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    Runx 2在牙釉質(zhì)形成中的作用研究

    2011-02-02 05:23:00何永云梁廣智劉曉影高玉光
    牙體牙髓牙周病學(xué)雜志 2011年2期
    關(guān)鍵詞:成釉細(xì)胞牙釉質(zhì)牙齒

    何永云,梁廣智,劉曉影,孫 巖,高玉光

    (山東濰坊醫(yī)學(xué)院口腔醫(yī)學(xué)研究所,山東濰坊 261053)

    Runx 2在牙釉質(zhì)形成中的作用研究

    何永云,梁廣智,劉曉影,孫 巖,高玉光

    (山東濰坊醫(yī)學(xué)院口腔醫(yī)學(xué)研究所,山東濰坊 261053)

    目的:研究小鼠成釉細(xì)胞中Runx 2對釉成熟蛋白(Amelotin,AMTN)、成釉蛋白(Ameloblastin,AMBN)、牙成釉細(xì)胞相關(guān)蛋白(odontogenic ameloblast-asssociated protein,ODAM)基因表達(dá)的調(diào)控作用,為研究Runx 2在牙釉質(zhì)形成中的作用奠定基礎(chǔ)。方法:通過RT-PCR法從小鼠成釉細(xì)胞中克隆得到Runx 2全長基因,測序正確后將其亞克隆至pcDNA3.1-h(huán)isA載體中;構(gòu)建針對小鼠Runx 2的siRNA表達(dá)框架,將反應(yīng)質(zhì)粒pcdna-3.1-HisA-Runx2及針對Runx2的特異性小分子干擾RNA(siRNA)分別轉(zhuǎn)染小鼠成釉細(xì)胞,用RT-PCR方法檢測Runx 2,AMTN,AMBN以及ODAM的mRNA水平。結(jié)果:轉(zhuǎn)染的小分子干擾RNA(siRNA)對Runx 2 mRNA的表達(dá)有顯著性抑制作用,Runx 2基因沉默可顯著抑制AMTN和AMBN的mRNA表達(dá)水平;Runx 2基因過表達(dá)可顯著上調(diào)AMTN和AMBN的mRNA表達(dá)水平。Runx 2基因的表達(dá)變化對ODAM的mRNA表達(dá)水平則無顯著性調(diào)控作用。結(jié)論:Runx 2通過調(diào)控AMTN和AMBN的表達(dá)水平,在牙釉質(zhì)形成過程中發(fā)揮作用。

    核心結(jié)合因子;釉成熟蛋白;成釉蛋白;牙成釉細(xì)胞相關(guān)蛋白;RT-PCR

    [牙體牙髓牙周病學(xué)雜志,2011,21(2):62]

    [Chinese Journal of Conservativedentistry,2011,21(2):62]

    Runx 2稱為核心結(jié)合因子,又名Cbfal,在成骨細(xì)胞的分化中起著關(guān)鍵的作用,最近研究[1]顯示它也參與了牙齒發(fā)育的信號網(wǎng)絡(luò)調(diào)控,Runx基因敲除小鼠可以導(dǎo)致牙胚鐘狀期發(fā)育不全,從而使新生小鼠牙齒特異性細(xì)胞的分化受阻,導(dǎo)致牙本質(zhì)異常和牙釉質(zhì)缺失。國內(nèi)外許多研究發(fā)現(xiàn),在動物牙齒發(fā)育中cbfal的表達(dá)有時空特異性[2-3]。然而,迄今為止在人牙胚研究領(lǐng)域尚未發(fā)現(xiàn)進(jìn)一步的報道。近來發(fā)現(xiàn)cbfal共有3種同形異構(gòu)體,他們均在牙胚中有表達(dá)[4]。本研究在小鼠成釉細(xì)胞中沉默及過表達(dá) cbfal后,采用實時定量 PCR檢測AMTN、AMBN和ODAM的表達(dá)水平,確定cbfal對牙釉質(zhì)基質(zhì)蛋白的調(diào)控作用,為進(jìn)一步研究其在成牙細(xì)胞分化和牙齒硬組織形成中的作用機(jī)制提供理論依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 主要材料和儀器

    小鼠成釉細(xì)胞系(ALC,日本秋田大學(xué)Sugiyama[5]教授惠贈);RNAiso Plus(Total RNA 提取試劑)、PrimeScript? RT reagent Kit(Perfect Real Time)、T4dNA連接酶(TaKaRa公司);凝膠回收試劑盒及小量質(zhì)粒提取試劑盒(上海生物工程有限公司);Taq plus(QIAGEN公司,美國),BamHⅠ、XbaⅠ及 HindⅢ(NEB公司,美國);pcDNA 3.1-HisA載體、pMD18-T simple 載體及 LipofectamineTM2000(Promega公司);SiRNA Transfection Reagent、SiRNA Transfection Medium(Santa Cruz公司),DNA Marker#sm0331(Fermentas公司);SYBRgreen PCR Master Mix(Roche公司);IQ5TMPCR 儀(Bio-Rad公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 小鼠Runx 2基因的克隆及重組表達(dá)載體的構(gòu)建

    以傳至第3代的小鼠成釉細(xì)胞提取的總RNA為模板,用Oligo(dT)進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)合成cDNA第1條鏈,用上下游引物進(jìn)行擴(kuò)增。通過GenBank檢索小鼠Runx 2基因序列,根據(jù)引物設(shè)計原則,采用Primer 5.0軟件進(jìn)行引物設(shè)計。上游引物P1為:5'-AAgGATCC ACATGCGTATTCCTGTAGATC-3',含BamHⅠ的酶切位點(diǎn);下游引物 P2為:5'-AA TCTAGA ATATGGCCGCCAAACAGACT-3',含 XbaⅠ的酶切位點(diǎn)。PCR擴(kuò)增Runx 2 cDNA為1 545 bp,將產(chǎn)物進(jìn)行BamHⅠ和XbaⅠ雙酶切并割膠回收,與經(jīng)相同酶切的pcDNA3.1-HisA空載體連接并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,挑單菌落培養(yǎng)抽提質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定,鑒定正確后送TaKaRa公司測序進(jìn)一步驗證,測序正確即為構(gòu)建好的真核表達(dá)重組載體 pcDNA3.1-HisA-Runx 2。

    1.2.2 雙鏈siRNA的制備

    根據(jù)Elbashir等[6]提出的原則設(shè)計一對靶向Runx2基因的特異性雙鏈 siRNA(siRNA-Runx 2),由TaKaRa公司合成,SDS-PAGE純化。合成一對無關(guān)siRNA作為陰性對照。

    1.2.3 引物設(shè)計及PCR反應(yīng)

    根據(jù)引物設(shè)計原則,采用Primer 5.0軟件設(shè)計Runx 2、AMTN 、AMBN、ODAM 以及gAPDH 的引物,PCR引物、擴(kuò)增片段的長度及反應(yīng)條件(表1)。

    表1 不同PCR反應(yīng)引物、擴(kuò)增片段的長度及反應(yīng)條件

    1.2.4 細(xì)胞培養(yǎng)、重組質(zhì)粒和雙鏈siRNA的瞬時轉(zhuǎn)染

    成釉細(xì)胞用含100 mL/L小牛血清的DMEM培養(yǎng)基在含50 mL/L CO2、飽和濕度、37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。6孔板鋪板,每孔2×106/mL,待細(xì)胞融合至70%~80%時按照TransFastTMTransfectionReagent操作說明書進(jìn)行空質(zhì)粒pcDNA3.1/myc-h(huán)isA 和 重 組 表 達(dá) 載 體pcDNA3.1-HisA-Runx 2 的轉(zhuǎn)染,每個樣本 3 個復(fù)孔。轉(zhuǎn)染36 h后,按RNAiso Plus試劑說明書抽提細(xì)胞總RNA,紫外分光光度計測RNA濃度和純度,取1 μg進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。

    1.2.5 免疫組織化學(xué)檢測Runx 2表達(dá)

    取出生后5d小鼠下頜切牙甲醛固定,乙二胺四乙酸(EDTA)低溫脫礦后制作組織蠟塊,組織切片經(jīng)常規(guī)脫蠟入水,抗原修復(fù)后50 mL/L過氧化氫液或甲醇去除內(nèi)源性過氧化物酶活性,50 mL/L羊血清封閉非特異結(jié)合蛋白,滴加1∶50稀釋的一抗兔抗鼠Runx 2,4℃孵育過夜;1∶200 HRP標(biāo)記的羊抗兔抗體室溫結(jié)合2 h;加DAB顯色,經(jīng)蘇木素復(fù)染、脫水、透明及封片后,顯微鏡下觀察結(jié)果。陰性對照用PBS代替一抗。

    1.2.6 RT-PCR 檢測 Runx 2、AMTN、AMBN 及ODAM mRNA表達(dá)

    以逆轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板進(jìn)行實時定量PCR,反應(yīng)條件如表1所示。RT-PCR產(chǎn)物以CT值作為分析依據(jù)。因為pcDNA3.1-HisA∶Runx 2及siRNA對內(nèi)源性基因GAPDH無影響,故以GAPDH作為內(nèi)對照用以標(biāo)準(zhǔn)化樣本。CT值由熒光PCR儀在擴(kuò)增過程中自動讀出。所得CT值結(jié)果進(jìn)行2-△△CT分析[7],ΔΔCt= 實驗組目的基因CT-管家基因CT-對照組目的基因CT-管家基因CT。2-△△CT示實驗組目的基因的表達(dá)相對于對照組的變化倍數(shù),以計算Runx 2在成釉細(xì)胞中過表達(dá)及沉默后AMTN、AMBN及ODAM mRNA的表達(dá)相對變化。

    1.3 統(tǒng)計分析

    應(yīng)用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,組間比較用配對t檢驗,檢驗水準(zhǔn)α=0.05。

    2 結(jié)果

    2.1 小鼠Runx 2基因的克隆及重組表達(dá)載體的構(gòu)建

    以小鼠成釉細(xì)胞 cDNA為模板,P1、P2為引物,擴(kuò)增出約1 545 bp的片段,大小同GenBank中報道的小鼠Runx 2 cDNA序列長度相符。構(gòu)建的pcDNA3.1-HisA-Runx 2 經(jīng)BamHⅠ和 HindⅢ雙酶切后得到一大片段和一697 bp小片段,DNA測序結(jié)果經(jīng)BLAST顯示結(jié)果與預(yù)期一致(圖1)。

    2.2 小片段Runx 2、AMTN、AMBN 及ODAM 表達(dá)水平檢測

    在體外培養(yǎng)的成釉細(xì)胞中RT-PCR檢測到Runx2、AMTN、AMBN及ODAM分別約為123 bp、132 bp、174 bp和110 bp的條帶,連接到T載體中測序分別為Runx 2、AMTN、AMBN及ODAM基因(圖2)。

    2.3 Runx 2在小鼠下頜切牙成釉細(xì)胞中的表達(dá)

    用抗Runx 2抗體進(jìn)行5d齡小鼠的下頜骨免疫組化染色在成釉細(xì)胞胞核中見陽性表達(dá),余為陰性(圖3)。

    2.4 重組質(zhì)粒 pcDNA3.1-HisA-Runx 2及siRNA-Runx 2 轉(zhuǎn)染后 Runx 2、AMBN、AMTN 及ODAM mRNA表達(dá)變化

    通過對所得CT值結(jié)果進(jìn)行2-△△CT分析,成釉細(xì)胞中轉(zhuǎn)染Runx2 siRNA 24 h后Runx2 mRNA表達(dá)水平下降約60%,差異有顯著性,說明Runx2基因的沉默效果較好。AMBN、AMTN及ODAM在轉(zhuǎn)染Runx 2 siRNA組表達(dá)水平顯著下降,而轉(zhuǎn)染pcDNA3.1 hisA-Runx 2組表達(dá)水平顯著上升。兩組比較均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)(圖4)。

    圖1 RT-PCR擴(kuò)增及酶切鑒定電泳結(jié)果

    圖 2 Runx 2、amelotin、ameloblastin、ODAM在體外成釉細(xì)胞的表達(dá)

    圖3 5d齡小鼠切牙牙胚免疫組化結(jié)果

    圖4 Real-time PCR檢測Runx 2及AMBN,AMTN,ODAM mRNA表達(dá)變化

    3 討論

    近年來,關(guān)于調(diào)控牙齒發(fā)育的分子機(jī)制方面的研究已經(jīng)取得了很大的進(jìn)步。在確立的與牙齒發(fā)育有關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子中,Runx 2/cbfal是備受關(guān)注的一種。Runx 2是Runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子家族成員,研究發(fā)現(xiàn)Runx 2作為成骨細(xì)胞分化的早期轉(zhuǎn)錄以及成熟的成骨細(xì)胞中基因表達(dá)的調(diào)控因子,在成骨過程中發(fā)揮著重要作用[8]。還有研究發(fā)現(xiàn),Runx 2基因敲除小鼠中出現(xiàn)了牙齒器官發(fā)育不良的現(xiàn)象,這些牙齒器官缺乏明顯的成牙本質(zhì)細(xì)胞和成釉細(xì)胞的分化,無正常的牙本質(zhì)和釉質(zhì)基質(zhì)[1]。國內(nèi)外學(xué)者進(jìn)行免疫組化和原位雜交實驗結(jié)果表明,在鼠的牙胚中包括牙上皮細(xì)胞、牙濾泡細(xì)胞、成骨細(xì)胞、成釉細(xì)胞和成牙本質(zhì)細(xì)胞等,均有過CbfaI的mRNA和蛋白的表達(dá),而且表達(dá)有時空特異性[3,9],這都提示 Runx 2 參與了牙胚的發(fā)育,它可能與細(xì)胞的分化和硬組織的形成有關(guān)。D'Souza等通過RT-PCR、原位雜交和基因敲除等試驗揭示:在牙齒發(fā)育過程中,Runx 2通過調(diào)控上皮與間充質(zhì)的相互作用來控制牙齒形態(tài)的發(fā)生和成釉器的組織分化[1]。AMTN和AMBN為成釉細(xì)胞分泌的牙釉質(zhì)基質(zhì)蛋白,其基因定位于人4號染色體q臂[10],而常染色體遺傳性牙釉質(zhì)發(fā)育不全(Amelogenesis Imperfects,AI)也定位于此[11]。目前已有研究表明這兩種蛋白與牙釉質(zhì)發(fā)育和礦化都有關(guān)系,其成分、結(jié)構(gòu)和功能的改變與牙釉質(zhì)發(fā)育不全的發(fā)生密切相關(guān)[11]。ODAM是成釉細(xì)胞于成熟期高表達(dá)的細(xì)胞外基質(zhì)蛋白,該蛋白表達(dá)起始于成釉細(xì)胞的分泌階段,延伸至成釉細(xì)胞的成熟期[12-13]。相關(guān)的研究證實[12]:ODAM在大鼠切牙牙釉質(zhì)礦化和成熟過程中高表達(dá),并且ODAM基因的過表達(dá)和缺失會引起基質(zhì)金屬蛋白20和釉叢蛋白表達(dá)的上升或下降,可引起小鼠牙齒的釉質(zhì)發(fā)育異常。

    國內(nèi)外許多研究證實Runx 2可能與牙體硬組織的形成有關(guān),然而,對于Runx 2對牙體硬組織形成的基因調(diào)控機(jī)制的研究卻甚少。本實驗構(gòu)建了Runx 2的真核表達(dá)載體,并設(shè)計針對Runx 2的特異性小分子干擾RNA(siRNA)。分別將其轉(zhuǎn)入小鼠成釉細(xì)胞中,通過RT-PCR檢測Runx 2、AMTN、AMBN及ODAM mRNA的表達(dá)變化。結(jié)果顯示,當(dāng)Runx 2表達(dá)上調(diào)時,AMTN和AMBN mRNA的表達(dá)也上調(diào),實驗組與對照組的表達(dá)差異有統(tǒng)計學(xué)意義,但實驗組與對照組ODAM mRNA的表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義。當(dāng)轉(zhuǎn)染Runx 2-siRNA后,Runx 2沉默效果明顯,實時定量PCR檢測到AMTN和AMBN mRNA表達(dá)下調(diào),實驗組與對照組的差別有顯著統(tǒng)計學(xué)意義,實驗組與對照組ODAM mRNA的表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義。本研究初步證實Runx 2通過調(diào)控AMTN及AMBN mRNA的表達(dá)參與牙體硬組織的發(fā)育,這為進(jìn)一步研究Runx 2在牙釉質(zhì)形成中的作用奠定了基礎(chǔ),對于牙釉質(zhì)疾病的預(yù)防及治療有潛在的指導(dǎo)作用。

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    Effect of Runx 2 indevelopingdental enamel

    HE Yong-yun,LIANGguang-zhi,LIU Xiao-ying,SUN Yan,GAO Yu-guang
    (Institute of Stomotalogy,School of Stomotalogy,Weifang Medical University,Weifang 261053,China)

    AIM:To investigate the regulating effects of Runx 2 on the expression of Amelotin(AMTN),Ameloblastin(AMBN)and odontogenic ameloblast-asssociated protein(ODAM)in ameloblasts.METHODS:A full length cDNA of Runx 2 was cloned from mouse ameloblast-lineage cell(ALC)by RT-PCR,and then it was subcloned into the pcDNA3.1-HisA plasmid after sequence analysis.One specificdicer siRNA targeted to Runx 2 mRNA wasdesigned and sythesized.The recombinant plasmid pcDNA3.1-HisA-Runx2 and the siRNA for Runx2 mRNA was transfected into ALC respectively.Quantitative real-time PCR was performed to measure the expression of Runx 2,AMTN,AMBN and ODAMgene.RESULTS:The siRNA-Runx2 elicited a high level ofgene silence in ALC.siRNA for Runx 2 effectively inhibited the expression of AMTN and AMBN.Runx2 overexpression by pcDNA3.1-HisA-Runx 2 plasmid transfection resulted in a significant higher mRNA level of AMTN and AMBN,but exerted no significant effect on the expression of ODAM.CONCLUSION:Runx 2 may play an important role indevelopingdental enamel by regulating the expression of AMTN and AMBN.

    Runx 2;amelotin;ameloblastin;odontogenic ameloblast-asssociated protein,ODAM;RT-PCR

    R780.2

    A

    1005-2593(2011)02-0062-05

    2010-10-08;

    2010-12-16

    國家自然科學(xué)基金資助項目(36072316)

    山東省自然科學(xué)基金資助項目(Y2006C106)

    山東省教育廳基金資助項目(J08LH65)

    何永云(1984-),女,漢族,山東省日照人。碩士生(導(dǎo)師:高玉光),研究方向:牙釉質(zhì)發(fā)育

    高玉光,E -mail:yuguanggao@wfmc.edu.cn

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