摘 要:目的:研究中等強度跑臺運動對去卵巢大鼠腸道菌群的影響,探討腸道菌群與骨量之間的相關性。方法:60只雌性3月齡SPF級Sprague-Dawley大鼠,隨機分為去卵巢組(OVX組)、去卵巢運動組(OVX+EX組)和假手術組(SHAM組),運動結束后采用雙能X線骨密度儀測定體成分和骨密度,Micro-CT掃描股骨觀察骨微結構,16S rRNA高通量測序分析腸道菌群的變化。 結果:(1)與SHAM組相比,OVX組大鼠體重、脂肪含量顯著上升,肌肉含量、骨密度均顯著降低,骨小梁微結構破壞嚴重;與OVX組相比,OVX+EX組大鼠體重和脂肪含量顯著降低,肌肉含量和第4腰椎骨密度顯著升高,股骨骨密度顯著升高,OVX+EX組大鼠骨小梁數目增加且連續(xù)性提高。(2)與SHAM組相比,OVX組大鼠α多樣性增加,厚壁菌門/擬桿菌門(F/B)顯著降低,普雷沃氏菌的相對豐度增加,顫螺菌屬、瘤胃球菌屬、阿克曼菌屬和糞球菌屬的相對豐度降低;與OVX組相比,OVX+EX組大鼠厚壁菌門/擬桿菌門的相對豐度顯著升高,普雷沃氏菌的相對豐度降低,瘤胃球菌屬的相對豐度顯著增加。其中,普雷沃氏菌與骨量顯著負相關,瘤胃球菌屬與骨量顯著正相關。 結論:卵巢切除術改變了大鼠腸道微生物群的組成,中等強度跑臺運動改善了去卵巢大鼠體成分和骨量,其機制可能通過調節(jié)大鼠腸道菌群中普雷沃氏菌、瘤胃球菌屬的豐度實現。
關鍵詞:去卵巢大鼠;中等強度跑臺運動;骨密度;骨微結構;腸道菌群
中圖分類號:G804.2"" 文獻標識碼:A" 文章編號:1006-2076(2024)06-0118-09
The Effect of Moderate-intensity Treadmill Exercise on Bone Mass and Gut Microbiota in Ovariectomized Rats
LI Ye1, GAO Li1, CHENG Xiuguo2, LI Jinying2, YANG Yongjie1
1.College of Sports and Health,Shandong Sport University,Jinan 250102,Shandong,China;2.Graduate School,Shandong Sport University,Jinan 250102,Shandong,China
Abstract:Objective:To study the effect of moderate intensity treadmill exercise on gut microbiota in ovariectomized rats, and to explore the correlation between gut microbiota and bone mass. Methods: Sixty three-month-old female Sprague-Dawley rats of SPF grade were randomly divided into ovariectomized group (OVX), ovariectomized exercise group (OVX+EX) and sham-operated group (SHAM). After exercise, the body composition and bone mineral density were determined by dual-energy X-ray bone densitometry, the bone microstructure was observed by Micro-CT scanning of femur, and the changes of gut microbiota were analyzed by 16S rRNA high-throughput sequencing. Results: (1) Compared with SHAM group, OVX group significantly increased body weight and fat content, significantly decreased muscle content and bone mineral density, and severely damaged trabecular microstructure; Compared with OVX group, body weight and fat content of OVX+EX group were significantly decreased, muscle content and fourth lumbar vertebra bone density were significantly increased, femur bone density was significantly increased, and the number and continuity of bone trabeculae of OVX+EX group were increased. (2) Compared with SHAM group, Alpha diversity increased in OVX group, Firmicutes/Bacteroidetes (F/B) decreased significantly, the relative abundance of Prevoella increased, and the relative abundance of Tremillum, Ruminococcus, Ackermannia and Coprococcus decreased; Compared with OVX group, the relative abundance of F/B in OVX+EX group was significantly increased, the relative abundance of Prevotella was decreased, and the relative abundance of Ruminococcus was significantly increased. Among them, Prevotella was significantly negatively correlated with bone mass, while Ruminococcus was significantly positively correlated with bone mass. Conclusion: Ovariectomy changes the composition of gut microbiota in rats. Moderate intensity treadmill exercise improves the body composition and bone mass of ovariectomized rats, and the mechanism may be achieved by regulating the abundance of Prevotella and Ruminococcus in the gut microbiota of rats.
Key words:ovariectomized rats; moderate intensity treadmill exercise; bone mineral density; bone microstructure; gut microbiota
骨質疏松癥(Osteoporosis,OP)是骨量代謝異常的全身性代謝性疾病,其中絕經后骨質疏松癥(Postmenopausal osteoporosis, PMOP)是女性最為常見的骨質疏松癥類型。2018年,國家衛(wèi)健委發(fā)布的首個骨質疏松癥流行病學調查顯示,50歲以上女性骨質疏松癥患病率為32.1,65歲以上女性骨質疏松癥患病率達到51.6[1]。骨質疏松及骨質疏松性骨折的高風險率和病死率造成了沉重的社會經濟負擔。因此,探索PMOP的發(fā)病機制并研發(fā)防治PMOP的新策略正成為國內外研究熱點。
腸道菌群是腸道內的人體微生物集合[2],現有研究已明確腸道菌群失調是多種代謝性疾病的誘因之一。在骨代謝中,腸道菌群及其代謝物可以改變腸道黏膜上皮組織的通透性進而調節(jié)鈣、磷等營養(yǎng)物質吸收,并通過介導免疫反應等來影響骨代謝平衡[3]。腸道菌群與PMOP的發(fā)生發(fā)展密切相關,多項動物和人體的相關研究發(fā)現[4-6],腸道微生物對骨密度、骨強度以及骨骼重塑有顯著作用,絕經后婦女腸道菌群構成的改變和豐度的變化對骨量流失有重大影響。以往針對PMOP的藥物治療往往伴有不良的副作用,而多年的臨床實踐證明[7-9],適量的體育鍛煉對預防或治療PMOP有較大益處。佟喆等[10]研究表明,運動療法可以通過對鈣的吸收調節(jié)和誘導細胞調節(jié)因子、激素等參與免疫機制,進而預防和治療骨量流失、骨質疏松癥等??梢姡阅c道菌群為靶點,通過施加運動干預可有效調節(jié)腸道菌群的分布和多樣性,促進腸道微生態(tài)平衡,進而改善機體骨骼健康。
鑒于此,本研究采用16S rRNA高通量測序篩選中等強度跑臺運動干預去卵巢骨質疏松大鼠的微生物標志物,以期通過闡明腸道微生物群與延緩骨質疏松作用機制的聯系,探討體育運動防治PMOP的早期預防作用及其分子機制,為臨床探索新的防治方法以及PMOP病人的早期預防和康復治療提供實驗依據。
1 研究對象與方法
本研究整個設計和程序的細節(jié)均符合《赫爾辛基宣言》,實驗程序經過了山東體育學院倫理委員會的批準(批準號:2021027)。實驗中對實驗動物采用鎮(zhèn)靜、麻醉止痛或無痛苦處死,將痛苦最小化處理,以避免實驗動物的痛苦不適。
1.1 實驗動物
SPF級3月齡雌性Sprague-Dawley大鼠60只,體重(272±14)g,單籠飼養(yǎng),自由攝食,以國家標準嚙齒類動物常規(guī)飼料喂養(yǎng);通過人工維持12 h/12 h的室內明暗交替環(huán)境,室內溫度22 ℃~26 ℃,相對濕度45~70。隨機分為去卵巢組(OVX組)、假手術組(SHAM組)和去卵巢運動干預組(OVX+EX組)。實驗動物均來自北京維通利華實驗動物技術有限公司(許可證號:SCXK(京)2016-0006)。
1.2 模型制備
大鼠禁食10~12 h,腹腔注射3戊巴比妥鈉 (1 ml/kg)進行麻醉后,取側臥位,用碘酒、酒精局部消毒皮膚,在雙側背部中線旁0.5~1.0 cm做縱行切口切開皮膚,向兩側分離皮膚、筋膜及肌肉,打開左、右腹部肌肉的薄弱部分,可見淡粉紅色的卵巢位于兩側腎臟外下方,然后輕輕提起卵巢,結扎后切除,縫合皮膚,另一側以同樣方法切除卵巢[11]。SHAM組進行假手術,同樣方式脫毛和切開背部中央皮膚,不切除卵巢,而將其旁邊與卵巢等大的白色脂肪組織切除后縫合部位。手術后,連續(xù)7天用碘酒給實驗動物進行創(chuàng)口消毒,前3天注射青霉素預防感染。
1.3 運動方案
按照相關研究中采用的負荷模型標準[12],制定中等強度跑臺運動負荷方案。OVX+EX組大鼠術后1周開始,進行7天的適應性跑臺(ZH-PT動物實驗跑臺,中國安徽淮北正華生物儀器設備有限公司)訓練;手術后第3周開始,按照跑速20 m/min,持續(xù)時間60 min的方案進行訓練。所有訓練均在上午固定時間進行,每周訓練5天,共17周。
1.4 指標測定
1.4.1 大鼠體成分、骨密度的測定
取材前對各組大鼠稱重,麻醉。然后,采用美國GE公司Lunar Prodigy型雙能X線骨密度儀,選用骨密度分析儀中的小動物測量模式,對麻醉后的大鼠全身進行測量,并以其解剖學結構為依據,對大鼠各部位進行分區(qū),計算全身脂肪含量和肌肉含量。為防止末次運動對實驗結果的干擾,OVX+EX組大鼠于最后一次訓練結束24~36 h后進行取材。取材后對動物實施安樂死,分離大鼠左側股骨、脛骨、第4腰椎,剔除軟組織,用浸透生理鹽水的紗布包裹放入試管中并進行標記,-80 ℃凍存用于測定骨密度。最后,采用NORLAND XR-600骨密度儀測量離體股骨的遠端、脛骨的近端以及第4腰椎的骨密度和骨礦含量。分離右側股骨,使用4多聚甲醛固定液固定用于觀察骨微結構。
1.4.2 Micro-CT掃描股骨
各組隨機抽取3根大鼠右側股骨,解凍后用SkyScan1172顯微CT對其進行掃描(電壓80 kV,電流112 μA, 9 μm×9 μm尺寸的像素點)。興趣區(qū)定位于股骨遠端生長板剛剛消失后的部位到其上方100層之間,采用計算機自動完成圖像的二值化,再進行定量分析,得到大鼠股骨遠端骨松質骨微結構指標,同時構建三維重建圖像。
1.4.3 大鼠糞便采集和腸道菌群DNA提取測序和生物信息分析
于取材日早上6:00-8:00間收集各組大鼠的糞便,置于帶有相應編號的干燥無菌的凍存管中,經封裝后放入液氮罐中,-80 ℃保存。采用16S rRNA高通量測序分析大鼠糞便腸道菌群,提取糞便樣本DNA,PCR 擴增 16S rRNA 基因 V3~V4 區(qū),檢測合格的樣品構建文庫,最后用合格的文庫進行cluster制備和測序,進行腸道菌群的結構和豐度分析。
1.5 數理統(tǒng)計
采用 SPSS 26.0軟件進行統(tǒng)計分析,所有數據的統(tǒng)計結果用平均值±標準差(M±SD)表示。OVX組、SHAM組和OVX+EX組之間骨密度的差異比較采用協方差分析,其余指標的差異比較均采用單因素方差分析,差異出現顯著性時用LSD進行組間多重比較檢驗。體成分、骨密度與篩選的差異菌群表達水平之間的相關性采用Spearman相關分析法并生成相關性分析熱圖,P<0.05代表顯著性差異,P<0.01代表非常顯著性差異。采用R語言工具繪制腸道菌群α多樣性、PCA分析和門水平、屬水平的豐度圖。
2 結 果
2.1 各組大鼠體重、體成分、骨密度比較
各組大鼠體重、體成分和骨密度比較結果如表1所示。與SHAM組相比,OVX組大鼠體重、脂肪含量顯著上升,肌肉含量、骨密度均顯著降低;與OVX組相比,OVX+EX組大鼠體重、脂肪含量顯著下降,肌肉含量、骨密度顯著高于OVX組。這表明去卵巢導致體重、體脂的增加和骨質流失,而運動有助于減緩肌肉含量和骨密度的下降,在一定程度上避免了卵巢切除術造成的骨質流失。
2.2 各組大鼠骨微結構比較
各組大鼠股骨二維和三維結構重建結果如圖1所示。與SHAM組相比,OVX組大鼠股骨骨小梁微結構破壞較為嚴重,骨小梁稀疏且骨小梁間出現較大空隙;與OVX組相比,OVX+EX組大鼠骨小梁數目增加且連續(xù)性提高。這表明去卵巢大鼠松質骨的體積變小,骨小梁數目減少,厚度降低,而中等強度運動顯著增加了松質骨的體積和骨小梁的數目,減少了骨小梁的分離度,使得股骨松質骨的骨微結構得到改善。
2.3 各組大鼠腸道菌群多樣性比較
采用Chao1 指數和Ace指數反映樣本群落豐富度,采用Shannon指數和Simpson指數反映群落多樣性,統(tǒng)計結果如圖2和圖3所示。與SHAM組相比,OVX組大鼠的Chao1指數和ACE指數顯著升高;與OVX組相比,OVX+EX組大鼠Chao1指數和ACE指數顯著降低,各組大鼠間Shannon指數和Simpson指數無顯著變化。這表明去卵巢手術增加了腸道菌群的豐富度,中等強度跑臺運動降低了OVX組大鼠腸道菌群豐富度,但二者并不影響其多樣性。此外,SymbolbA@多樣性分析可以評估不同組間微生物群落間的差異,研究主要采用PCA分析方法反映多樣性,結果表明3組大鼠腸道菌群在結構組成上存在一定差異。
2.4 各組大鼠腸道菌群構成及分布豐度分析
厚壁菌門、擬桿菌門是哺乳動物腸道菌群的兩個主要組成部分,它們在維持腸道微生態(tài)穩(wěn)態(tài)中起著重要作用?;谖锓N注釋結果,選取每組在門和屬水平上最大豐度排行前10的菌群,形成物種相對豐度柱狀累加圖(見圖4)。各組大鼠腸道菌群的相對豐度經單因素方差分析顯示,在門水平上,與SHAM組相比,OVX組大鼠的厚壁菌門/擬桿菌門(F/B)顯著性降低;屬水平上,OVX組大鼠中普雷沃氏菌的相對豐度顯著增加,瘤胃球菌屬、阿克曼菌屬、顫螺菌屬的相對豐度顯著降低;與OVX組相比,OVX+EX組大鼠的厚壁菌門/擬桿菌門顯著性升高,腸道內普雷沃氏菌的相對豐度顯著降低,瘤胃球菌屬、乳桿菌屬、阿克曼菌屬的相對豐度顯著增加。
2.5 關鍵菌群與體成分、骨密度參數相關性分析
關鍵菌群與體成分、骨密度參數相關性分析如圖5所示。普雷沃氏菌與脂肪含量顯著正相關,與肌肉含量顯著負相關,與第4腰椎骨密度顯著負相關;瘤胃球菌屬與脂肪含量顯著負相關,與肌肉含量、脛骨骨密度顯著正相關,與第4腰椎骨密度顯著正相關;顫螺菌屬與體重顯著負相關。這表明普雷沃氏菌、瘤胃球菌屬是運動影響絕經后骨質疏松的重要候選生物標志物。
3 討 論
3.1 OVX大鼠腸道菌群的結構特征
PMOP是一種發(fā)病率高、危害性大且治療困難的中老年疾病,對其進行預防和治療已引起全球性重視,且越來越多的研究證明了腸道菌群在骨穩(wěn)態(tài)中的調節(jié)作用。Sjgren等[13]指出,腸道菌群缺乏的小鼠骨量高于常規(guī)飼養(yǎng)小鼠,首次證明了腸道菌群與骨量具有相關性,腸道菌群可能是骨量的主要調節(jié)器。女性絕經后,雌激素明顯下降,導致肥胖、肌肉含量下降、脂代謝紊亂、骨密度降低等異常情況。Ohlsson等[5]發(fā)現,腸道菌群失衡引起的炎癥狀態(tài)、自身免疫改變造成骨質流失和骨形成減少,提示絕經后婦女腸道菌群構成的改變和豐度的變化對骨量流失有重大影響。
微生物多樣性分析被廣泛認為是健康狀況的重要指標。Wang等[14]和Xu等[15]指出,骨質疏松患者的OTU數量和α多樣性增加。王飆等[16]指出,骨質疏松患者腸道菌群的Chao1指數和ACE指數顯著高于健康對照組,Shannon指數和Simpson指數在兩組之間的差異無統(tǒng)計學意義。OVX大鼠是研究女性雌激素缺乏導致PMOP的典型實驗模型。本研究發(fā)現,OVX組大鼠的Chao1指數和ACE指數顯著性升高,Shannon指數和Simpson指數無顯著變化,表明去卵巢增加了大鼠腸道菌群的豐富度,但未改變多樣性。然而,Wang等[17]的研究發(fā)現,絕經后骨質疏松婦女的ACE指數和Chao1指數顯著低于骨量正常的絕經后婦女,Shannon指數和Simpson指數顯示這兩組之間的差異很??;Kuo等[18]和He等[19]的研究發(fā)現,骨質疏松癥患者的α多樣性下降,提示絕經后骨質疏松癥的細菌豐富性和多樣性均有所減少。綜合來看,由于地理位置、樣本量、分布和患者飲食習慣的不同,目前臨床研究對PMOP人群腸道菌群的組成特征并沒有達成一致結論。
厚壁菌門/擬桿菌門比率(F/B)是檢測某些疾病(如糖尿病、肥胖癥和高血壓等)的重要代表性生物標志物。本研究結果顯示,在門水平上,與SHAM組相比,OVX組大鼠厚壁菌門/擬桿菌門(F/B)顯著性降低。其他研究亦發(fā)現,骨質疏松人群[20]與OVX大鼠[21]均顯示出厚壁菌門/擬桿菌門(F/B)下降,普雷沃氏菌在骨質疏松早期迅速增加并保持較高的豐度,但在后期逐漸減少,表明以α多樣性增加和腸道菌群組成顯著改變?yōu)樘卣鞯哪c道菌群生態(tài)失調與類固醇缺乏誘導的骨質疏松癥有關,據此提出了糞便微生物群的特定變化與類固醇缺乏誘導的骨質疏松癥的發(fā)病機制相關。Yuan等[22]同樣指出,與SHAM組相比,在門水平上,OVX組大鼠厚壁菌門的相對豐度顯著降低,擬桿菌門的豐度顯著增加;在屬水平上,OVX組大鼠擬桿菌門的Bacteroides和Alloprevotella的豐度增加,而厚壁菌門的乳桿菌和Ruminococcaceae UCG-014的豐度減少,糞便F/B比率與破骨細胞分化呈負相關。Huang等[23]的研究發(fā)現,中國女性絕經后骨質疏松患者的腸道中,厚壁菌門的相對豐度低于健康人。綜上所述,推測擬桿菌門和厚壁菌門豐度與骨質疏松癥有關,它們是骨量變化的潛在關聯指標。
此外,眾多研究表明,雖然對菌門內較小分類單位,如“屬”“種”變化的相關分析更加復雜,但亦有重要意義,而16S rRNA測序分析物種的鑒定深度可達屬水平。本研究結果顯示,在屬水平上,OVX組大鼠中普雷沃氏菌的相對豐度增加,顫螺菌屬、瘤胃球菌屬、阿克曼菌屬、糞球菌屬的相對豐度降低。而魏明等[24]的研究表明,在門層面上,SHAM組小鼠與OVX組小鼠比較差異無統(tǒng)計學意義;在屬層面上,OVX組小鼠的糞球菌屬及擬桿菌屬比例下降,賴氨酸芽胞桿菌屬增加。梅馮馮[25]指出,與SHAM組相比,在門水平上,OVX組大鼠的Firmicutes 和 Proteobacteria 顯著降低,而 Bacteroidetes顯著增多;在屬水平上,Alistipes明顯增加。許家豪[26]指出,圍絕經期女性腸道菌群中的厚壁菌與擬桿菌比例較高,變形菌門的相對豐度較低,毛螺旋菌科的相對豐度較高,普雷沃氏菌的相對豐度較低。Das等[27]和Wei等[28]指出,骨質疏松患者乳酸桿菌和瘤胃球菌的相對豐度增加。結合上述分析可以推測,本研究中的普雷沃氏菌、顫螺菌屬、瘤胃球菌屬、阿克曼菌屬、糞球菌屬等是與骨質減少和骨質疏松相關的高度富集的細菌類群,可能是早期發(fā)現骨質減少和骨質疏松的潛在生物標志物,或有助于骨質減少和骨質疏松的治療和預防。上述研究結果存在一定的差異,或許是研究的標本來源和樣本數量的不同、16S rRNA測序深度覆蓋不足以及得到的序列注釋不到種水平等缺陷所導致的。
3.2 中等強度跑臺運動對OVX大鼠腸道菌群的影響
運動作為一種環(huán)境刺激性因素,可以有效調節(jié)腸道菌群的成分和結構、增加有益菌群數量、恢復菌群平衡從而改善機體健康[29]。大量橫斷面研究證實[30-31],體力活動或心肺健康與腸道菌群組成之間存在關聯。Evans等[32]觀察到,運動引起的厚壁菌/擬桿菌比率變化與動物行走的距離成反比。此外,Choi等[33]的研究發(fā)現,自愿性車輪行駛可引起小鼠腸道2 150個分類群豐度的變化,并能夠抵消暴露于多氯聯苯引起的小鼠腸道微生物豐富度的降低,同時也增加了大鼠的乳酸桿菌屬和球擬布氏真桿菌群。Morita等[34]指出,12周的有氧運動增加了健康老年婦女腸道微生物群組成中腸道類桿菌的相對豐度,同時也改善了健康老年婦女的心肺健康,提示運動可能是一種優(yōu)化腸道微生物的重要方法。
同時,體育運動可以影響各個年齡段個體骨骼發(fā)育的質量,機械負荷還可以通過影響骨骼的幾何形狀進而影響骨強度。Greenhill[35]的研究指出,鍛煉可通過改善腸道菌群結構提高骨密度,菌群與骨骼的積極變化相關,如雙歧桿菌科的豐度與骨體積呈正相關。高脂飲食可以導致小鼠椎骨、脛骨骨小梁減少,骨髓中脂肪增多,腸道菌群失調,運動能夠減少高脂飲食所導致的腸道菌群失調[36]。Inchingolo等[37]的研究發(fā)現,以腸道菌群為靶點,通過菌群定植、益生菌補充和運動干預等不同方式可以延緩骨質疏松的發(fā)生。楊啟航等[38]的研究表明,運動作為影響腸道菌群與骨代謝的非藥物干預手段,可以調控腸道菌群穩(wěn)態(tài)、改善腸屏障功能、促進短鏈脂肪酸和膽汁酸分泌、下調血清脂多糖水平、降低氧化應激,進而抑制骨細胞凋亡、抑制破骨細胞分化、促進成骨細胞分化和調節(jié)骨細胞營養(yǎng)代謝,從而發(fā)揮防治骨質疏松的作用。
本研究結果顯示,中等強度跑臺運動顯著降低了OVX組大鼠普雷沃氏菌的相對豐度,顯著提高了瘤胃球菌屬的相對豐度;相關性分析顯示普雷沃氏菌與脂肪含量顯著正相關,與第4腰椎骨密度顯著負相關,瘤胃球菌屬與骨密度顯著正相關。這提示運動可能通過影響普雷沃氏菌和瘤胃球菌屬的相對豐度從而改善OVX組大鼠的體成分和骨量。Clarke等[31]對愛爾蘭橄欖球運動員腸道菌群進行研究發(fā)現,其厚壁菌門和瘤胃球菌屬的含量增加,擬桿菌門含量下降。Petriz等[39]研究發(fā)現,運動能夠增強大鼠厚壁菌門的豐度,降低擬桿菌門的含量,改變腸道菌群結構成分。胡雙雙等[40]的研究發(fā)現,6周中低強度運動可以顯著提高小鼠腸道菌群的豐度,顯著增加厚壁菌門與放線菌門的豐度。這與本研究中中等強度跑臺運動對去卵巢大鼠腸道菌群的影響結果相一致。
Gorvitovskaia[41]提出,將普雷沃氏菌和類桿菌解釋為飲食和生活方式的生物標志物。Tsai等[42]的研究表明,腸道微生物群中普氏菌的豐度與II型糖尿病患者的健康飲食呈負相關;Ley[43]的研究證實普雷沃氏菌菌株與富含植物的飲食有關,且與慢性炎癥有關;Choi等[44]的研究進一步顯示,普雷沃氏菌與炎癥性骨質流失有關。因此,上述菌屬仍然被歸類為潛在的致病菌[45]。Ahmed[46]的研究發(fā)現,普雷沃氏菌與中老年人的認知能力下降有關,且顯示出了誘導結締組織降解和牙槽骨吸收的巨大潛力。很多研究表明[21,47-48],骨質疏松大鼠中普雷沃氏菌的相對豐度會增加,因而大多觀點支持屬于擬桿菌門的普雷沃氏菌科負調控骨量。Allen等[49]的研究表明,對小鼠進行6周自由輪跑運動干預,可使阿克曼氏菌、瘤胃球菌及毛螺菌科豐度增加,普氏菌降低,該變化有利于抑制腸道炎癥,防止腸道組織損傷。但也有相反的報道[17],口服給予雌性去卵巢C57BL6/J小鼠普雷沃氏菌可以減少骨質流失,通過改變IL-1β、TNF-α和其他破骨細胞因子的表達抑制破骨細胞活性發(fā)揮作用。大量研究發(fā)現,運動會增加瘤胃球菌的數量,小鼠自由輪跑運動7周后,腸道瘤胃球菌科的豐度增加而理研菌科的豐度降低[50],該變化有利于促進短鏈脂肪酸的分泌,通過調節(jié)腸道微生物群的平衡來提高運動表現并發(fā)揮抗肥胖作用;小鼠進行中等強度跑臺運動12周后,瘤胃球菌的豐度增加,大腸桿菌等的豐度降低[51],該變化可在一定程度上降低腸道組織中的腫瘤數量,有利于改善腫瘤疾病。Dabard等[52]的研究表明,運動能夠增加厚壁菌門中產丁酸鹽的菌,如瘤胃球菌屬。而丁酸鹽對腸道能夠起到很好的保護作用,因而瘤胃球菌屬具有對抗細菌,保護宿主不受病原體侵犯的作用。
運動干預與腸道菌群之間的關系很復雜,取決于多種因素,包括運動類型、運動強度、運動持續(xù)時間、運動頻率、運動時周圍環(huán)境等。已有的研究表明,適度運動可以提高骨量、調節(jié)腸道菌群組成,但運動調節(jié)特定菌群豐度與成骨、破骨功能之間的相關性及具體機制仍有待進一步證實。本研究的結果表明,卵巢切除術改變了大鼠腸道微生物群的組成和功能,中等強度跑臺通過調節(jié)OVX組大鼠腸道微生物群中普雷沃氏菌和瘤胃球菌的相對豐度來改善骨量。
4 結 論
卵巢切除術改變了大鼠腸道微生物群的組成,主要體現在卵巢切除術改變了大鼠腸道微生物群的組成;中等強度跑臺運動可能通過調節(jié)大鼠腸道菌群中普雷沃氏菌、瘤胃球菌屬的相對豐度改善去卵巢大鼠的體成分和骨量。
參考文獻:
[1] 人民網.衛(wèi)健委發(fā)布首個中國骨質疏松癥流行病學調查結果[EB/OL].[2018-10-19](2024-02-20). http://health.people.cn/n1/2018/1019/c14739-30352051.html.
[2] VZQUEZ-BAEZA Y,CALLEWAERT C,DEBELIUS J,et al.Impacts of the human gut microbiome on therapeutics[J].Annu Rev Pharmacol Toxicol,2018(58):253-270.
[3] WEAVER C M.Diet,gut microbiome,and bone health[J].Curr Osteoporos Rep,2015,13(2):125-130.
[4] MCCABE L,BRITTON R A,PARAMESWARAN N.Prebiotic and probiotic regulation of bone health: role of the intestine and its microbiome[J].Current Osteoporosis Reports,2015,13(6):363-371.
[5] OHLSSON C,SJGREN K.Effects of the gut microbiota on bone mass[J].Trends In Endocrinology Metabolism,2015,26(2):69-74.
[6] ANANTHARAJU A,KLAMUT M.Small intestinal bacterial overgrowth:a possible risk factor for metabolic bone disease[J].Nutrition Reviews,2003,61(4):132-135.
[7] TARTIBIAN B,HAJIZADEH MALEKI B,KANALEY J,et al.Long-term aerobic exercise and omega-3 supplementation modulate osteoporosis through inflammatory mechanisms in post-menopausal women:a randomized, repeated measures study[J].Nutrition Metabolism,2011,8(1):71.
[8] HARDING A T,BECK B R.Exercise,osteoporosis,and bone geometry[J].Sports,2017,5(2):29.
[9] CUNHA P M,RIBEIRO A S,TOMELERI C M,et al.The effects of resistance training volume on osteosarcopenic obesity in older women[J].Journal of Sports Sciences,2018,36(14):1564-1571.
[10] 佟喆,張振南,于潼.運動療法防治骨質疏松癥機制的研究進展[J].中國骨質疏松雜志,2022,28(10):1556-1560.
[11] PARK S B, LEE Y J, CHUNG C K.Bone mineral density changes after ovariectomy in rats as an osteopenic model:stepwise description of double dorso-lateral approach[J].Journal Of Korean Neurosurgical Society,2010,48(4):309-312.
[12] CHEN Y J,WANG S H,BU S M,et al.Treadmill training prevents bone loss by inhibition of PPARγ expression but not promoting of Runx2 expression in ovariectomized rats[J].European Journal Of Applied Physiology,2011,111(8):1759-1767.
[13] SJGREN K,ENGDAHL C,HENNING P,et al.The gut microbiota regulates bone mass in mice[J].Journal Of Bone And Mineral Research:The Official Journal Of The American Society For Bone And Mineral Research,2012,27(6):1357-1367.
[14] WANG J H,WANG Y Y,GAO W J,et al.Diversity analysis of gut microbiota in osteoporosis and osteopenia patients[J].Peer J,2017(5):e3450.
[15] XU Z M, XIE Z,SUN J G,et al.Gut microbiome reveals specific dysbiosis in primary osteoporosis[J].Frontiers In Cellular And Infection Microbiology,2020:10160.
[16] 王飆,趙和平,高文杰,等.骨質疏松癥患者腸道菌群多樣性分析[J].中國骨質疏松雜志,2017,23(6):715-718.
[17] WANG Z X,CHEN K,WU C C,et al.An emerging role of prevotella histicola on estrogen deficiency-induced bone loss through the gut microbiota-bone axis in postmenopausal women and in ovariectomized mice[J].The American Journal Of Clinical Nutrition,2021,114(4):1304-1313.
[18] KUO Y J,CHEN C J,HUSSAIN B,et al.Inferring bacterial community interactions and functionalities associated with osteopenia and osteoporosis in taiwanese postmenopausal women[J].Microorganisms,2023,11(2):234.
[19] HE J Q,XU S B,ZHANG B Z,et al.Gut microbiota and metabolite alterations associated with reduced bone mineral density or bone metabolic indexes in postmenopausal osteoporosis[J].Aging,2020,12(9):8583-8604.
[20] LI C,HUANG Q,YANG R,et al.Gut microbiota composition and bone mineral loss-epidemiologic evidence from individuals in Wuhan,China[J].Osteoporosis International:a journal established as result of cooperation between the European Foundation for Osteoporosis and the National Osteoporosis Foundation of the USA,2019,30(5):1003-1013.
[21] MA S C,QIN J H,HAO Y Q,et al.Association of gut microbiota composition and function with an aged rat model of senile osteoporosis using 16S rRNA and metagenomic sequencing analysis[J].Aging,2020,12(11):10795-10808.
[22] YUAN Y,YANG J,ZHUGE A X,et al.Gut microbiota modulates osteoclast glutathione synthesis and mitochondrial biogenesis in mice subjected to ovariectomy[J].Cell Proliferation,2022,55(3):e13194.
[23] HUANG R,LIU P,BAI Y G,et al.Changes in the gut microbiota of osteoporosis patients based on 16S rRNA gene sequencing:a systematic review and meta-analysis[J].Journal of Zhejiang University-Science B,2022,23(12):1002-1013.
[24] 魏明,田甜,劉鵬,等.去卵巢小鼠腸道菌群和血脂的變化[J].中國微生態(tài)學雜志,2021,33(5):502-505.
[25] 梅馮馮.檳榔籽多酚基于Wnt/β-catenin通路促進骨形成改善去卵巢大鼠骨質疏松的作用機制研究[D].??冢汉D洗髮W,2021.
[26] 許家豪.運動對圍絕經期女性腸道菌群影響的研究[D].廣州:廣州大學,2023.
[27] DAS M,CRONIN O,KEOHANE DM,et al.Gut microbiota alterations associated with reduced bone mineral density in older adults[J].Rheumatology(Oxford,England),2019,58(12):2295-2304.
[28] WEI M H,LI C,DAI Y,et al.High-throughput absolute quantification sequencing revealed osteoporosis-related gut microbiota alterations in han chinese elderly[J].Frontiers In Cellular And Infection Microbiology,2021(11):630372.
[29] 于春霞,傅力.腸道菌群——運動干預防治代謝性疾病的新靶點[J].中國運動醫(yī)學雜志,2017,36(5):443-447.
[30] ESTAKI M,PITHER J,BAUMEISTER P,et al.Cardiorespiratory fitness as a predictor of intestinal microbial diversity and distinct metagenomic functions[J].Microbiome,2016,4(1):42.
[31] CLARKE S F,MURPHY E F,O′SULLIVAN O,et al.Exercise and associated dietary extremes impact on gut microbial diversity[J].Gut,2014,63(12):1913-1920.
[32] EVANS C C,LEPARD J K,KWAK W J,et al.Exercise prevents weight gain and alters the gut microbiota in a mouse model of high fat diet-induced obesity[J].PLoS ONE,2017,9(3):e92193.
[33] CHOI J J,EUM S Y,RAMPERSAUD E,et al.Exercise attenuates PCB-induced changes in the mouse gut microbiome[J].Environmental health perspectives,2013,121(6):725-730.
[34] MORITA E,YOKOYAMA H,IMAI D,et al.Aerobic exercise training with brisk walking increases intestinal bacteroides in healthy elderly women[J].Nutrients,2019,11(4):868-868.
[35] GREENHILL C.Exercise affects gut microbiota and bone[J].Nature Reviews Endocrinology,2018,14(6):322.
[36] MCCABE R L,IRWIN R,TEKALURA,et al.Exercise prevents high fat diet-induced bone loss,marrow adiposity and dysbiosis in male mice[J].Bone,2018:11820-11831.
[37] INCHINGOLO A M,GARGIULO ISACCO C,INCHINGOLO A D,et al.The human microbiota key role in the bone metabolism activity[J].European Review For Medical And Pharmacological Sciences,2023,27(6):2659-2670.
[38] 楊啟航,蒲銳,陳子揚,等.腸道菌群與骨質疏松及運動干預[J].中國組織工程研究,2024,28(26):4250-4256.
[39] PETRIZ B A,CASTRO A P,ALMEIDA J A,et al.Exercise induction of gut microbiota modifications in obese,non-obese and hypertensive rats[J].BMC Genomics,2014,15(1):511.
[40] 胡雙雙,俞益,董靜梅.基于宏基因組學技術的炎癥性腸病小鼠的運動干預研究[J].中國體育科技,2022,58(2):89-95.
[41] GORVITOVSKAIA A,HOLMES S P,HUSE S M.Interpreting prevotella and bacteroides as biomarkers of diet and lifestyle[J].Microbiome,2016,4(1):15.
[42] TSAI C Y,LIU P Y,HUANG M C,et al.Abundance of prevotella copri in gut microbiota is inversely related to a healthy diet in patients with type 2 diabetes[J].J Food Drug Anal,2023,31(4):599-608.
[43] LEYR E.Gut microbiota in 2015:prevotella in the gut: choose carefully[J].Nat Rev Gastroenterol Hepatol,2016,13(2):69-70.
[44] CHOI E Y,BAE S H,HAM H,et al.Genistein suppresses prevotella intermedia lipopolysaccharide-induced inflammatory response in macrophages and attenuates alveolar bone loss in ligature-induced periodontitis[J].Archives of Oral Biology,2016(62):70-79.
[45] PRECUP G,VODNAR D C.Gut Prevotella as a possible biomarker of diet and its eubiotic versus dysbiotic roles:a comprehensive literature review[J].British Journal of Nutrition,2019,122(2):131-140.
[46] AHMED H S.The impact of prevotella on neurobiology in aging:deciphering dendritic cell activity and inflammatory dynamics[J].Molecular Neurobiology,2024,61(11):9252.
[47] NING W,SICONG M,LINGJIE F.Gut microbiota feature of senile osteoporosis by shallow shotgun sequencing using aged rats model[J].Genes,2022,13(4):619-619.
[48] 郭一覽,孫朋.腸道菌群在運動調控骨重塑中的作用機制[J].中國體育科技,2023,59(9):72-80.
[49] ALLEN J M,MAILING L J,COHRS J,et al.Exercise training-induced modification of the gut microbiota persists after microbiota colonization and attenuates the response to chemically-induced colitis in gnotobiotic mice[J].Gut Microbes,2018,9(2):115-130.
[50] NAGANO T,YANO H.Effect of dietary cellulose nanofiber and exercise on obesity and gut microbiota in mice fed a high-fat-diet[J].Bioscience Biotechnology And Biochemistry,2020,84(3):613-620.
[51] REN J,GUO B,SUI H,et al.The effects of aerobic exercise on the intestinal tumors and flora of the ApcsupMin/+ mouse[J].Clinical Translational Oncology:Official Publication Of The Federation Of Spanish Oncology Societies And Of The National Cancer Institute Of Mexico,2021,24(2):1-14.
[52] DABARD J,BRIDONNEAU C,PHIL2LIPEC,et al.Ruminococcin a,a new lantibiotic produced by a ruminococcus gnavus strain isolated from human feces[J].Applied And Environmental Microbiology,2001,67(9):4111-4118.