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      CIK細胞治療對晚期惡性腫瘤患者療效研究*

      2012-01-11 08:38:20
      關鍵詞:回輸毒副細胞系

      王 雙

      (泰山醫(yī)學院附屬泰山醫(yī)院腫瘤內科,山東 泰安 271000)

      細胞因子誘導的殺傷細胞(cytokine-induced killer cell, CIK)是以CD3+CD8+T 細胞和 CD3+CD56+T 細胞為主要效應細胞的異質細胞群,是一類體外增殖能力強、殺瘤活性高、對多重耐藥腫瘤細胞敏感的廣譜抗瘤免疫活性細胞[1]。它可以在沒有損傷機體免疫系統(tǒng)結構和功能的前提下,直接殺傷腫瘤細胞,并可調節(jié)和增強機體的免疫功能。我科自2010年6月~2011年12月為38例晚期癌癥患者進行了CIK細胞治療,現(xiàn)將結果報告如下。

      1 資料和方法

      1.1臨床資料 本組38例患者均經(jīng)病理或細胞學檢查確診為惡性腫瘤。其中肺癌20例,鼻咽癌2例,乳腺癌4例,腎癌4例,原發(fā)性肝癌6例, 惡性黑色素瘤 2 例。按照國際抗癌聯(lián)盟(UICC)腫瘤分期標準,本組均為III期或IV期病例。男性26例,女性12例。中位年齡 58歲(34~86 歲)。在行CIK細胞治療前有27例進行過化療,占71%,有11例進行過放療,占29%。放化療與CIK細胞治療間隔在4周以上。均有可測量腫瘤病灶;Karnofsky 評分≥60 分;預計生存期>3 個月;治療前心、肝、腎功能及血常規(guī)大致正常。 治療前通過醫(yī)院倫理委員會批準,并簽治療知情同意書。

      1.2方法

      1.2.1CIK細胞培養(yǎng)與回輸 MCS+血細胞采集儀采集患者外周血單個核細胞,經(jīng)淋巴細胞分離液進一步分離純化。用pH 7.4的PBS洗滌3次,將細胞置于含人血清的培養(yǎng)基中,細胞密度為1.5~2.0×106個/ml,置于37℃5%CO2條件下培養(yǎng)。第0 d加入生長培養(yǎng)基IFN-γ 1000 U/ml,24 h后加入人重組IL-1 100 U/ml、人重組IL-2 1 000 U/ml、抗CD3單抗100 ng/ml,每2~3 d更換培養(yǎng)基一次,補加IL-1、IL-2,并調整細胞密度為1.5~2.0×106個/ml,培養(yǎng)至第8 d,經(jīng)細菌、霉菌等微生物培養(yǎng)陰性,革蘭氏染色無菌生長后再收集細胞,培養(yǎng)10~14 d后,將收集培養(yǎng)的CIK細胞用無菌生理鹽水洗滌3次,細胞溶于1%人血白蛋白生理鹽水配成100 ml液體靜脈回輸。隔天回輸 1 次, 每次回輸細胞數(shù)量在 2~3×109,連續(xù)輸注4次為一個療程。每位患者輸注1~3個療程。

      1.2.2免疫學及其他臨床相關指標的檢測 治療前后常規(guī)檢查患者體溫、血壓等指標,取患者CIK治療前及CIK細胞回輸治療后2周外周血,檢測腫瘤標志物,同時用流式細胞儀測定患者外周血CD3、CD4、CD8及NK細胞中CD16、CD56等免疫學指標。

      1.2.3生活質量評估 用Karnofsky評分及體重、疼痛程度、睡眠、食欲等的改變來評估生活質量的改善。

      1.2.4療效評價 患者治療結束后4周進行療效評定, 參照實體瘤療效標準,以患者治療前及治療后1個月CT及B超進行對照比較,分為完全緩解(CR),部分緩解(PR),輕度緩解(MR),穩(wěn)定(SD),病情進展(PD)。有效率=CR+PR+MR。并觀察治療前、后對心、肝、腎及消化道的影響。

      1.2.5毒副反應觀察 靜脈回輸過程中及回輸后2 h內密切觀察患者是否出現(xiàn)發(fā)熱、皮疹、乏力、肌肉酸痛、嘔吐等毒副反應。

      1.2.6統(tǒng)計分析 采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析,2組獨立樣本均數(shù)比較采用t檢驗。

      2 結 果

      2.1腫瘤標志物的測定 29例CEA升高的患者經(jīng)CIK細胞治療后23例下降,6例穩(wěn)定;4例CA125升高患者經(jīng)CIK治療后3例下降,1例增加;6例AFP升高患者經(jīng)CIK治療后均下降。

      2.2CIK細胞治療前后T細胞亞群變化 接受CIK細胞免疫治療的患者,T細胞亞群變化與治療前相比,其外周血中CD3+、CD4+、CD4+/CD8+和NK細胞(CD16+、CD56+)均顯著上升(P<0.05),CD8+下降。見表1。

      表1 CIK治療前后T細胞亞群的變化

      2.3生活質量改善 治療后Karnofsky評分平均提高10~20分,其中提高29例,穩(wěn)定4例,下降5例,提高率為76%。治療后患者平均體重增加2.5 kg,其中提高26例,穩(wěn)定7例,下降5例,提高率為68%。疼痛評分(按數(shù)字評分法)平均下降3分,其中下降27例,穩(wěn)定8例,加重3例,下降率為71%;病人疲倦乏力及失眠、食欲不振等臨床癥狀有明顯改善。見表2。

      2.4療效評價 38例患者部分緩解15例,輕度緩解10例,穩(wěn)定8例,進展5例,總緩解率為66%。

      2.5毒副反應觀察 5例患者出現(xiàn)一過性發(fā)熱,體溫在 37.5℃以下,未行特殊處理自行消退;3例患者出現(xiàn)輕度皮疹、 乏力等癥狀,均能耐受, 未作特殊處理自行緩解。 絕大多數(shù)患者耐受較好, 無其他嚴重不良反應。治療前后肝、腎功能檢測均無明顯改變。

      表2 CIK治療前后臨床癥狀改善分析

      3 討 論

      CIK 細胞是 1991 年由美國斯坦福大學醫(yī)學院 Schmidt Wolf 等發(fā)現(xiàn)在外周血淋巴細胞中加入多種細胞因子,經(jīng)培養(yǎng)收獲大量腫瘤殺傷細胞,將其命名CIK細胞。CIK細胞是一種新型、高效、廣譜的免疫細胞,為目前腫瘤過繼免疫治療的研究熱點之一。其對多種腫瘤具有殺傷活性,兼具有T淋巴細胞強大的抗瘤活性和NK細胞的非主要組織相容性復合物(MHC)限制性殺瘤的特點,CD3+CD56+T細胞是主要的效應細胞。CIK細胞的一個重要特性是對腫瘤細胞的殺傷為非特異性和非MHC限制性,不參與抗體依賴的細胞介導的細胞毒作用[2-3]。另一重要特性是,CIK細胞被活化后可以產(chǎn)生多種細胞因子和趨化因子,如TNF-α、IL-2、GM-CSF、IFN-γ等,不僅對腫瘤細胞有直接抑制作用,還可通過調節(jié)機體免疫系統(tǒng)反應性間接殺傷腫瘤細胞。CIK細胞的效應細胞CD3+CD56+細胞在正常人外周血中極其罕見,僅1%~5%,在體外經(jīng)多種因子培養(yǎng)28~30天后,其數(shù)目迅速增多,便于培養(yǎng)應用;實驗證明,擴增出的CD3+CD56+細胞來源于CD3+CD56-T細胞,而非CD3-CD56+NK細胞,但具有NK細胞的表面標志CD56+抗原[4]。Wolf等[7]研究發(fā)現(xiàn),CIK細胞對多重耐藥腫瘤細胞仍具有敏感性,對化療敏感的親本細胞和不敏感的轉化細胞殺傷活性無明顯差別[5-6]。由于CIK細胞既具有T淋巴細胞強大殺傷活性,也具有NK細胞殺傷時的非MHC限制性,所以其對于多種腫瘤細胞系(包括K562、人B淋巴瘤細胞系、胃癌細胞系MGC-803、肝癌細胞系BEL-7402、乳腺癌細胞系MCF-7等)均表現(xiàn)出強大的殺傷活性;同時CIK細胞對正常骨髓的細胞毒性小,在不損傷機體免疫系統(tǒng)和功能的前提下,直接殺傷腫瘤[8],病人耐受性好。

      本研究中患者經(jīng)過CIK細胞免疫治療后,T細胞亞群變化與治療前相比,其外周血中CD3+、CD4+、CD4+/CD8+和NK細胞(CD16+、CD56+)均顯著上升,CD8+下降,NK細胞百分率和殺傷活性明顯升高,CIK細胞治療后CD3+、CD4+細胞的增高說明CIK細胞生物治療能增強機體的細胞免疫功能。相關腫瘤標志物呈下降趨勢,29例CEA升高的患者經(jīng)CIK細胞治療后23例下降,6例穩(wěn)定;4例CA125升高患者經(jīng)CIK治療后3例下降,1例增加;6例AFP升高患者經(jīng)CIK治療后均下降。臨床療效方面有效率為66%。在生活質量上,治療后Karnofsky評分平均提高10~20分,患者平均體重增加2.5 kg,疼痛評分(按數(shù)字評分法)平均下降3分,其中下降27例,穩(wěn)定8例,下降率為71%;另外病人疲倦乏力及失眠、食欲不振、惡性嘔吐、腹脹等臨床癥狀有明顯改善。相關生活質量的改善明顯,與輸入CIK細胞后產(chǎn)生的一些細胞因子的作用可能有關。CIK細胞輸注過程中不良反應輕微,5例出現(xiàn)低熱,3例有輕微皮疹、乏力,未作特殊處理,自行緩解。

      臨床研究表明,CIK細胞過繼免疫治療晚期惡性腫瘤患者,能明顯提高患者免疫功能,有利于控制腫瘤生長,改善臨床癥狀,提高晚期腫瘤病人的生活質量,并且毒副反應輕微,臨床應用安全,病人耐受性好,易于被晚期腫瘤病人接受,是一種安全、有效的方法,對于晚期腫瘤病人的支持治療及改善生活質量有積極意義。

      [1] Linn YC,Lau SK,Liu BH,et al.Characterization of the recognition and functional heterogeneity exhibited by cytokine-induced killer cell subsets against acute myeloid leukaemia target cell[J].Immuology, 2009,126(3):423-435.

      [2] Shi M,Fu J,Shi F,et al.Viral suppression correlates with dendritic cellrestoration in chronic hepatitis B patients with autologous cytokine induced killer cell transfusion[J].Liver Int,2009,29(3):466-474.

      [3] Wongkajornsilp A,Somchitprasert T,Butraporn R,et al.Human cytokine-induced killer cells specifically infiltrated and retarded the growth of the inoculated human cholangiocarcinoma cells in SCID mice[J].Cancer Invest,2009,27(2):140-148.

      [4] Franceschetti M, Pievani A, Borleri G, et al. Cytokine-induced killer cells are terminally differentiated activated CD8 cytotoxic T-EMRA lymphocytes[J]. Exp Hematol, 2009, 37 (5): 616-628.

      [5] Wei XC, Zhai XH, Han XR, et al. Biological activity of DC-CIK cells and its effect against leukemia cells in vitro[J]. Zhongguo Shi YanXue Ye Xue Za Zhi, 2008,16(5):1150-1153.

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      [8] Hu S,Li XM,un XD,et al. Studies Oil inducing apeptosis effects and mechanism of CIK cells for MGC 803 gastric cancer cell lines[J]. Cancer Biother Radiopharm, 2005, 20(2):173-179.

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