體、動物、環(huán)境中廣泛存在,并通過基因水平轉(zhuǎn)移(Horizontal Gene Transfer,HGT)等方式,侵染到其他共生菌甚至病原菌中。而共生菌將作為tet基因以及其他ARGs的大型儲庫,造成對環(huán)境、人體健康的危害。對珠三角一些主要水體(河流、養(yǎng)殖基塘、污水處理廠及海灣等)中抗生素及北江河水中磺胺、四環(huán)素抗性基因污染的研究均表明,環(huán)境抗生素及其抗性基因污染已十分嚴(yán)重[9-11]。
本文以珠海某養(yǎng)殖場土壤及周邊基塘沉積物中的微生物及其ARGs為主要研究對象,使用聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)及熒光實(shí)時定量PCR等技術(shù),著重研究了多種四環(huán)素抗性基因的存在和污染水平,以期為我國養(yǎng)殖環(huán)境中抗性基因的污染狀況提供信息。
所研究的養(yǎng)豬場為珠海高新區(qū)那州村四大豬場之一,年出欄數(shù)3000頭多左右,已使用20余年。養(yǎng)豬場周邊有人工種植林木和兩個養(yǎng)殖基塘,糞便經(jīng)化糞池簡單處理后通過溝渠排出,固體物用于林木施肥和魚塘。但由于管理問題,豬場對周邊河流、土壤及空氣造成一定污染,經(jīng)常受到周邊居民投訴。本研究選擇該養(yǎng)殖場土壤及周邊基塘沉積物,共設(shè)置了16個采樣點(diǎn)。采集養(yǎng)殖場0~5 cm 表層土壤樣品各約100~150 g,用無菌密實(shí)袋裝好,并記錄采樣時間、天氣、溫度等。
取1 g土壤溶于10 mL無菌水中,移取100 μL均勻涂布在四環(huán)素終濃度為20 g/L的抗性LB固體培養(yǎng)基上,37 ℃培養(yǎng)24 h,觀察是否有菌落生長。同時,將樣品涂布在不含有四環(huán)素的LB固體培養(yǎng)基上做陰性對照,初步分析樣品中四環(huán)素抗性菌群的大致狀況。
1.3.1 四環(huán)素類抗生素抗生基因的定性分析 采用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase Chain Reaction,PCR)技術(shù)對環(huán)境中拷貝數(shù)相對較低的ARGs進(jìn)行指數(shù)倍擴(kuò)增放大。首先采用OMEGA微量土壤DNA提取試劑盒法抽提土壤中總DNA,并采用NanoVue 超微量分光光度計(jì)測定其A260/A280及A260/A230比值。通常純DNA 的A260/A280值介于1.7~1.9之間。當(dāng)樣品中含有大量腐殖酸、蛋白、酚類等物質(zhì)時,會造成A260/A280值小于1.6;當(dāng)有RNA污染時,A260/A280值會大于1.9。不純凈的DNA樣品對后續(xù)的PCR反應(yīng)中的Taq酶等造成抑制作用,從而影響后續(xù)反應(yīng)進(jìn)行。
根據(jù)設(shè)計(jì)的引物[12-13](序列如表1所示),對樣品中的9種tet基因及16S rDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,相關(guān)反應(yīng)體系和程序如下。
表1 引物序列
PCR反應(yīng)體系:10×buffer,2.5 μL;引物,每反應(yīng)需要引物0.2 μmol/L;Taq酶,2.5 U/反應(yīng);dNTPs,每種脫氧核苷酸為200 μmol/L;DNA模板,1.5 μL;ddH2O,19.3 μL;總體積為25 μL。
PCR反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性5 min;然后95℃,30 s;55 ℃,30 s;72 ℃,1 min,共40個循環(huán);接著72 ℃,10 min;4 ℃保存。PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測后,割膠回收、純化。將目的DNA(tetA、tetC、tetG和tetX)片段與pGM-T載體連接后,轉(zhuǎn)化進(jìn)入大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中并提取白斑菌落的重組質(zhì)粒。經(jīng)過PCR驗(yàn)證后將質(zhì)粒上含有目的tet基因進(jìn)行測序。利用NCBI數(shù)據(jù)庫中BLAST功能對測序結(jié)果進(jìn)行分析,以進(jìn)一步驗(yàn)證所獲得ARGs(tetA、tetC、tetG和tetX)的核苷酸序列與基因庫中目的基因序列匹配的一致性,并為后續(xù)ARGs的定量分析做準(zhǔn)備。
1.3.2 四環(huán)素類抗生素抗生基因的定量分析 采用SYBR Green I熒光定量PCR法對樣品中tetA、tetC、tetG和tetX等4種四環(huán)素抗性基因進(jìn)行定量分析。qPCR體系為10 μL:2×SYBR supermix,1.5 μL;模板DNA,0.5 μL;引物,0.6 μL;ddH2O,8.8 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃,預(yù)變性5 min;然后95 ℃,30 s;55 ℃,30 s;72 ℃,1 min,共40個循環(huán);最后72℃,10 min。將所提取的質(zhì)粒原液稀釋10倍成10個梯度(拷貝數(shù)從n×1010系列稀釋到n×101),制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線所計(jì)算出的目的基因濃度及樣品DNA的濃度,從而得出該目的基因在樣品DNA中的豐度。
根據(jù)細(xì)菌在抗性LB固體培養(yǎng)基生長狀況看來,16個采樣點(diǎn)土壤及沉積物樣品在四環(huán)素抗性培養(yǎng)基上都有細(xì)菌菌落生長,表明該地區(qū)四環(huán)素抗性細(xì)菌的存在十分普遍。并且,環(huán)境中只有5%左右的細(xì)菌能在抗性培養(yǎng)基上培養(yǎng),這意味著可能在環(huán)境中存在更多未能被培養(yǎng)的抗性細(xì)菌。因此,我們需要通過基因克隆、PCR和qPCR等分子生物學(xué)手段在基因水平上對抗性細(xì)菌及其抗性基因有更深入的研究。
養(yǎng)殖土壤環(huán)境中tet基因PCR產(chǎn)物擴(kuò)增結(jié)果如圖1所示,其樣品檢出率統(tǒng)計(jì)結(jié)果列于表2中。
圖1 9種四環(huán)素抗性基因(tetA、tetB、tetC、tetD、tetG、tetL、tetO、tetQ和tetX)的PCR擴(kuò)增電泳圖
根據(jù)圖1中9種四環(huán)素抗性基因(tetA、tetB、tetC、tetD、tetG、tetL、tetO、tetQ和tetX)的定性PCR電泳結(jié)果可知,除tetD未被檢出之外,其余8種均有檢出。從表2可以看出,在檢出的8種抗性基因中,除tetB檢出率相對較低(6%)之外,以tetG的檢出率為最高(94%),其次為tetC和tetO(75%),其他抗性基因的檢出率也較高(44%~69%)。
表2 抗生素抗性基因PCR結(jié)果統(tǒng)計(jì)
值得注意的是,在所檢出的8種四環(huán)素抗性基因中,tetA、tetB、tetC、tetD、tetG和tetL為用于編碼外排泵蛋白的基因。當(dāng)納摩爾濃度的四環(huán)素進(jìn)入細(xì)胞,與阻遏蛋白結(jié)合,使阻遏物不能與DNA操縱作基因結(jié)合,調(diào)節(jié)基因與結(jié)構(gòu)基因開始轉(zhuǎn)錄,編碼相應(yīng)的外排蛋白,將細(xì)菌體內(nèi)的藥物泵出,達(dá)到對抗生素的抗性。這些外排泵基因常與攜帶不同抗性基因甚至不同來源的質(zhì)粒相連,這無疑加劇了抗性基因在細(xì)菌群體中的轉(zhuǎn)移并使細(xì)菌易于產(chǎn)生多重耐藥。另外,tetO和tetQ主要為編碼核糖體保護(hù)蛋白,它們與核糖體結(jié)合后使核糖體構(gòu)象發(fā)生改變,從而使四環(huán)素不能與核糖體發(fā)生結(jié)合,從而起到對四環(huán)素的抗性。tetX是唯一編碼四環(huán)素滅活酶的基因,在有氧條件及NADPH作用下,該基因編碼的蛋白可以對四環(huán)素進(jìn)行修飾,使四環(huán)素失效。
上述結(jié)果表明,生長在禽畜養(yǎng)殖場土壤中抗四環(huán)素的細(xì)菌具有多種不同的抗性基因及其抗性機(jī)制,其中以編碼外排泵蛋白的基因占優(yōu)勢。這使得細(xì)菌可將進(jìn)入體內(nèi)的四環(huán)素重新泵至外環(huán)境,從而造成更大面積的四環(huán)素污染;另外,在四環(huán)素的低致死劑量的持續(xù)排放下,又會進(jìn)一步加劇tet基因的富集。
為了對樣品中常見的tetA、tetC、tetG和tetX等4種四環(huán)素抗性基因作進(jìn)一步的研究,我們對其進(jìn)行了實(shí)時熒光定量分析。本研究在前述PCR定性結(jié)果的基礎(chǔ)上,將樣品中所獲得的tetA、tetC、tetG和tetX等4種四環(huán)素抗性基因的測序結(jié)果與GeneBank中的目的序列比對發(fā)現(xiàn),其吻合率在99%以上,進(jìn)一步確認(rèn)了樣品中存在tetA、tetC、tetG和tetX等4種抗性基因。
以成功獲得含有目的基因的質(zhì)粒制作qPCR的標(biāo)準(zhǔn)曲線,并通過LightCycler?480熒光定量PCR系統(tǒng)所攜帶的樣品溶解曲線的設(shè)定程序來排除非特異性擴(kuò)增的干擾。
表3 tet-ARGs拷貝數(shù)與樣品DNA濃度的比值(copies/g DNA)
首先,采用含有目的基因的質(zhì)粒為樣品,獲得所對應(yīng)目的基因tetA、tetC、tetG和tetX的溶解溫度分別取84 ℃、84 ℃、84 ℃和78 ℃。選擇某一樣品對所設(shè)定的PCR反應(yīng)條件及溶解溫度進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),通過觀察溶解曲線的單峰狀態(tài),以確保該反應(yīng)條件不會出現(xiàn)基因的非特異性擴(kuò)增。tetA、tetC、tetG和tetX標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒的起始濃度分別為336.5、26.5、587.0和111.0 ng/μL。將質(zhì)粒通過10倍系列稀釋后進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR反應(yīng),可得到以CT為縱坐標(biāo),以拷貝數(shù)及初始濃度相應(yīng)關(guān)系所得基因濃度為橫坐標(biāo)的標(biāo)準(zhǔn)曲線。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,所有標(biāo)準(zhǔn)曲線的R2在1~0.997之間,滿足定量分析要求。通過測定ARGs的拷貝數(shù)與不同樣品所得DNA濃度的比值,可以代表ARGs在樣品細(xì)菌種群中總基因的含量比,亦即ARGs在環(huán)境中細(xì)菌總基因中的豐度,其結(jié)果列于表3中。從表3可知,4種tet-ARGs的豐度范圍在6.49×102~8.89×108之間,其中tetC在樣品中總體豐度最高(1.32×105~8.89×108),其次分別為tetG(2.60×104~1.75×108),tetA(1.57×102~5.75×105)和tetX(6.49×102~1.27×104)。在16個采樣點(diǎn)中,tetC和tetG copies/g DNA達(dá)到108數(shù)量級以上的均達(dá)到50%。表3中7、8和9號采樣點(diǎn)離養(yǎng)殖場污染源比較遠(yuǎn)(約300 m),但該3個采樣點(diǎn)含量達(dá)到105數(shù)量級。除tetC之外,tetA和tetA在樣品中含量相對較低,但所有采樣點(diǎn)的copies/gDNA也處于102~105之間。
以珠海某養(yǎng)殖場土壤中細(xì)菌四環(huán)素抗性基因?yàn)橹饕芯繉ο?,采用DNA提取、基因克隆、定性PCR和熒光定量PCR等分子生物學(xué)方法研究了9種四環(huán)素抗性基因的存在及其污染水平。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在所采集的16個土壤樣品中共檢出8種四環(huán)素抗性基因,樣品檢出率大多數(shù)在40%~94%之間;對其中常用的4種抗性基因的PCR定量分析結(jié)果表明,所有采樣點(diǎn)中tetC和tetG的copies/g DNA達(dá)到108數(shù)量級的占50%,其余采樣點(diǎn)tetC copies/g DNA含量也在102~105之間。與國內(nèi)外其他同類研究[14],這種相對高的檢出率和高抗性基因水平表明目標(biāo)養(yǎng)殖場的抗性基因污染已十分嚴(yán)重,有必要進(jìn)行更加廣泛和深入的研究。
參考文獻(xiàn):
[1] MARTINEZ J L, BAQUERO F. Mutation frequencies and antibiotic resistance [J]. Antimicrob Agents Chemothe, 2000, 44: 1771-1777.
[2] MARTINEZ J L, BAQUERO F, ANDERSSON D I. Predicting antibiotic resistance [J]. Nat Rev Microbiol, 2007, 5: 958-965.
[3] LINDBERG R H, BJORKLUND K, RENDAHL P, et al. Environmental risk assessment of antibiotics in the Swedish environment with emphasis on sewage treatment plants [J]. Water Res, 2007, 41: 613-619.
[4] TSUI W H, YIM G, WANG H H, et al. Dual effects of MLS antibiotics: transcriptional modulation and interactions on the ribosome [J]. Chem Biol, 2004, 11: 1307-1316.
[5] DAVIES J. Are antibiotics naturally antibiotics? [J] Ind Microbiol Biotechnol, 2006, 33: 496-499.
[6] LINARES J F, GUSTAFSSON I, BAQUERO F, et al. Antibiotics as intermicrobial signaling agents instead of weapons [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2006, 103: 19484-19489.
[7] YIM G, WANG H H, DAVIES J. Antibiotics as signaling molecules [J]. PhilosTrans Royal Soc B Biol Sci, 2007, 362: 1195-1200.
[8] 羅義, 周啟星. 抗生素抗性基因(ARGs):一種新型環(huán)境污染物[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2008, 28 (8):1499-1505.
[9] 楊穎. 北江水環(huán)境中抗生素抗性基因污染分析[D]. 廣州:中山大學(xué)分析化學(xué)系. 2008.
[10] 朱春敬. 環(huán)境中抗生素抗性基因污染的初步研究[D].廣州:中山大學(xué)分析化學(xué)系. 2008.
[11] 鄒世春,朱春敬,賀竹梅,等. 北江河水中抗生素抗性基因污染初步研究[J].生態(tài)毒理學(xué)報(bào),2009, 4 (5): 655-660.
[12] NG L K, MARTIN I, ALFA M, et al. Multiplex PCR for the detection of tetracycline resistant genes [J]. Molecular and Cellular Probes, 2001, 15: 209-215.
[13] ZHANG T, ZHANG M, ZHANG X, et al. Tetracycline resistance genes and tetracycline resistant lactose-fermenting Enterobacteriaceae in activated sludge of sewage treatment plants [J]. Environ Sci Technol, 2009, 43: 3455-3460.
[14] 吳楠,喬敏,朱永官.豬場土壤中5種四環(huán)素抗性基因的檢測和定量[J].生態(tài)毒理學(xué)報(bào),2009, 4(5): 705-710.