朱建新,王宏,何薇*
(1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京中醫(yī)醫(yī)院,北京100010;2.北京市中醫(yī)研究所,北京100010)
首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京中醫(yī)醫(yī)院皮膚科常用協(xié)定處方——清熱除濕湯是由已故著名中醫(yī)皮外科專家趙炳南教授根據(jù)龍膽瀉肝湯化裁而來(lái),為皮膚科臨床應(yīng)用多年的經(jīng)驗(yàn)方劑,該方對(duì)急性濕疹、接觸性皮炎、帶狀皰疹、藥疹等皮膚病急性濕熱癥有較好的療效,同時(shí)體現(xiàn)了中醫(yī)異病同治治療原則的臨床優(yōu)越性。方中龍膽性寒,味苦,歸肝、膽經(jīng),具有清熱燥濕,瀉肝膽火的功效,為君藥;黃芩性寒,味苦,歸肺、膽、脾、大腸、小腸經(jīng),具有清熱燥濕,瀉火解毒,止血,安胎等作用,為臣藥;車前草性寒,味甘,歸肝、腎、肺、小腸經(jīng),具有清熱利尿通淋,祛痰,涼血,解毒的作用,為佐藥。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì),對(duì)其提取工藝進(jìn)行了實(shí)驗(yàn)研究,確定影響提取工藝的顯著性因素。已有的研究表明[1-3],龍膽、黃芩等有效成分在乙醇中有較高溶解度,故這幾味藥材均采用乙醇提取;白茅根[4-5]等藥材含有豐富的多糖具有水溶性,故采用水提。結(jié)果報(bào)告如下。
1.1 儀器Agilent1100高效液相色譜儀(G1312A型泵,G1365B型檢測(cè)器);SK7210HP超聲波清洗機(jī);DU 800紫外分光光度計(jì);ZK-072型真空干燥箱(上海市實(shí)驗(yàn)儀器總廠);METTLER TOLEDO精密電子天平。
1.2 試藥龍膽苦苷、黃芩苷、無(wú)水葡萄糖對(duì)照品(由中國(guó)藥品生物制品檢定所提供,批號(hào)分別為:110770-200409;110715-201016;110833-200904);大車前苷對(duì)照品(由上海華壹生物科技有限公司提供,經(jīng)HPLC分析,純度≥98%,CAS:104777-68-6);甲醇(色譜純,F(xiàn)isher Scientific公司提供);乙腈(色譜純,CNW公司提供)。其他試劑均為分析純。
2.1.1 龍膽苦苷測(cè)定方法
2.1.1.1 色譜條件[6]色譜柱為Kromasil 100-5 C18(150 mm×4.6 mm);流動(dòng)相為水-甲醇(75∶25);體積流量1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)270 nm;柱溫為室溫;理論塔板數(shù)按龍膽苦苷計(jì)算應(yīng)不低于4 000;在此條件下,供試品中龍膽苦苷峰與其他峰能達(dá)到基線分離,結(jié)果見(jiàn)圖1。
2.1.1.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線制備取龍膽苦苷對(duì)照品適量,精密稱定,加甲醇制成每1 mL含0.5 mg的溶液,即得。精密移取上述龍膽苦苷對(duì)照品溶液0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5 mL,置5 mL量瓶中,甲醇定容,進(jìn)樣量為5 μL,依法測(cè)定。以對(duì)照品進(jìn)樣量(μg)與峰面積作圖,進(jìn)行回歸處理,得龍膽苦苷回歸方程為:Y=1 035.8X+10.136(r=0.999 8),表明龍膽苦苷在0.25~2.5 μg范圍內(nèi)與峰面積呈良好線性關(guān)系。
2.1.2 黃芩苷測(cè)定方法
2.1.2.1 色譜條件[6]色譜柱為Kromasil 100-5PHENYL(250 mm×4.6 mm);流動(dòng)相為0.2%磷酸溶液-甲醇(53∶47);體積流量為1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)為280 nm;柱溫為室溫;理論塔板數(shù)為按黃芩苷計(jì)算應(yīng)不低于2 500;在此條件下,供試品中黃芩苷峰與其他峰能達(dá)到基線分離,結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 黃芩苷和樣品HPLC色譜圖
2.1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線制備精密稱取已干燥(60℃減壓干燥4 h)的黃芩苷對(duì)照品0.010 2 g,用甲醇定容于25 mL量瓶中,制成0.408 0 mg/mL的對(duì)照品溶液。精密吸取上述黃芩苷對(duì)照品溶液0.2、0.3、0.4、0.5、1.0、2.0 mL,置5 mL量瓶中,甲醇定容,濾過(guò),分別注入液相色譜儀,進(jìn)樣量為5 μL,按上述條件測(cè)定黃芩苷峰面積,分別以黃芩苷峰面積積分值為縱坐標(biāo)(Y),以進(jìn)樣量為橫坐標(biāo)(X),進(jìn)行回歸處理,得回歸方程為:Y=3 630.5X-198.27(r=0.999 9),表明黃芩苷在0.081 6~0.816 0 μg范圍內(nèi)呈良好線性關(guān)系。
2.1.3 大車前苷測(cè)定方法[7]
2.1.3.1 色譜條件色譜柱為Kromasil 100-5PHENYL(250 mm×4.6 mm);流動(dòng)相為0.1%甲酸溶液-乙腈(81∶19);體積流量1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)330 nm;柱溫為室溫;理論塔板數(shù)按大車前苷計(jì)算應(yīng)不低于3 000;在此條件下,供試品中大車前苷峰與其他峰能達(dá)到基線分離,結(jié)果見(jiàn)圖3。
圖3 大車前苷和樣品HPLC色譜圖
2.1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線制備精密稱取大車前苷對(duì)照品0.002 53 g,用60%甲醇定容于25 mL量瓶中,制成0.101 2 mg/mL的對(duì)照品溶液。精密吸取上述大車前苷對(duì)照品溶液0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 mL,置10 mL量瓶中,60%甲醇定容,濾過(guò),進(jìn)樣量為30 μL,依法測(cè)定。以對(duì)照品進(jìn)樣量(μg)與峰面積作圖,進(jìn)行回歸處理,得大車前苷回歸方程為:Y=1 129.7X+8.376 4(r=0.999 6),表明大車前苷在0.151 8~1.821 6 μg范圍內(nèi)與峰面積呈良好線性關(guān)系。
2.1.4 正交設(shè)計(jì)篩選最佳提取工藝
2.1.4.1 提取因素及水平的確定擬以A含乙醇量(%)、B乙醇用量(倍)、C提取時(shí)間(h)、D提取次數(shù)(次)為主要考察因素,選用L9(34)正交表設(shè)計(jì)試驗(yàn),各因素的相關(guān)水平見(jiàn)表1。
表1 醇提工藝因素水平
2.1.4.2 提取方法及結(jié)果分析按處方稱取龍膽、黃芩、車前草等藥材,按照正交設(shè)計(jì)條件提取,試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 醇提工藝正交試驗(yàn)結(jié)果
經(jīng)直觀分析和方差分析可知,影響該工藝的因素依次為D>C>B>A,A、B、C、D四個(gè)因素的差異均具有顯著性(P<0.01),結(jié)果見(jiàn)表3。最佳提取工藝為A2B3C3D3,即70%乙醇,12倍量,提取3次,每次1.5 h。
表3 綜合評(píng)分方差分析
2.1.5 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)稱取處方量的龍膽等藥材5份,按最佳工藝進(jìn)行提取,龍膽苦苷的平均質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3.70%,RSD為0.95%(n=5);黃芩苷的平均質(zhì)量分?jǐn)?shù)為9.15%,RSD為1.03%(n=5);大車前苷的平均質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.51%,RSD為1.07%(n=5),浸膏平均得率為35.28%。該條件下指標(biāo)成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)較穩(wěn)定,因此該工藝是合理可行的。
2.2.1 多糖含有量測(cè)定方法
2.2.1.1 最大吸收波長(zhǎng)的確定[8]取適量顯色后的對(duì)照品溶液,于300~600 nm范圍內(nèi)掃描,在485 nm處有最大吸收,故選定最大吸收波長(zhǎng)為485 nm。
2.2.1.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線制備[9]精密稱取105℃干燥至恒質(zhì)量的無(wú)水葡萄糖對(duì)照品50 mg,置于50 mL量瓶中,加蒸餾水至刻度,配制成1 mg/mL的葡萄糖對(duì)照品溶液。精密量取上述對(duì)照品溶液0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 mL分別置于50 mL量瓶中,加蒸餾水稀釋至刻度,搖勻。精密量取上述各溶液2 mL置具塞試管中,分別加入1.0 mL 5%苯酚溶液,再垂直快速加入濃硫酸5 mL,充分振搖,置沸水浴上加熱15 min,取出,置冷水浴中冷卻30 min,于485 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,以吸光度Y為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度X為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸方程為:Y=0.055 6X-0.098 9,r=0.999 3,葡萄糖在5~30 μg/mL范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。
2.2.2 浸膏得率測(cè)定稱取干燥至恒質(zhì)量的各樣品,按下式計(jì)算浸膏得率:浸膏得率(%)=浸膏質(zhì)量/樣品質(zhì)量×100%。
2.2.3 試驗(yàn)方法及結(jié)果分析
2.2.3.1 正交設(shè)計(jì)篩選提取工藝[10]擬以A提取次數(shù)(次)、B提取時(shí)間(h)、C加水量(倍)為主要考察因素,選用L9(34)正交表設(shè)計(jì)試驗(yàn),各因素的相關(guān)水平見(jiàn)表4。
表4 水提工藝因素水平
2.2.3.2 樣品制備及測(cè)定取處方量的白茅根、茯苓、生地黃等藥材,按照L9(34)正交表進(jìn)行實(shí)驗(yàn),回流提取,濾過(guò),合并濾液,濃縮,移至200 mL量瓶中,加水定容至刻度,搖勻。精密吸取50 mL,在攪拌狀態(tài)下,加入4倍量無(wú)水乙醇沉淀多糖,4℃冰箱靜置24 h,過(guò)濾,取沉淀,60℃減壓干燥至恒質(zhì)量,精密稱量,即得。精密稱取樣品5 mg,置于50 mL量瓶中,加蒸餾水溶解并稀釋至刻度。精密量取1 mL置于具塞試管中,按2.2.1.2項(xiàng)下方法測(cè)定樣品的吸光度,代入回歸方程,計(jì)算多糖的含有量,結(jié)果見(jiàn)表5。
表5 水提工藝正交試驗(yàn)結(jié)果
2.2.3.3 結(jié)果分析由表5的直觀分析可以看出,3因素中A即提取次數(shù)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果影響最大,為多糖提取工藝的主要影響因素,影響次序依次為A>B>C。進(jìn)一步的方差分析表明,A因素對(duì)浸膏得率的影響具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),對(duì)多糖含有量的影響無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),B、C因素對(duì)浸膏得率和多糖含有量的影響都無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。綜合考慮工藝成本,在多糖的提取工藝中,最佳提取工藝為A3B2C1,即加8倍量的水提取3次,每次2 h。結(jié)果見(jiàn)表6、表7。
表6 浸膏得率方差分析
表7 多糖含有量方差分析
2.2.3.4 驗(yàn)證試驗(yàn)按處方稱取白茅根、茯苓等六味藥,按照最佳提取條件A3B2C1提取多糖,計(jì)算多糖平均含有量為6.02%,RSD為0.69%(n=5),浸膏得率平均為11.59%,RSD為1.37%(n=5),說(shuō)明優(yōu)化后的工藝條件,多糖產(chǎn)率高,重復(fù)性好。
3.1 前期通過(guò)抗炎藥效學(xué)實(shí)驗(yàn)[11]確定清熱除濕顆粒的提取方法。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,兩種方法(傳統(tǒng)水煎法、分類提取法)提取的清熱除濕湯均可顯著抑制小鼠耳腫脹,與模型對(duì)照組比較,存在顯著性差異(P<0.01);分類提取法提取的清熱除濕顆粒的抗炎效果優(yōu)于傳統(tǒng)水煎法。因此,確定了清熱除濕湯的提取方法為分類提取法。
3.2 由于本方為治療急性濕疹、皮炎,故該類制劑產(chǎn)品應(yīng)便于患者攜帶和貯存;另外,整個(gè)處方的出膏率為17.4%,出膏量為22 g,即使在不加輔料的情況下,也很難制備成片劑或膠囊劑,故選擇為顆粒劑。
3.3 清熱除濕顆粒為中藥復(fù)方制劑,成分復(fù)雜,龍膽苦苷為本方中君藥龍膽的主要有效成分,黃芩苷為臣藥黃芩的主要有效成分。用單一考察指標(biāo)篩選中藥提取工藝條件并不全面,單一指標(biāo)的優(yōu)劣并不能完全代表中藥制劑整體質(zhì)量的優(yōu)劣[12]。因此,本實(shí)驗(yàn)在清熱除濕顆粒醇提取工藝的優(yōu)選實(shí)驗(yàn)中,采用了3指標(biāo)評(píng)價(jià)法,以綜合考察提取工藝的優(yōu)劣。
3.4 水提取工藝中多糖的含有量測(cè)定,實(shí)驗(yàn)原理[13]為多糖在濃硫酸作用下水解成單糖并迅速脫水生成糖醛,然后與苯酚縮合成有色化合物,用分光光度法測(cè)定其含有量。本法顯色穩(wěn)定,靈敏度高。苯酚試劑應(yīng)為新鮮配置,且冷藏避光保存,否則以蒸餾水作空白對(duì)照時(shí)顏色加深,對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果有干擾。
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