楊志勇,王占良,張建麗,張亦農(nóng)
(國家體育總局中國反興奮劑中心,北京 100029)
麻醉劑類藥物主要包含嗎啡類藥物、可卡因類藥物和大麻,被世界反興奮劑機構(gòu)(WADA)列入禁藥名單[1]。臨床上嗎啡類藥物屬阿片類生物堿,為阿片受體激動劑,激動中樞神經(jīng)阿片受體而產(chǎn)生強大的鎮(zhèn)痛作用,主要經(jīng)肝臟代謝,在肝內(nèi)與葡萄糖醛酸結(jié)合,少量為游離型;代謝物主要包含可待因、嗎啡、雙氫可待因、6-乙酰嗎啡、羥考酮等,經(jīng)腎臟排泄,尿樣中主要為結(jié)合型代謝物??煽ㄒ騽e名古柯堿,是人類發(fā)現(xiàn)的第一種具有局麻作用的天然生物堿,主要經(jīng)肝臟代謝為苯甲酰愛康寧,在肝內(nèi)與葡萄糖醛酸結(jié)合,經(jīng)腎臟排泄,尿樣中主要為結(jié)合型代謝物。大麻主要成分為四氫大麻酚、大麻二酚和大麻酚,主要經(jīng)肝臟代謝為四氫大麻酚酸,在肝內(nèi)與葡萄糖醛酸結(jié)合,經(jīng)腎臟排泄,尿中主要為結(jié)合型代謝物,四氫大麻酚酸為WADA鑒別運動員是否服用大麻的唯一目標定量物質(zhì)[1]。
以上的7種尿樣中麻醉劑常見代謝物質(zhì)均為葡萄糖醛酸結(jié)合型代謝物,常規(guī)分析方法都需要酶解反應后,去除葡萄糖醛酸分析;該7種物質(zhì)的酸堿性差異很大,可待因、嗎啡、雙氫可待因、6-乙酰嗎啡和羥考酮為堿性,苯甲酰愛康寧和四氫大麻酚酸為酸性,液液提取需要酸、堿性分別提取,費時費力;提取溶劑也有差別,苯甲酰愛康寧需要使用特殊的混合溶劑(V(氯仿)∶V(異丙醇)=9∶1);而嗎啡的液液提取回收率很差。固相萃取技術(shù)的出現(xiàn)解決以上的液液提取的不足,樣品經(jīng)酶解后直接經(jīng)過Oasis HLB小柱純化,樣品回收率和檢測限均顯著提高。
目前,對此類藥物的定性分析主要采用GC/MS、LC/MS 方 法[2-20]。本 實 驗基 于 GC/MS技術(shù)和固相萃取簡單快速的樣品前處理過程,建立一個快速準確檢測尿樣中的麻醉劑類藥物代謝物的方法,旨在快速檢測尿樣中7個常見代謝物:可待因、嗎啡、四氫大麻酚酸、雙氫可待因、苯甲酰愛康寧、6-乙酰嗎啡、羥考酮(其結(jié)構(gòu)分別示于圖1)。
圖1 可待因、雙氫可待因、四氫大麻酚酸、苯甲酰愛康寧、6-乙酰嗎啡、嗎啡、羥考酮的化學結(jié)構(gòu)式Fig.1 Chemical structure of Codeine,Dihydrocodeine,Carboxy-THC,Benzoylecgonine,6-acetylmorphine,Morphine,and Oxycodone
7890GC-5975MS氣相色譜-質(zhì)譜儀:美國Agilent公司產(chǎn)品;色譜柱 HP-5MS柱:美國Agilent公司產(chǎn)品;低溫恒溫循環(huán)液浴兩用槽:杭州雪中炭技術(shù)公司產(chǎn)品;Legend T低速離心機:美國 Thermo公司產(chǎn)品;Dri-block DB-3D 氮氣吹干裝置:美國Techne公司產(chǎn)品;沃特斯20孔固相萃取裝置和HLB Oasis 3cc 60mg反相固相萃取柱:美國Waters公司產(chǎn)品。
可待因、嗎啡、雙氫可待因、苯甲酰愛康寧、6-乙酰嗎啡和羥考酮從澳大利亞購買,四氫大麻酚酸為實驗室間贈送。分別精密稱取配制成1g/L的甲醇溶液(四氫大麻酚酸為0.1g/L);β-葡萄糖醛酸甙酶和甲基睪酮(內(nèi)標,20mg/L)購自Sigma公司;甲醇為色譜純;磷酸氫二鉀、磷酸二氫鉀均為分析純。0.1mol/L磷酸氫二鉀/磷酸二氫鉀磷酸鹽緩沖液pH 6.9;三甲基硅基三氟乙酰胺:MSTFA,美國Sigma公司產(chǎn)品;三甲基碘硅烷:TMSI,美國Sigma公司產(chǎn)品;二硫代赤糖蘚醇:分析純,美國Sigma公司產(chǎn)品,以V(MSTFA)∶V(TMSI)∶V(二硫代赤糖蘚醇)=1 000∶3∶1的溶劑為衍生化試劑。
尿樣2mL,20μL內(nèi)標(甲基睪酮,20mg/L)甲醇溶液,加入1mL磷酸緩沖液,50μLβ-葡萄糖醛酸甙酶(2 500unit),55℃恒溫水浴中靜置120min,取出樣品冷卻至室溫,上樣 HLB Oasis 3cc 60mg反相固相萃取柱(依次用3mL甲醇,3mL水活化),3mL20%甲醇水溶液淋洗后,采用3mL甲醇洗脫,60℃下用氮氣吹干,加入衍生化試劑50μL,振蕩3s后轉(zhuǎn)移入小瓶中,加蓋,于70℃反應30min,進樣2μL,進行GC/MS分析。
分別準確量取7種藥物的標準儲備溶液配制成混合標準溶液,濃度列于表1。取10μL該溶液,空白尿樣2mL,加入20μL內(nèi)標,按1.2步驟開始分析,結(jié)果示于圖2。
表1 化合物1~7的質(zhì)譜參數(shù)Table 1 Mass parameters of compounds 1—7
色譜柱 HP-5MS柱(25m ×0.2mm×0.33 μm);進樣口溫度:280℃;接口溫度:300℃;采用恒壓模式,柱壓:75kPa;分流比10∶1;進樣2 μL;程序升溫:180℃保持0min,以10℃/min升到220℃,以5℃/min升到260℃,以10℃/min升到300℃,保持10min;質(zhì)譜離子源為EI源,離子源溫度230℃,源電壓70eV;采集模式:SIM方式。溶劑延遲時間6min?;衔锏倪x擇離子列于表1。
量取1.3中的標準儲備溶液稀釋成1mg/L的溶液,量取此溶液加入2mL的空白尿樣中,配制成含量為2、5和10mg/L的標準添加尿樣,采用1.2的樣品處理方法,進樣分析,按照S/N=3的要求,計算檢測限,檢測限圖示于圖3。
高、中、低3種濃度的標準溶液中分別加入空白尿樣2mL,每個濃度平行測定6份,按照1.2的前處理方法進行分析。內(nèi)標校正后與平行處理的標準溶液添加的空白質(zhì)控樣品比對計算回收率,結(jié)果列于表2。
圖2 空白樣本添加標準品后的選擇離子圖和化合物1~7的質(zhì)譜圖Fig.2 Mass spectra of compounds 1—7and spectra of blank urine spiked quality control solution
圖3 7種常見代謝物的檢測限圖Fig.3 Detection limit spectrum of 7kinds of narcotic agents
表2 化合物1~7的相對回收率Table 2 The relative recovery of compounds 1—7
從圖2的GC/MS選擇離子圖中可以看到,空白尿樣中添加的7個標準物質(zhì)與內(nèi)標具有良好的分離度,各化合物的保留時間與內(nèi)標位置適中,滿足色譜分離的要求?;衔?~7的質(zhì)譜結(jié)果中均含有衍生化反應的準分子離子峰,化合物1、2、4的準分子離子峰為單個TMS的分子離子,其余的則為2TMS的分子離子,衍生化反應主要發(fā)生在化合物的羥基、酮基和羰基。化合物1、2、5~7的化學結(jié)構(gòu)很相似,具有相似的母核,質(zhì)譜圖中均具有[M-CH3]+的碎片,而且強度比較一致,在10%左右,且具有相似的碎片離子 m/z 178、m/z 196、m/z 234或 m/z 236等。化合物3的質(zhì)譜圖中含有[M-O=COTMS]+碎片,即m/z371,同時也是基峰;m/z473為[M-CH3]+的碎片?;衔?的的分子離子峰為m/z361,主要碎片m/z240為連接兩個環(huán)狀結(jié)構(gòu)的酯鍵斷裂形成,即[M-C6H5COO]+碎片。
化合物的檢測限結(jié)果示于圖3,從圖3可以看出,按照S/N=3計算化合物1~7的檢測限均為5mg/L,以上結(jié)果滿足了尿樣檢測的需要。
在高、中、低3種濃度的回收率實驗中,化合物1~7的回收率結(jié)果分布在75%~123%之間,基本滿足了定性檢測要求。
本方法已成功應用于能力驗證《尿中常見毒物的測定》,成功檢出尿樣中的可待因和嗎啡,其選擇離子流圖示于圖4;另外該方法作為實驗室內(nèi)標準方法用于檢測社會送檢的非運動員尿樣。
固相萃取技術(shù)應用已經(jīng)非常廣泛,其優(yōu)勢是解決了液體樣本中難于液液提取或濃度很低不易富集等困擾,一次將目標化合物全部提取,簡單而又省時,提高了檢測靈敏度和重現(xiàn)性;但是目前還沒有應用到興奮劑尿樣的常規(guī)檢測中,它還只是作為確證方法應用于可疑樣品的確證分析。隨著該方法的成熟和成本降低,將固相萃取技術(shù)應用到興奮劑尿樣常規(guī)檢測已是大勢所趨。
對于大部分實驗室,氣質(zhì)聯(lián)用儀器為基本配置,因此,結(jié)合固相萃取技術(shù)的本方法具有更廣泛的適用性和實用性。
圖4 一例陽性樣品的選擇離子流圖Fig.4 Multiple reaction monitoring spectra of a positive sample
[1]WADA Prohibited list 2011[M].World Anti-Doping Agency,2011:1-10.
[2]MARC L,NADJA G,MICHAEL S.Picomolar concentrations of morphine in human urine determined by dansyl derivatization and liquid chromatography– mass spectrometry[J].J Chromatogr B,2009,879,933-937.
[3]UTE H,SONJA S,EBERHARD S,et al.Highly sensitive gas chromatographic–tandem mass spectrometric method for the determination of morphine and codeine in serum and urine in the femtomolar range[J].J Chromatogr B,1999,727,81-88.
[4]TAKESHI S,HIROYASU M,SANNAE T et al.Rapid simultaneous determination of ephedrines,amphetamines,cocaine,cocaine metabolites,and opiates in human urine by GC/MS[J].J Pharma Biomed Anal,2007,43:358-363.
[5]WOLFGANG W,MYLENE G,SUSANNE V,et al.Fast confirmation of 11-nor-9-carboxy-Δ9-tetrahydrocannabinol(THC-COOH)in urine by LC/MS/MS using negative atmospheric-pressure chemical ionisation(APCI)[J].Foren Sci Inter,2001,121:103-107.
[6]梁 晨,葉海英,張玉榮,等.柱切換LC-MS/MS分析吸毒尿樣中的嗎啡、O6-單乙酰嗎啡、可待因、乙酰 可 待 因 [J].質(zhì) 譜 學 報,2011,32(3):159-163.
[7]梁 晨,葉海英,張玉榮,等.吸毒者尿樣中3-β-D-葡萄糖醛酸嗎啡、嗎啡、O6-單乙酰嗎啡和可待因的LC-MS/MS分析[J].質(zhì)譜學報,2010,31(4):224-227.
[8]崔凱榮,吳 筠,王 杉,等.尿中可待因及其代謝物的GC/MS及SIM測定[J].質(zhì)譜學報,1994,15(1):50-53.
[9]徐建中,馮 育,何 毅.采用 GC-MS-NCI方法檢測毛發(fā)中大麻及其代謝物[J].質(zhì)譜學報,2000,21(Suppl):105.
[10]MARIA M,CRISTIANA S,CLAUDIA V,et al.Simultaneous hair testing for opiates,cocaine,and metabolites by GC/MS:a survey of applicants for driving licenses with a history of drug use[J].Foren Sci Inter,2000,107:157-167.
[11]MARCHEI E,COLONE P,NASTASI G,et al.On-site screening and GC – MS analysis of cocaine and heroin metabolites in body-packers urine[J].J Pharma Biomed Anal ,2008,48:383-387.
[12]PASCAL K,PATRICE M.Simultaneous determination of opiates,cocaine and major metabolites of cocaine in human hair by gas chromotography/mass spectrometry(GC/MS)[J].Foren Sci Inter,1995,73:93-100.
[13]THOMAS B,ELSA L,ASBJORG S.Determi-nation of opiates and cocaine in urine by high pH mobile phase reversed phase UPLC-MS/MS[J].J Chromatogr B,2009,877:421-432.
[14]HU Z Y,ZOU Q G,TIAN J X,et al.Simultaneous determination of codeine,ephedrine,guaiphenesin and chlorpheniramine in beagle dog plasma using high performance liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometric detection:Application to a bioequivalence study[J].J Chromatogr B,2011,879:3 937-3 942.
[15]ANITA B W,JITKA C,WOLFGANG T.Analysis of codeine,dihydrocodeine and their glucuronides in human urine by electrokinetic capillary immunoassays and capillary electrophoresis–ion trap mass spectrometry[J].J Chromatogr A,2000,895:133-146.
[16]MACIEJ J B,ROLF M,MANFRED E,et al.Determination of morphine and its 3-and 6-glucuronides,codeine,codeine-glucuronide and 6-monoacetylmorphine in body fluids by liquid chromatography atmospheric pressure chemical ionization mass spectrometry[J].J Chromatogr B,1997,703:115-127.
[17]CHRISTINE M,CYNTHIA C,KATHERINE C.Determination of cocaine,benzoylecgonine,cocaethylene and norcocaine in human hair using solid-phase extraction and liquid chromatography with tandem mass spectrometric detection[J].J Chromatogr B,2007,859:208-212.
[18]ALBERT D F,DAVID W.Urinary excretion profiles of 11-nor-9-carboxy-Δ9-tetrahydrocannabinol and 11-h(huán)ydroxy-Δ9-THC:cannabinoid metabolites to creatinine ratio study IV[J].Foren Sci Inter,2004,143:147-152.
[19]RICHARD A G,ERIC T M,ALLAN B,et al.Validated method for the simultaneous determination ofΔ9-tetrahydrocannabinol(THC),11-h(huán)ydroxy-THC and 11-nor-9-carboxy-THC in human plasma using solid phase extraction and gas chromatography–mass spectrometry with positive chemical ionization[J].J Chromatogr B,2003,798:145-154.
[20]ALBERT D.F,DAVID W.Urinary excretion profiles of 11-nor-9-carboxy-Δ9-tetrahydro-cannabinol:Study III.AΔ9-THC-COOH to creatinine ratio study[J].Foren Sci Inter,2003,137:196-202.