何 莉,周煥娟
在我國,白血病是兒童惡性腫瘤中發(fā)病率最高的疾病,其中以急性淋巴細胞白血病(Acute lymphoblastic leukemia,ALL)最多見。糖皮質(zhì)激素(Glucocorticoid,GC)是治療ALL 最常用的藥物之一,對GC 敏感性的評估已作為兒童ALL 的一項獨立的預(yù)后因素[1]。近年研究發(fā)現(xiàn),在小兒初治ALL 中,10% ~20%病例對GC 原發(fā)耐藥,復(fù)發(fā)病例中70%GC 耐藥,耐藥率明顯上升,嚴重威脅著小兒ALL 的療效及預(yù)后[2]。但目前對GC 耐藥機制的產(chǎn)生尚未十分明確,因此,探索GC 的耐藥機制并尋求逆轉(zhuǎn)GC 耐藥的治療方案是當前治療兒童ALL 迫切需要解決的問題。絲裂原活化蛋白激酶(Mitogen-activated protein kinases,MAPK)是細胞內(nèi)廣泛表達的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,經(jīng)磷酸化激活,參與多種細胞反應(yīng)的調(diào)節(jié),如細胞增殖、分化、凋亡及細胞周期調(diào)控等。近年研究發(fā)現(xiàn),MAPK 途徑在GC 誘導(dǎo)的凋亡及GC 耐藥產(chǎn)生機制中發(fā)揮重要作用。
MAPK 信號通路的激活由三級級聯(lián)反應(yīng)完成:細胞外刺激激活MAPK 激酶的激酶(MAPKKK/MKKK),進而激活MAPK 激酶(MAPKK,MKK/MEK),最后激活MAPK。MAPK 家族主要包括3 個組成:細胞外信號調(diào)節(jié)蛋白激酶(Extracellular signal-regulated kidnase,ERK)、c-jun N 末端激酶(c-jun N-terminal kidnase JNK)及p38 MAPK。Ras/Raf/MEK/ERK 通路是MAPK 信號通路在白血病中最具特征的通路。ERK 亞族包括ERK1、ERK2,主要調(diào)節(jié)細胞增殖和分化。JNK 亞族包括JNK1、JNK2 和JNK3,與ERK 及p38 MAPK 信號通路有密切關(guān)系,主要介導(dǎo)前凋亡信號、生長抑制及炎性反應(yīng)。p38 亞族包括p38α、p38β、p38γ 和p38δ,主要參與調(diào)節(jié)細胞應(yīng)激、凋亡及細胞周期等。MAPK 信號通路由不同的刺激所激活,可產(chǎn)生不同的細胞效應(yīng);對于不同的細胞類型,MAPK 活化所引起的細胞效應(yīng)也不同。
2.1 EKR 信號通路與白血病 為了探討ERK 信號通路在伊馬替尼耐藥的Ph 染色體陽性的ALL中的作用,Suzuki 等[3]將從1 名Ph(+)ALL 患者初發(fā)及復(fù)發(fā)時提取的細胞分別定義為NPhA1 及NPhA2,并從后者衍生出NPhA2/STIR,三者對伊馬替尼的耐藥依次遞增。研究發(fā)現(xiàn),相對于NPhA1 細胞而言,磷酸化的MEK 及ERK 在NPhA2 細胞中輕微升高,而在NPhA2/STIR 細胞中則顯著升高。同時,聯(lián)合應(yīng)用伊馬替尼及MEK抑制劑可顯著抑制NPhA2/STIR 細胞增殖。由此推斷,RAS/MAPK 通路的激活介導(dǎo)伊馬替尼耐藥的產(chǎn)生。
除了對ALL 療效及耐藥的影響,ERK 信號通路的異常調(diào)節(jié)也是急性髓系白血病(Acute myelogenous leukemia,AML)的發(fā)病機制之一。ERK通路異常激活使Bcl-2 表達上調(diào),但Bax 不能從磷酸化的Bad 上解離,無法與Bcl-xl 抗凋亡蛋白結(jié)合成異二聚體,細胞凋亡的功能被抑制。ERK 阻滯劑PD98059 可抑制AML 細胞增殖并增強IL-6抗腫瘤作用。三氧化二砷(As2O3)聯(lián)合PD98059作用于慢性髓系白血病HL-60 細胞可顯著減少Bcl-2 的表達,同時使活化的caspase-3 表達增加,協(xié)同促進細胞凋亡。Zhou 等[4]發(fā)現(xiàn),阻斷ERK 信號通路可增強阿霉素誘導(dǎo)的HL-60 細胞凋亡作用,推測ERK 信號通路拮抗阿霉素的抗腫瘤效應(yīng)。ERK 通路在慢性淋巴細胞白血病(Chronic myelogenous leukemia,CLL)中被認為是幫助腫瘤細胞逃逸凋亡的信號,從而發(fā)揮保護腫瘤細胞的作用。此外,有研究指出[5],硼替佐米通過下調(diào)ERK 及p38 表達、上調(diào)JNK 表達促進慢性髓系白血病K562 耐藥株細胞凋亡,從而逆轉(zhuǎn)該細胞對柔紅霉素耐藥。Smal 等[6]指出,應(yīng)用ERK 阻滯劑U0126 及PD98059 干擾ERK 通路可增強2-氯-2'-脫氧腺苷(2-chloro-2'-deoxyadenosine,CdA)對B系慢性淋巴細胞白血病EHEB 細胞的毒性作用。MEK 信號通路阻滯劑AZD6244 聯(lián)合阿糖胞苷(Ara-C)先后應(yīng)用順序的不同對急性早幼粒白血病細胞的生長抑制發(fā)揮不同作用。先用Ara-C 處理1 d 后,再用AZD6244 繼續(xù)處理,可明顯抑制NB4 細胞生長,相反則明顯減弱生長抑制作用。由此可見,ERK 信號通路在多種化療藥物誘導(dǎo)白血病細胞凋亡過程中發(fā)揮不同作用,該通路阻滯劑聯(lián)合抗腫瘤藥物,可增強或抑制其誘導(dǎo)凋亡的效應(yīng)。
2.2 JNK 信號通路與白血病 Song 等[7]研究發(fā)現(xiàn),JNK 阻滯劑SP600125 及ERK1/2 MAPK 阻滯劑PD98059 以劑量依賴方式下調(diào)白介素18(IL-18)誘導(dǎo)的ULBP2 蛋白表達水平。暴露于IL-18的白血病細胞,ERK1/2 及JNK 磷酸化水平增加。MAPK 通路的不同家族成員在同一化療藥物誘導(dǎo)細胞凋亡過程中發(fā)揮不同作用。Torres 等[8]指出,ERK1/2 阻滯劑U0126 及p38 MAPK 阻滯劑SB203580 減少醋酸三葉豆苷(Trifolin acetate,TA)誘導(dǎo)的細胞死亡,與之相反,JNK 阻滯劑SP600125 卻顯著增加其誘導(dǎo)凋亡作用。在依托泊苷(VP-16)誘導(dǎo)細胞分化過程中,ERK 阻滯劑PD98059 降低VP-16 誘導(dǎo)分化作用,p38 MAPK 阻滯劑SB203580 增強其作用,而JNK 阻滯劑SP600125 則無明顯影響。對于CML 細胞增殖,Merkerova 等[9]通過RNA 干擾技術(shù)抑制JNK2 及p38 MAPK 基因表達并沒有發(fā)現(xiàn)CML 細胞增殖的明顯變化,表明單獨抑制JNK2 或p38 MAPK 基因不足以引起細胞增殖的停滯。
2.3 p38 MAPK 信號通路與白血病 MAPK 信號通路的多個家族成員之間形成復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),并相互影響。Hirosawa 等[10]發(fā)現(xiàn),p38 阻滯劑SB202190 可促進急性單核細胞白血病THP-1 及MV4-11 細胞生長,同時增加磷酸化C-Raf 及ERK表達,由此認為Ras-Raf-MEK-MAPK 通路參與SB202190 誘導(dǎo)的白血病細胞生長。Liu 等[11]指出,溴苯?;寤?磷脂酶A(2)誘導(dǎo)的淋巴瘤U937 細胞線粒體膜電壓消減及Bcl-2 表達下調(diào)可被p38 MAPK 阻止劑SB202190 所抑制。除了調(diào)控人類血液腫瘤細胞的增殖與凋亡,p38 MAPK 信號通路在動物細胞中亦發(fā)揮著重要作用。Jantova[12]在鼠白血病L1210 細胞中發(fā)現(xiàn),氨基乙酰喹啉(4-amino-3-acetylquinoline,AAQ)通過激活p38 MAPK 信號通路誘導(dǎo)細胞凋亡。
p38 MAPK 通路在急性白血病中可增強化療藥物誘導(dǎo)細胞凋亡作用。Amran 等[13]發(fā)現(xiàn),As2O3通過p38 MAPK 通路上調(diào)腫瘤壞死因子α(TNFα)誘導(dǎo)的HL-60、NB4 及U937 細胞凋亡。p38 MAPK 通路特異性阻滯劑可減弱As2O3聯(lián)合TNFα 引起的caspase-8/Bid 活化,Bax 移位、細胞色素C 釋放及細胞凋亡作用。除了參與調(diào)節(jié)化療藥物的細胞毒性作用,p38 通路還參與非藥物誘導(dǎo)的腫瘤細胞凋亡。Chen 等[14]應(yīng)用高壓氧處理急性淋巴白血病Jurkat 細胞、骨髓瘤NCI-H929 細胞及非小細胞肺癌A549 細胞、乳腺癌MCF-7 細胞,發(fā)現(xiàn)只有Jurkat 細胞和NCI-H929 細胞表現(xiàn)出顯著的細胞凋亡,這些細胞內(nèi)p38 MAPK 磷酸化水平顯著上調(diào)。
MAPK 信號通路參與調(diào)節(jié)GC 誘導(dǎo)的淋巴細胞凋亡過程,與GC 耐藥的產(chǎn)生有密切關(guān)系。GC誘導(dǎo)細胞凋亡是通過與GC 受體(Glucocorticoid receptor,GR)的基因效應(yīng)與非基因效應(yīng)共同完成的。在未與GC 結(jié)合時,GR 在細胞漿中與熱休克蛋白穩(wěn)定結(jié)合,當配體與GR 結(jié)合后,熱休克蛋白被解離,GR 通過絲氨酸作用達磷酸化水平并結(jié)合成同源二聚體形式(GRα/GRα)。在GC 敏感的細胞中,GC 與GR 結(jié)合體可進入線粒體及細胞核中發(fā)揮其誘導(dǎo)凋亡作用,而在GC 耐藥的細胞中只能進入細胞核。
JNK 及ERK 基礎(chǔ)磷酸化水平在GC 耐藥細胞中表達升高。JNK 和ERK 抑制GC 誘導(dǎo)的凋亡,而p38 MAPK 增強凋亡。GC 誘導(dǎo)的細胞凋亡與GC 依賴的GR 磷酸化水平及數(shù)量以及促凋亡蛋白Bim 的表達有關(guān)[15]。由此推論,細胞內(nèi)蛋白激酶的活化狀態(tài)可調(diào)節(jié)GR 的功能,從而影響白血病細胞對GC 誘導(dǎo)凋亡的敏感性。
3.1 EKR 信號通路與GC 耐藥的關(guān)系 MEK/ERK 信號通路被認為是傳遞抑凋亡信號。Rambal等[16]研究發(fā)現(xiàn),地塞米松聯(lián)合MEK/ERK 抑制劑PD184352 可增強地塞米松誘導(dǎo)Bim 蛋白的表達,活化促凋亡蛋白BAX/BAK 并使細胞色素C 從線粒體中釋放?;罨疎RK 可抑制GC 誘導(dǎo)的凋亡,因此,逆轉(zhuǎn)GC 耐藥的T-ALL 細胞對GC 的敏感性需要抑制ERK 信號通路。
3.2 JNK 信號通路與GC 耐藥的關(guān)系 對于不同的細胞種屬及刺激方式,JNK 信號通路可雙向調(diào)節(jié)細胞存活及凋亡。在某些細胞內(nèi)JNK 介導(dǎo)的Bim 蛋白磷酸化可增加其促凋亡作用,而在TALL Sup-T1 細胞中,活化的JNK 通過泛素蛋白酶體促進BimEL 磷酸化并降解[17]。JNK 阻滯劑SP600125 可使耐藥的T-ALL 及T 淋巴瘤細胞對GC 作用敏感[18-19]。Leung 等[17]在Sup-T1 T-ALL細胞中發(fā)現(xiàn),JNK 阻滯劑SP600125 上調(diào)能誘導(dǎo)促凋亡的BimEL 蛋白表達,從而推斷JNK 可拮抗GC 誘導(dǎo)的細胞凋亡。JNK 還可通過磷酸化促凋亡蛋白Bad 使其失活而抑制凋亡發(fā)生。
JNK 與mTOR 信號通路相互作用。mTOR 在細胞由G0期向G1期轉(zhuǎn)換過程中發(fā)揮重要作用。mTOR 的活化由P13K/Akt 信號介導(dǎo),mTOR 產(chǎn)生的信號通過調(diào)控基因水平mRNA 的轉(zhuǎn)錄促進細胞增殖與存活,因此在白血病腫瘤細胞的生物效應(yīng)中發(fā)揮重要作用[20]。mTOR 的過度表達與TALL 糖皮質(zhì)激素耐藥密切相關(guān)。JNK 阻滯劑SP600125 可抑制mTOR 下游靶位點蛋白磷酸化,使mTORC1 的抑制物REDD1 的表達增加。同時,mTOR 抑制劑雷帕霉素可抑制JNK 活性。由此推斷,JNK 與mTOR 之間有交叉作用,抑制其中一者可使另一者功能受限[21]。而雷帕霉素作為mTOR 抑制劑,被認為是可以逆轉(zhuǎn)糖皮質(zhì)激素耐藥的新型藥物[22]。
3.3 p38 MAPK 信號通路與GC 耐藥的關(guān)系p38 MAPK 是逆轉(zhuǎn)細胞GC 耐藥必不可少的。在GC 敏感的CEM 細胞中發(fā)現(xiàn),GR 在Ser211 位點被p38 MAPK 磷酸化,引起細胞核轉(zhuǎn)位及轉(zhuǎn)錄激活GR,從而增加GR 誘導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄及凋亡。但Chen等[23]發(fā)現(xiàn),在GC 敏感的淋巴瘤細胞中抑制p38 MAPK 并不減少Dex 誘導(dǎo)的Ser211 磷酸化。Miller 等[24]研究發(fā)現(xiàn),地塞米松作用于CEM 細胞24 h 后可觀察到p38 MAPK 磷酸化水平升高,提示GC 介導(dǎo)p38 MAPK 活化。Bim 表達上調(diào)需要p38 MAPK 參與。p38 MAPK 可直接與Bim 相互作用,使Bim Ser65 位點磷酸化增強其促凋亡活性。相反,p38 MAPK 磷酸化使抗凋亡蛋白Bcl-2蛋白失活。
兒童急性淋巴細胞白血病對糖皮質(zhì)激素耐藥是預(yù)后不佳的一個重要因素[25],逆轉(zhuǎn)白血病細胞對GC 的耐藥是目前治療小兒ALL 需要攻克的首要難題。MAPK 信號通路與細胞凋亡關(guān)系密切,在凋亡過程中發(fā)揮重要作用,并且在體內(nèi)形成復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),協(xié)同調(diào)節(jié)細胞凋亡與存活的平衡性,有望作為新型的白血病靶向治療藥物并增加耐藥細胞對GC 誘導(dǎo)凋亡的敏感性。目前雖對MAPK 在白血病細胞凋亡機制中的作用研究有了一定進展,并有部分信號通路阻滯劑已進入臨床研究,但要完全揭示其作用機制,以達到廣泛臨床應(yīng)用,還需要深入研究,進一步闡明MAPK 相關(guān)蛋白的生物學(xué)作用,分離提取安全有效的特異性信號通路阻滯劑,大樣本的臨床對照試驗證實靶向藥物療效有效性的研究等。
[1] Hamilton A,Gallipoli P,Nicholson E,et al. Targeted therapy in haematological malignancies[J]. J Pathol,2010,220(4):404-418.
[2] 李強,郭霞.小兒急性淋巴細胞白血病潑尼松試驗敏感者和不敏感者臨床及MIC 特征研究[J]. 中華兒科雜志,2007,45(11):865-867.
[3] Suzuki M,Abe A,Imagama S,et al. BCR-ABL-independent and RAS / MAPK pathway-dependent form of imatinib resistance in Ph-positive acute lymphoblastic leukemia cell line with activation of EphB4[J].Eur J Haematol,2010,84(3):229-238.
[4] Zhou L,Luan H,Dong X,et al. Activation of the PI3K/Akt and MAPK signaling pathways antagonizes adriamycin-induced HL-60 leukemia cell apoptosis[J]. Mol Med Report,2010,3(4):641-644.
[5] Lu S,Chen Z,Yang J,et al.The effects of proteasome inhibitor bortezomib on a P-gp positive leukemia cellline K562/A02[J].Int J Lab Hematol,2010,32(1 Pt 1):e123-e131.
[6] Smal C,Lisart S,Maerevoet M,et al. Pharmacological inhibition of the MAPK/ERK pathway increases sensitivity to 2-chloro-2'-deoxyadenosine(CdA)in the B-cell leukemia cell line EHEB[J].Biochem Pharmacol,2007,73(3):351-358.
[7] Song H,Kim KE,Hur D,et al.IL-18 enhances ULBP2 expression through the MAPK pathway in leukemia cells[J].Immunol Lett,2008,120(1-2):103-107.
[8] Torres F,Quintana J,Diaz JG,et al. Trifolin acetate-induced cell death in human leukemia cells is dependent on caspase-6 and activates the MAPK pathway[J]. Apoptosis,2008,13(5):716-728.
[9] Merkerova M,Bruchova H,Brdicka R. JNK2 and p38 MAPK over-expressions do not represent key events in chronic myeloid leukemia transformation[J]. Neoplasma,2007,54(6):503-510.
[10] Hirosawa M,Nakahara M,Otosaka R,et al. The p38 pathway inhibitor SB202190 activates MEK/MAPK to stimulate the growth of leukemia cells[J]. Leuk Res,2009,33(5):693-699.
[11] Liu WH,Kao PH,Chiou YL,et al.Catalytic activity-independent pathway is involved in phospholipase A(2)-induced apoptotic death of human leukemia U937 cells via Ca(2 +)-mediated p38 MAPK activation and mitochondrial depolarization[J].Toxicol Lett,2009,185(2):102-109.
[12] Jantova S,Repicky A,Letasiova S,et al. 4-Amino-3-acetylquinoline-induced apoptosis of murine L1210 leukemia cells involves ROS-mitochondrial-mediated death signaling and activation of p38 MAPK[J]. Cell Biochem Funct,2008,26(5):609-619.
[13] Amran D,Sanchez Y,F(xiàn)ernandez C,et al.Arsenic trioxide sensitizes promonocytic leukemia cells to TNFalpha-induced apoptosis via p38-MAPK-regulated activation of both receptormediated and mitochondrial pathways[J]. Biochim Biophys Acta,2007,1773(11):1653-1663.
[14] Chen YC,Chen SY,Ho PS,et al.Apoptosis of T-leukemia and B-myeloma cancer cells induced by hyperbaric oxygen increased phosphorylation of p38 MAPK[J].Leuk Res,2007,31(6):805-815.
[15] Garza AS,Miller AL,Johnson BH,et al.Converting cell lines representing hematological malignancies from glucocorticoidresistant to glucocorticoid-sensitive:signaling pathway interactions[J].Leuk Res,2009,33(5):717-727.
[16] Rambal AA,Panaguiton ZL,Kramer L,et al. MEK inhibitors potentiate dexamethasone lethality in acute lymphoblastic leukemia cells through the pro-apoptotic molecule BIM[J].Leukemia,2009,23(10):1744-1754.
[17] Leung KT,Li KK,Sun SS,et al.Activation of the JNK pathway promotes phosphorylation and degradation of BimEL-a novel mechanism of chemoresistance in T-cell acute lymphoblastic leukemia[J].Carcinogenesis,2008,29(3):544-551.
[18] Spokoini R,Kfir-Erenfeld S,Yefenof E,et al. Glycogen synthase kinase-3 plays a central role in mediating glucocorticoidinduced apoptosis[J]. Mol Endocrinol,2010,24(6):1136-1150.
[19] Garza AS,Miller AL,Johnson BH,et al.Converting cell lines representing hematological malignancies from glucocorticoidresistant to glucocorticoid-sensitive:signaling pathway interactions[J].Leuk Res,2009,33(5):717-727.
[20] Evangelisti C,Ricci F,Tazzari P,et al. Targeted inhibition of mTORC1 and mTORC2 by active-site mTOR inhibitors hascytotoxic effects in T-cell acute lymphoblastic leukemia[J].Leukemia,2011,25(5):781-791.
[21] Jin HO,Seo SK,Woo SH,et al.SP600125 negatively regulates the mammalian target of rapamycin via ATF4-induced Redd1 expression[J].FEBS Lett,2009,583(1):123-127.
[22] Bonapace L,Bornhauser BC,Schmitz M,et al. Induction of autophagy-dependent necroptosis is required for childhood acutelymphoblastic leukemia cells to overcome glucocorticoid resistance[J].J Clin Invest,2010,120(4):1310-1323.
[23] Chen W,Dang T,Blind RD,et al. Glucocorticoid receptor phosphorylation differentially affects target gene expression[J].Mol Endocrinol,2008,22(8):1754-1766.
[24] Miller AL,Webb MS,Copik AJ,et al. p38 Mitogen-activated protein kinase(MAPK)is a key mediator in glucocorticoid-induced apoptosis of lymphoid cells:correlation between p38 MAPK activation and site-specific phosphorylation of the human glucocorticoid receptor at serine 211[J].Mol Endocrinol,2005,19(6):1569-1583.
[25] Chiu PP,Jiang H,Dick JE.Leukemia-initiating cells in human T-lymphoblastic leukemia exhibitglucocorticoid resistance[J].Blood,2010,116(24):5268-5279.