王國(guó)富,高 峰,吳利先
幽門螺桿菌重組Bb-h(huán)paA-vacA疫苗的構(gòu)建*
王國(guó)富,高 峰,吳利先
目的構(gòu)建幽門螺桿菌(Hp)重組雙歧桿菌(Bb)Bb-h(huán)pa A-vac A疫苗。方法通過PCR分別擴(kuò)增hpa A和vac A抗原編碼基因,然后采用基因拼接法(gene SOEing)剪接hpa A和vac A,得到hpa A-vac A融合基因;將該融合基因定向克隆到大腸埃希菌-雙歧桿菌穿梭表達(dá)載體pGEX-1λT,構(gòu)建重組質(zhì)粒pGEX-h(huán)paA-vac A,電穿孔法將該質(zhì)粒導(dǎo)入Bb,構(gòu)建幽門螺桿菌重組hpa A-vac A疫苗,然后用SDS-PAGE和Western blotting鑒定表達(dá)的重組蛋白。結(jié)果PCR成功擴(kuò)增出分子量約為1 500 bp的hpaA-vac A融合基因,雙酶切證實(shí)hpa A-vac A融合基因成功插入pGEX-1λT中,并成功轉(zhuǎn)化入雙歧桿菌,而且重組蛋白能在雙岐桿菌中得到正確表達(dá),Western blotting顯示重組蛋白具有免疫原性。結(jié)論成功構(gòu)建螺桿菌rBbhpa A-vac A疫苗,為該疫苗的進(jìn)一步研究奠定了基礎(chǔ)。
幽門螺桿菌;雙歧桿菌;重組hpaA-vac A疫苗;構(gòu)建
幽門螺桿菌(Helicobacter pylori,Hp)能夠引起慢性、活動(dòng)性胃炎和消化性潰瘍,同時(shí)它也是胃腫瘤的危險(xiǎn)因素,并已被世界衛(wèi)生組織列為胃癌等腫瘤發(fā)生的相關(guān)致病菌[1-2]。Hp在我國(guó)普通人群的感染率約為50%~80%,并仍以每年1%~2%速度增加[3]。如何根治Hp的感染一直是微生物學(xué)和消化疾病領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)。Hp在胃內(nèi)定植的關(guān)鍵環(huán)節(jié)是粘附,是感染的先決條件和致病的關(guān)鍵。Hp粘附素基因hpa A(Helicobacter pylori adhesin A,hpa A)較保守,為Hp所特有,其編碼蛋白Hpa A具有粘膜結(jié)合特性,并有良好的抗原性和免疫原性[4]。空泡毒素(Vacuolating cytotoxin A,Vac A)可誘導(dǎo)胃上皮細(xì)胞發(fā)生凋亡,凋亡在Hp致病過程中起著重要作用。而且Vac A在菌株中的表達(dá)率與臨床發(fā)病率非常相符[5],因此Vac A預(yù)防措施顯得尤為重要。
雙歧桿菌(Bifidobacterium bifidum,Bb)是一種常見的益生菌,近年來除對(duì)雙歧菌的益生功能進(jìn)一步深入研究外,利用該菌作為基因工程受體菌的研究也越來越受重視。與大腸桿菌等宿主相比,雙岐桿菌等益生菌作為基因工程受體菌具有特殊的意義,其除能發(fā)揮原有的益生功能外,還能發(fā)揮佐劑功能。因此構(gòu)建重組Bb-vac A-h(huán)pa A融合基因疫苗具有相當(dāng)可觀的前景。
1.1 菌種與質(zhì)粒 兩歧雙歧桿菌Bb購(gòu)自武漢大學(xué)菌種保存中心,大腸桿菌-雙歧桿菌穿梭表達(dá)載體p GEX-1λT由李文桂教授惠贈(zèng),質(zhì)粒p QE-h(huán)pa A[6]、p QE-vac A[7]、大腸桿菌BL21由本室保存。
1.2 主要試劑 PCR試劑、高效感受態(tài)細(xì)胞制備試劑盒(SK9305)購(gòu)自上海生物工程公司。內(nèi)切酶、純化試劑盒和DNA連接試劑盒購(gòu)自大連寶生物工程公司。NC膜及HRP標(biāo)記羊抗兔IgG購(gòu)自北京晨綠生物技術(shù)公司。幽門螺桿菌兔抗vac A免疫血清和兔抗hpa A免疫血清由本室制備并保存。
1.3 hpaA-vac A融合基因的擴(kuò)增 參照 Gene Bank中的hpa A和vac A基因序列設(shè)計(jì)引物,vac A的上游引物 P1:5′-GCGGATCCATGCATTATTGGGTCAAAG-3′,下游引物P2:5'-ATGGTACCTTACTATCTTGTTT-3′;hpa A 上 游 引 物 P3:5′-CGGGTACCATGAGAGC AAATAAT-3′,下游引物 P4:5′-CGGTCGACTTCTTATGCGTTATTTG -3′;分別以p QE-vac A和p QE-h(huán)pa A 為模板擴(kuò)增vac A和hpaA基因。再設(shè)計(jì)引物P5和P6,引入vac A Lingker和hpa A Lingker(IL-3的12個(gè)氨基酸的接頭)。分別以PCR擴(kuò)增出的vac A和hpaA基因?yàn)槟0?,P1、P5和P4、P6為引物分別擴(kuò)增出帶Lingker的vac A和hpa A基因。最后再以帶Lingker的vac A和hpa A基因的PCR混合物為模板,以P1和P4為引物擴(kuò)增出hpa A-vac A融合基因(在hpa A與vac A的融合基因之間有IL-3的12個(gè)氨基酸的36個(gè)堿基接頭CAGGAGCAGGACGGGCAGGCGGCTCATGTTTGGATC進(jìn)行連接)。1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定。
1.4 重組質(zhì)粒p GEX-h(huán)pa A-vac A的構(gòu)建和鑒定
質(zhì)粒p GEX-1λT和hpa A-vac A融合基因的PCR產(chǎn)物分別用BHam HI和Eco RI進(jìn)行雙酶切后純化,將各自純化后的產(chǎn)物用T4連接試劑盒16℃連接過夜,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化入BL21感受態(tài)細(xì)胞。LA培養(yǎng)基篩選后,挑取陽性克隆進(jìn)行培養(yǎng),質(zhì)粒小量抽提試劑盒抽提重組質(zhì)粒進(jìn)行PCR和限制性酶切鑒定。鑒定正確后送上海生物工程公司進(jìn)行測(cè)序。
1.5 幽門螺桿菌重組Bb-vac A-h(huán)pa A疫苗的構(gòu)建和鑒定
1.5.1 Bb電轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞的制備[8]取生長(zhǎng)良好的Bb 1 m L加至100 m L含0.5 mol/L蔗糖的MRS液體培養(yǎng)基中,37℃厭氧培養(yǎng)24~72 h,冰浴2.5 h,期間搖晃懸浮菌體。4℃5 000 r/min離心10 min,棄上清,依次用預(yù)冷的10%甘油50 m L、25 m L、10 m L 4℃離心進(jìn)行洗滌,最后棄上清,加入預(yù)冷的10%甘油1.5 m L,充分懸浮菌體,取50μL準(zhǔn)備電擊轉(zhuǎn)化,剩余感受態(tài)細(xì)胞-70℃保存。
1.5.2 重組質(zhì)粒p GEX-h(huán)paA-vac A的電轉(zhuǎn)化 取50μL Bb感受態(tài)細(xì)菌加至含20μL重組質(zhì)粒p GEX-h(huán)pa A-vac A的Ep管,混勻,冰浴1 min后轉(zhuǎn)移至電穿孔杯中進(jìn)行電轉(zhuǎn)化。參數(shù)設(shè)置為:電壓為1.5 k V、轉(zhuǎn)化時(shí)間為5 ms、轉(zhuǎn)化次數(shù)為3次,轉(zhuǎn)化完畢后立刻加入1 m L含0.5 mol/L蔗糖的MRS液體培養(yǎng)基,輕輕移入10 m L培養(yǎng)管中,37℃100 r/min厭氧培養(yǎng)2 h。將培養(yǎng)管中細(xì)菌培養(yǎng)液吸至1.5 m L Ep管,3 000 r/min離心5 min,棄大部分上清,將剩余的100μL培養(yǎng)液懸浮,涂于含50μg/m L氨芐青霉素的MRS瓊脂平板上,待吸收后置37℃倒置厭氧培養(yǎng)24~72 h。
1.5.3 重組Bb疫苗的鑒定 挑取上述篩選培養(yǎng)基上單個(gè)菌落至100 m L含0.5 mol/L 蔗糖的MRS液體培養(yǎng)基中,加入10μg/μL氨芐青霉素500μL,37℃厭氧培養(yǎng)24~72 h,提取質(zhì)粒后,PCR擴(kuò)增hpa A-vac A融合基因及對(duì)重組質(zhì)粒限制性酶切分析鑒定。
1.5.4 p GEX-h(huán)pa A-vac A 在雙歧桿菌中的表達(dá)及Western blot分析 挑取陽性轉(zhuǎn)化菌單菌落接種于100 m L MRS液體培養(yǎng)基中,厭氧培養(yǎng)48h后收獲菌體,菌體破壁后進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析表達(dá)產(chǎn)物。觀察表達(dá)條帶并用Western blot分析鑒定重組蛋白。具體為將上述SDS-PAGE電泳的凝膠移至硝酸纖維膜上,用5%的脫脂奶粉封閉2h,PBST震洗3次,分別加入一抗兔抗Vca A血清和兔抗Hpa A抗血清作用2 h,震洗3次,再加入二抗羊抗兔IgG作用2h,震洗后顯色。步驟同大腸桿菌。
2.1 hpa A和vac A抗原編碼基因以及hpa A-vac A融合基因的擴(kuò)增 以p QE-vac A和p QE-h(huán)pa A為模板,分別以P1、P2和P3、P4為引物擴(kuò)增vac A(723 bp)和hpa A(783 bp)基因,均在750 bp附近出現(xiàn)了明顯條帶,大小與預(yù)計(jì)相符,見圖1。通過基因拼接,并以P1和P4為引物擴(kuò)增出中間帶有Lingker的hpaA-vac A融合基因,在1 500 bp左右出現(xiàn)了條帶,結(jié)果也與預(yù)計(jì)相符,見圖2。
2.2 重組質(zhì)粒pGEX-h(huán)pa A-vac A的鑒定和融合基因的測(cè)序 將轉(zhuǎn)化后在LA平板上生長(zhǎng)的BL21陽性克隆接種于液體培養(yǎng)基過夜后,提取質(zhì)粒進(jìn)行限制性酶切和PCR鑒定,均得到了與預(yù)計(jì)相符的條帶,見圖3。鑒定正確后的陽性克隆測(cè)序結(jié)果與GeneBank中序列相符。說明重組質(zhì)粒p GEX-vac A-h(huán)pa A構(gòu)建成功。
2.3 rBb-vac A-h(huán)pa A疫苗的鑒定 通過電轉(zhuǎn)化Bb后,以從具有AMP抗性的r Bb中提取質(zhì)粒進(jìn)行限制性酶切和PCR鑒定。結(jié)果與上述圖3一致,PCR擴(kuò)增出了1 500 bp大小的條帶,限制性酶切后得到了與PCR大小相符的片段,說明r Bb-vac A-h(huán)pa A疫苗構(gòu)建成功。
2.4 pGEX-h(huán)pa A-vac A 在雙歧桿菌中的表達(dá)和Western blotting分析 重組質(zhì)粒在雙岐桿菌能得到正確表達(dá),但產(chǎn)量不高,約占細(xì)菌總蛋白的8.5%見圖4。經(jīng) Western blotting分析,能分別與兔抗Vca A血清和兔抗HpaA抗血清作用而免疫著色見圖5,說明重組融合蛋白兼具有兩種單獨(dú)蛋白的免疫活性。
Hp與多種胃腸道炎癥相關(guān),而且在我國(guó)感染率非常高。隨著對(duì)Hp致病機(jī)理及其基因組結(jié)構(gòu)與功能認(rèn)識(shí)的逐步深入,免疫療法被認(rèn)為是防治Hp感染最有效最有前景的方法之一。由于雙價(jià)Hp基因工程疫苗免疫保護(hù)效果優(yōu)于單價(jià)疫苗,因此研究多價(jià)疫苗及其抗原組合將是Hp疫苗研制的主要方向。
圖5 重組蛋白Vac A-HpaA的Western blotting鑒定1,4:蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn);2,5:陰性對(duì)照;3:所表達(dá)蛋白與兔抗Vac A血清反應(yīng)的結(jié)果;6:所表達(dá)蛋白與兔抗Hpa A血清反應(yīng)的結(jié)果Fig.5 Recombinant protein VacA-HpaA identified by Western blot 1,4:Protein marker;2,5:Control;3:Recombinant protein responsed with the anti-Vac A serum;6:Recombinant protein responsed with the anti-Hpa A serum
病原體的特異性粘附由粘附素-受體系統(tǒng)介導(dǎo),依賴于粘附分子上某些特定的氨基酸位點(diǎn)與受體的結(jié)合。有研究證實(shí),Hp粘附素基因hpa A(Helicobacter pylori adhesin A,hpa A)較保守,為Hp所特有,其編碼蛋白Hpa A具有粘膜結(jié)合特性,并有良好的抗原性和免疫原性[4]。Elisabet等[9]通過構(gòu)建了Hp的hpa A基因敲除突變株,進(jìn)一步在小鼠感染模型中證實(shí)了Hpa A在Hp定植中的必要性。
1988年,Leunk發(fā)現(xiàn)了Hp能使真核細(xì)胞空泡變性的毒素,并命名為空泡毒素(Vacuolating cytotoxin A,Vac A)。國(guó)內(nèi)外大量研究證明,Vac A加入多種哺乳動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)基中,數(shù)小時(shí)后能夠引起細(xì)胞空泡樣變,3~4d后,細(xì)胞變性與死亡。已有研究顯示天然的Vac A和重組Vac A均可誘導(dǎo)胃上皮細(xì)胞發(fā)生凋亡,凋亡在 Hp致病過程中起著重要作用[5]。此外,相較于Hp其他的毒力因子,Vac A在菌株中的表達(dá)率與臨床發(fā)病率非常相符,因此Vac A預(yù)防措施顯得尤為重要。其中編碼蛋白質(zhì)37k D亞單位的基因片段又相對(duì)保守,這就為針對(duì)Vac A疫苗的研制提供了有力條件。
雙歧桿菌是人和哺乳動(dòng)物回腸末端及大腸內(nèi)最主要的生理性菌群,是一種益生菌。重組雙歧桿菌疫苗具有下述優(yōu)點(diǎn):所表達(dá)的靶基因不需純化,可直接用于免疫接種,免去了蛋白質(zhì)后處理的復(fù)雜工序;單次接種即可誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生針對(duì)靶抗原的免疫反應(yīng),而且具有粘膜佐劑的作用;運(yùn)用分子生物學(xué)手段,通過對(duì)不同靶抗原的剪切和拼接,可使新型疫苗理想化;雙歧桿菌本身作為一種益生菌,對(duì)胃粘膜有保護(hù)作用,還可提高宿主的免疫力;它價(jià)格低廉,適于大量生產(chǎn),更容易被接受和認(rèn)可。因此構(gòu)建vac A-h(huán)pa A融合基因疫苗,用雙歧桿菌作為載體口服導(dǎo)入機(jī)體表達(dá)目的基因,誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生相應(yīng)抗體,既可阻止Hp的粘附,又可刺激機(jī)體產(chǎn)生抗體發(fā)揮全身免疫應(yīng)答。
為了將外源性DNA有效引入雙歧桿菌,需要構(gòu)建大腸桿菌-雙歧桿菌穿梭表達(dá)載體。本研究所采用的大腸桿菌-雙歧桿菌穿梭表達(dá)載體p GEX-1λT含有雙歧桿菌復(fù)制起點(diǎn)、大腸桿菌復(fù)制起點(diǎn)、一個(gè)多克隆位點(diǎn)和一個(gè)氨芐青霉素抗性基因。上游有一個(gè)啟動(dòng)子Ptac(trp操縱子啟動(dòng)子與lac操縱子啟動(dòng)子的融合啟動(dòng)子),在IPTG誘導(dǎo)下表達(dá)。這種穿梭載體可允許外源性DNA在大腸桿菌中操作,鑒定正確后再轉(zhuǎn)化入雙歧桿菌,通過自動(dòng)復(fù)制或同源整合與基因組進(jìn)行基因交換,從而在雙歧桿菌中穩(wěn)定表達(dá)外源性基因[8]。本研究構(gòu)建大腸桿菌重組質(zhì)粒p GEX-h(huán)pa A-vac A在雙歧桿菌中也得到了正確表達(dá),但表達(dá)量只有全菌蛋白的8.5%。雖然表達(dá)量低,但也表明了雙岐桿菌是能夠同時(shí)發(fā)揮其益生菌和表達(dá)外源基因的雙重作用的。今后研究的重點(diǎn)是對(duì)雙歧桿菌分子生物學(xué)的深入探討,提高載體的表達(dá)能力。
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Construction of recombinant Bb-h(huán)paA-vacA vaccine of Helicobacter pylori
WANG Guo-fu,GAO Feng,WU Li-xian
(Department Microbiology,Basic Medical School,Dali College,Dali 671000,China)
To construct the recombinant Bb-h(huán)pa A-vac A vaccine of Helicobacter pylori,hpa A and vac A antigen genes were amplified by PCR and the fusion gene hpa A-vac A was obtained with gene SOEing.Then the fusion gene was cloned into Escherichia coli-Bifidobacteria shuttle plasmid p GEX-1λT to construct p GEX-h(huán)pa A-vac A.The recombinant plasmid was electroporated into Bifidobacteria bifidum (Bb)to construct rBb hpa A-vac A vaccine.The recombinant protein was analyzed by SDS-PAGE.Its immunogenicity was identified by Western blotting.A 1500bp fusion gene of hpa A-vac A was successfully amplified by PCR and cloned into pGEX-1λT by restriction analysis,and the rBb hpa A-vac A vaccine was successfully constructed by PCR and restriction analysis.The recombinant protein could be expressed in B.bifidium and it has immunogenicity.In this way,the r Bb hpa A-vac A vaccine of Helicobacter pylori is successfully constructed,which lays the experimental foundation of exploitation and utilization of this vaccine.
Helicobacter pylori;Bifidobacterium bifidum;recombinant hpa A-vac A vaccine;construction
R378
A
1002-2694(2012)02-0131-04
*云南省自然科學(xué)基金(2007C147 M)資助
吳利先,Email:w_lixian@163.com;
云南省大理學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院微生物學(xué)教研室,大理671000
2011-06-02;
2011-09-15