鄧 雯,廖雅如,黃麗衡,楊安樹,2,*,陳紅兵,2
(1.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與資源挖掘全國(guó)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330047;2.南昌大學(xué)中德聯(lián)合研究院,江西 南昌 330047)
大豆?fàn)I養(yǎng)豐富,蛋白質(zhì)含量高,是人們?nèi)粘o嬍持兄匾牡鞍踪|(zhì)來源[1]。但大豆又是常見的過敏食物之一,目前仍沒有可完全治愈大豆過敏的方法,患者最有效的方法是規(guī)避攝入大豆過敏原[2]。β-伴大豆球蛋白(β-conglycinin,BCG)是大豆中的主要過敏原之一[3]。迄今為止,工業(yè)上使用的任何單一的食品加工處理都不能完全消除大豆的致敏性[4],而且還極易破壞大豆的營(yíng)養(yǎng)成分與功能特性[5]。所以,尋找安全有效的新型方法降低大豆致敏性具有重要意義。大豆異黃酮是一種植物類雌激素[6],其中活性成分主要為染料木素(genistein,Gen)、大豆苷元(daidzein,Dai)和黃豆黃素(glycitein,Gly),具有抗氧化[7]、抗過敏、預(yù)防骨質(zhì)疏松、防癌抗癌等功效[8]。研究顯示,大豆異黃酮可以調(diào)節(jié)Th1/Th2平衡、減少免疫因子合成、加強(qiáng)人體對(duì)致敏食物的耐受[9]。有研究表明,大豆異黃酮可顯著減少花生過敏小鼠的肥大細(xì)胞脫顆粒,有效緩解小鼠過敏癥狀的發(fā)生[10]。迄今為止,黃酮類化合物抗過敏的相關(guān)報(bào)道,多數(shù)文獻(xiàn)主要圍繞黃酮類化合物本身開展抗過敏作用研究,一般通過調(diào)節(jié)機(jī)體免疫系統(tǒng)的平衡和減少效應(yīng)細(xì)胞中活性介質(zhì)的釋放來緩解過敏反應(yīng)。近年來,從食物組分干預(yù)的角度研究抗過敏作用受到廣泛關(guān)注,如通過主要過敏蛋白與多酚類、黃酮類活性物質(zhì)發(fā)生相互作用,可降低花生過敏蛋白的致敏性[11-12]。由于不同種類異黃酮與不同過敏蛋白的相互作用機(jī)制及其對(duì)復(fù)合物結(jié)構(gòu)與致敏性的影響也存在差異,大豆異黃酮能否改變大豆中主要過敏原蛋白的結(jié)構(gòu)從而影響其致敏性,有待進(jìn)一步研究。
本研究以Gen、Dai 2 種活性異黃酮和BCG為研究對(duì)象,利用熒光光譜法分析異黃酮與蛋白相互作用機(jī)制及其復(fù)合物的結(jié)構(gòu),并利用競(jìng)爭(zhēng)酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)法和免疫印跡評(píng)估復(fù)合物及其消化產(chǎn)物的致敏性,以期在分子水平為活性大豆異黃酮與BCG相互作用機(jī)制提供新的見解,并為其在食物過敏預(yù)防和管理中的潛在應(yīng)用提供新的方向。
BCG(純度為84.1%)實(shí)驗(yàn)室自制;Gen、Dai(純度≥98%)上海源葉生物科技有限公司;苯氨基-1-萘磺酸(8-anilino-1-naphthalenesulfonic acid,ANS)、胃蛋白酶、胰蛋白酶、生物素標(biāo)記的羊抗人免疫球蛋白E(immunoglobulin E,IgE)美國(guó)Sigma公司;大豆過敏患者血清(詳細(xì)信息見表1)重慶曼紐艾克科技有限公司;辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)標(biāo)記的鏈霉親和素 深圳欣博盛生物科技有限公司;其他試劑均為分析純。
表1 大豆過敏患者血清信息Table 1 Sera information about soybean allergic patients participating in this study
F-4600熒光分光光度計(jì) 日本Hitachi公司;Varioskan LUX多功能酶標(biāo)儀 美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司;MOS-450圓二色光譜儀 法國(guó)Bio-Logi公司;UV WinLab紫外分光光度計(jì) 美國(guó)Perkin Elmer公司。
1.3.1 熒光猝滅光譜分析
首先掃描BCG樣品(2×10-6mol/L)的熒光光譜,再依次將60 μL異黃酮溶液(2×10-4mol/L)等分10 次加入,掃描混合溶液的熒光光譜。同時(shí)掃描磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)的熒光光譜作為空白對(duì)照,并扣除相應(yīng)濃度異黃酮溶液的熒光。光譜條件:在溫度298 K和314 K下,設(shè)定激發(fā)波長(zhǎng)(λex)為280 nm,發(fā)射波長(zhǎng)(λem)為250~500 nm,狹縫寬度為2.5 nm,固定掃描速率為1 200 nm/min。分別以Gen、Dai濃度為橫坐標(biāo)、F0/F為縱坐標(biāo)擬合得到Stern-Volmer曲線進(jìn)行分析,方程如式(1)所示:
式中:F和F0分別為有、無猝滅劑時(shí)的大分子熒光強(qiáng)度;[Q]為淬滅劑濃度/(mol/L);KSV為猝滅常數(shù)/(L/(mol·s));Kq為生物分子的猝滅速率常數(shù)/(L/mol);τ0為無猝滅劑時(shí)生物大分子的平均壽命(10-8s)。
1.3.2 同步熒光光譜分析
在Δλ=15/60 nm 條件下,掃描BCG 溶液(2×10-6mol/L)的同步熒光光譜,再將60 μL異黃酮溶液(2×10-4mol/L)分5 次加入,每次加入后靜置3 min后,依次掃描混合溶液的熒光光譜,并扣除相應(yīng)濃度異黃酮溶液的熒光。
1.3.3 三維熒光光譜分析
配制BCG與異黃酮物質(zhì)的量比分別為1∶1、1∶10、1∶20的混合溶液,以PBS作為空白對(duì)照,掃描其三維熒光光譜,并扣除相應(yīng)濃度異黃酮溶液的熒光。掃描條件為:激發(fā)波長(zhǎng)200~400 nm,發(fā)射波長(zhǎng)200~600 nm,光譜采集間距5 nm,溫度298 K。
1.3.4 外源性熒光光譜分析
室溫條件下,配制不同濃度異黃酮溶液,分別加入BCG溶液(0.2 mg/mL)中,得到不同物質(zhì)的量比混合溶液,靜置2 h。將20 μL 5 mmol/L ANS溶液加入2 mL混合溶液中,黑暗條件下反應(yīng)30 min后,掃描疏水性熒光光譜,并扣除相應(yīng)濃度異黃酮溶液的熒光。掃描條件為:激發(fā)波長(zhǎng)390 nm,發(fā)射波長(zhǎng)400~600 nm。
1.3.5 圓二色光譜分析
配制不同濃度異黃酮溶液,加入BCG溶液(0.2 mg/mL)中,得到不同物質(zhì)的量比混合溶液,靜置2 h后掃描圓二色光譜。設(shè)置掃描范圍為190~250 nm,光徑為1 mm,掃描速率為60 nm/min,掃描間隔為1 nm,相關(guān)結(jié)果利用圓二色光譜在線分析網(wǎng)站(http://dichroweb.cryst.bbk.ac.uk/html/process.shtml)進(jìn)行整理分析。
1.3.6 異黃酮-BCG復(fù)合物的制備
復(fù)合物制備參考Sui Xiaonan等[13]的方法,主要步驟如下:1)堿性復(fù)合物:用PBS(pH 9.0)將BCG稀釋至4 mg/mL,將異黃酮溶液稀釋至0.4 mmol/L后邊攪拌邊加入蛋白溶液中,調(diào)節(jié)混合溶液pH值為9.0,室溫?cái)嚢璺磻?yīng)24 h后超濾除去游離異黃酮;2)中性復(fù)合物:與堿性復(fù)合物制備大致相同,但略有改動(dòng)。BCG溶液和異黃酮稀釋后不調(diào)節(jié)pH值,攪拌反應(yīng)時(shí)間為2 h。
將BCG在堿性條件下分別與Gen、Dai制備的復(fù)合物標(biāo)注為BCG-Gen-A、BCG-Dai-A,在中性條件下分別與Gen、Dai制備的復(fù)合物標(biāo)注為BCG-Gen-N、BCGDai-N。
1.3.7 競(jìng)爭(zhēng)ELISA
參考張英[14]方法,采用競(jìng)爭(zhēng)抑制ELISA法檢測(cè)BCG及其復(fù)合物與大豆過敏患者血清特異性IgE的結(jié)合能力。通過方陣滴定法確定蛋白的包被質(zhì)量濃度為0.4 μg/mL,大豆過敏患者血清(一抗)稀釋倍數(shù)為1∶35,生物素標(biāo)記的羊抗人IgE(二抗)稀釋倍數(shù)為1∶10 000,HRP標(biāo)記的鏈霉親和素稀釋倍數(shù)為1∶300。用酶標(biāo)儀檢測(cè)樣品在450 nm波長(zhǎng)處的光密度(OD450nm),按式(2)計(jì)算抑制率,IgE結(jié)合能力以半抑制質(zhì)量濃度(50% inhibiting concentration,IC50)表示。
1.3.8 復(fù)合物體外模擬胃腸消化
包括模擬嬰幼兒胃腸消化和模擬成人胃腸消化,參考Dupont[15]、孟軒夷[16]等的方法并稍作修改。
1.3.8.1 模擬嬰幼兒胃腸消化
模擬胃消化:在離心管中分別加入5 mL的BCG及復(fù)合物(2 mg/mL)。將6.9 mL KCl溶液(0.5 mol/L)、12.5 mL NaHCO3溶液(1 mol/L)、11.8 mL NaCl溶液(2 mol/L)、0.9 mL KH2PO4溶液(0.5 mol/L)、0.4 m L M g C l2(H2O)6溶液(0.1 5 m o l/L)和0.5 mL (NH4)2CO3溶液(0.15 mol/L)混勻,調(diào)節(jié)pH值為3.0,定容至500 mL配制成胃儲(chǔ)液,加入4.909 mL胃儲(chǔ)液和91 μL胃蛋白酶(2 500 U/mL),調(diào)節(jié)pH值至3.0,將所有樣品置于搖床(37 ℃、100 r/min)中消化反應(yīng)2 h,滴加NaHCO3調(diào)節(jié)溶液pH值至7.0終止反應(yīng)。
模擬腸消化:在離心管中加入5 mL胃消化后的樣品。將6.8 mL KCl溶液(0.5 mol/L)、42.5 mL NaHCO3溶液(1 mol/L)、9.6 mL NaCl溶液(2 mol/L)、0.8 mL KH2PO4溶液(0.5 mol/L)和1.1 mL MgCl2(H2O)6溶液(0.15 mol/L)混勻,調(diào)節(jié)pH值為6.5,定容至500 mL配制成腸儲(chǔ)液,通過加入4.94 mL腸儲(chǔ)液、35 μL胰酵素(2.5 mg/mL)和25 μL CaCl2(H2O)2(0.3 mol/L)溶液模擬腸消化環(huán)境,調(diào)節(jié)溶液pH值至6.5后,將所有樣品置于搖床中反應(yīng)2 h,沸水浴加熱5 min結(jié)束消化。
1.3.8.2 模擬成人胃腸消化
實(shí)驗(yàn)步驟與嬰幼兒胃腸消化類似,實(shí)驗(yàn)參數(shù)略有改動(dòng)。成人胃消化:胃蛋白酶活力為182 U/mg,pH值為2.5。成人腸消化:胰蛋白酶活力為35 U/mg,pH值為6.5。
1.3.9 復(fù)合物消化產(chǎn)物免疫印跡
參考常雪嬌[17]方法對(duì)BCG胃腸消化產(chǎn)物進(jìn)行免疫印跡鑒定。將胃腸消化產(chǎn)物經(jīng)過十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離后,電泳凝膠洗滌后在轉(zhuǎn)印儀上進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,設(shè)置轉(zhuǎn)膜電壓100 V,電流400 mA,時(shí)間60 min,轉(zhuǎn)膜結(jié)束后在室溫下封阻1 h;加入大豆過敏患者血清(一抗,1∶10)后,4 ℃孵育過夜,含0.1% Tween-20的Tris緩沖液(Tris buffered saline with Tween-20,TBST)漂洗3 次;加入生物素標(biāo)記的羊抗人IgE(二抗,1∶2 500),室溫孵育60 min,TBST漂洗3 次;滾動(dòng)孵育HRP標(biāo)記的鏈霉親和素(1∶60稀釋)60 min,TBST漂洗3 次;再使用增強(qiáng)型化學(xué)發(fā)光顯色劑顯色,并立即用凝膠成像系統(tǒng)拍照。
所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)測(cè)定3 次。采用Excel軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,采用SPSS 26.0軟件進(jìn)行差異顯著性分析,以P<0.05表示差異顯著,通過Origin軟件作圖。
2.1.1 熒光猝滅機(jī)制
通過熒光猝滅光譜分析Gen/Dai與BCG相互作用的猝滅機(jī)制。由圖1中Stern-Vlomer圖可以觀察到,隨著Gen和Dai添加量的增加,蛋白熒光強(qiáng)度呈線性下降趨勢(shì)。根據(jù)表2中數(shù)據(jù),在298 K和314 K條件下加入Gen和Dai后,BCG的Kq均遠(yuǎn)大于2.0×1010L/(mol·s)(最大擴(kuò)散碰撞猝滅常數(shù))[18],說明2 種活性異黃酮與BCG發(fā)生的猝滅屬于靜態(tài)猝滅[19-20]。靜態(tài)猝滅是多酚類化合物與蛋白結(jié)合的常見猝滅方式,在多酚-玉米醇溶蛋白[21]、白藜蘆醇-大豆分離蛋白(soybean protein isolated,SPI)[22]以及表沒食子兒茶素沒食子酸酯-SPI[23]相互作用的研究中均有體現(xiàn)。
圖1 Gen(A、B)和Dai(C、D)對(duì)BCG熒光猝滅的影響Fig.1 Effects of Gen (A and B) and Dai (C and D) on the fluorescence quenching of BCG
表2 異黃酮與BCG結(jié)合的相關(guān)常數(shù)和熱力學(xué)參數(shù)Table 2 Kinetic constants and thermodynamic parameters of the interaction between isoflavones and BCG
根據(jù)Scatchard方程可計(jì)算得到BCG與Gen/Dai的結(jié)合常數(shù)(Ka)和結(jié)合位點(diǎn)數(shù)(n)(表2)。溫度升高,2 種活性異黃酮與BCG之間的Ka均增大,并且不同溫度的n都接近1,表明BCG與Gen/Dai在空間結(jié)構(gòu)上至少存在1 個(gè)結(jié)合位點(diǎn)。
生物大分子與小分子之間存在的非共價(jià)作用力主要有氫鍵、靜電相互作用、疏水相互作用和范德華力,由熱力學(xué)參數(shù)(ΔS、ΔH和ΔG)可以推斷蛋白質(zhì)與小分子之間相互作用力的類型。通過Van’t Hoff方程計(jì)算可得到相互作用的熱力學(xué)參數(shù)(表2)。按照Ross等[24]總結(jié)的熱力學(xué)參數(shù)與相互作用力之間的規(guī)律,表2中ΔH、ΔS均為正值,表明BCG與Gen、Dai的相互作用力中疏水相互作用起主要作用。這可能是因?yàn)镚en/Dai含有碳碳雙鍵和苯環(huán)等疏水基團(tuán),這些基團(tuán)與BCG中的疏水基團(tuán)或結(jié)構(gòu)域發(fā)生疏水相互作用。類似地,疏水相互作用也是姜黃素與SPI[25]、VB12與大豆7S/11S蛋白[26]結(jié)合的主要驅(qū)動(dòng)力。
2.1.2 同步熒光光譜
同步熒光光譜通過同步掃描λex和λem可以提供生色團(tuán)分子附近微環(huán)境的信息。當(dāng)波長(zhǎng)間隔Δλ為15、60 nm時(shí),同步熒光分別體現(xiàn)出酪氨酸(Tyr)或色氨酸(Trp)殘基微環(huán)境的變化[27]。由圖2可知,蛋白熒光強(qiáng)度隨著Gen/Dai的加入逐漸降低,當(dāng)Δλ為15 nm時(shí),可以觀察到Gen僅對(duì)BCG中Tyr殘基的最大吸收波長(zhǎng)向長(zhǎng)波方向移動(dòng)了1 nm,而添加Dai后,最大吸收波長(zhǎng)并未出現(xiàn)明顯移動(dòng);當(dāng)Δλ為60 nm時(shí),Gen使BCG中Trp特征峰紅移14.6 nm,而Dai使其紅移4 nm。某些關(guān)鍵氨基酸決定了蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和功能,這些氨基酸微環(huán)境的改變會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)整體結(jié)構(gòu)發(fā)生相應(yīng)變化[28],同步熒光光譜的結(jié)果表明,蛋白中酪氨酸和色氨酸周圍環(huán)境的極性增加,BCG與2 種異黃酮發(fā)生絡(luò)合作用,從而使蛋白結(jié)構(gòu)更加松散,使其內(nèi)部更多的親水性氨基酸暴露[29]。由于2 種異黃酮結(jié)構(gòu)存在差異,Gen比Dai多1 個(gè)酚羥基,且多出的酚羥基在空間位置上更接近羰基,導(dǎo)致Gen的活性更強(qiáng),因此對(duì)BCG氨基酸殘基微環(huán)境的影響比Dai更明顯[30]。
圖2 Gen(A、B)和Dai(C、D)對(duì)BCG同步熒光光譜的影響Fig.2 Effects of Gen (A and B) and Dai (C and D) on the synchronous fluorescence spectrum of BCG
2.1.3 三維熒光光譜
為進(jìn)一步了解Gen/Dai對(duì)BCG構(gòu)象的影響,運(yùn)用三維熒光光譜進(jìn)行分析,由圖3和表3可知,在λex=295 nm和λex=282 nm處,BCG的三維熒光光譜顯示出2 個(gè)峰。根據(jù)峰位置分析,峰a(λex=295 nm)和峰b(λex=282 nm)是BCG中Tyr或Trp殘基的2 個(gè)特征峰[31]。隨著2 種活性異黃酮的添加,峰a和峰b的峰高都明顯降低。相較于Dai,Gen對(duì)峰a的影響更為顯著,當(dāng)BCG∶Gen=1∶10時(shí),峰a完全消失。逐漸添加Gen后,峰b的λem發(fā)生紅移;而Dai加入后,峰b從原來的282 nm/323 nm紅移至284 nm/325 nm和287 nm/325 nm,同時(shí)中高劑量異黃酮誘導(dǎo)蛋白產(chǎn)生了一個(gè)新的峰c(377 nm/380 nm)。以上信息表明,異黃酮的加入促使BCG的特征峰產(chǎn)生紅移,誘導(dǎo)蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)發(fā)生輕微的去折疊或適應(yīng)性重排[32],引起氨基酸微環(huán)境的極性增加,導(dǎo)致蛋白構(gòu)象發(fā)生變化[33]。
圖3 異黃酮對(duì)BCG三維熒光光譜的影響Fig.3 Effects of isoflavones on the three-dimensional fluorescence spectrum of BCG
表3 BCG與活性異黃酮相互作用后三維熒光光譜峰位置和峰強(qiáng)度Table 3 Three-dimensional fluorescence peak positions and intensities of BCG-isoflavone complexes
2.1.4 外源性熒光光譜
同步熒光與三維熒光光譜展示了蛋白氨基酸微環(huán)境的變化,外源性熒光光譜主要是從整體上體現(xiàn)蛋白質(zhì)表面疏水性的強(qiáng)弱。蛋白質(zhì)表面疏水性是支撐蛋白質(zhì)空間結(jié)構(gòu)穩(wěn)定必不可少的部分,對(duì)蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和功能性質(zhì)有極其重要的影響[34]。ANS是一種疏水性熒光探針,在水溶液中其熒光強(qiáng)度很微弱,但與蛋白質(zhì)的疏水區(qū)域結(jié)合時(shí),其熒光強(qiáng)度顯著增強(qiáng)。因此可采用ANS熒光探針作為標(biāo)記物,檢測(cè)2 種活性異黃酮添加量變化對(duì)BCG表面疏水性的影響。由圖4可知,當(dāng)BCG與Gen物質(zhì)的量比為1∶1時(shí),BCG表面疏水性明顯增加;而隨著Gen濃度增大,BCG表面疏水性又減小,即中、高劑量(10、20 倍)的Gen使BCG的表面疏水性明顯降低。添加Dai對(duì)BCG表面疏水性的影響與劑量之間的規(guī)律不明顯,BCG與Dai物質(zhì)的量比為1∶1和1∶20時(shí),BCG的疏水性顯著增加,而BCG與Dai物質(zhì)的量比為1∶10時(shí),BCG表面疏水性顯著減小。
圖4 異黃酮對(duì)BCG表面疏水性的影響Fig.4 Effects of isoflavones on the surface hydrophobicity of BCG
2.1.5 圓二色光譜
α-螺旋結(jié)構(gòu)的圓二色光譜在190 nm附近有一正峰,在222、208 nm波長(zhǎng)處有2 個(gè)負(fù)峰;β-折疊結(jié)構(gòu)在216 nm波長(zhǎng)處有一負(fù)峰,在185~200 nm波長(zhǎng)處有一正峰[35]。由圖5可知,當(dāng)BCG∶Gen=1∶1時(shí),在蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)中,α-螺旋相對(duì)含量略有升高,但當(dāng)Gen濃度繼續(xù)增加后,α-螺旋和β-轉(zhuǎn)角相對(duì)含量明顯下降;而β-折疊相對(duì)含量隨著Gen的添加顯著增加。同時(shí)Dai的添加使蛋白中β-折疊相對(duì)含量顯著減少,而β-轉(zhuǎn)角相對(duì)含量顯著提高。隨Dai濃度的升高,蛋白的無規(guī)卷曲相對(duì)含量則表現(xiàn)出先降低后升高的變化。綜上所述,Gen的添加使得BCG的二級(jí)結(jié)構(gòu)組成呈現(xiàn)出從α-螺旋、β-轉(zhuǎn)角轉(zhuǎn)化為β-折疊的趨勢(shì);Dai的添加使BCG的結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)從β-折疊轉(zhuǎn)化為β-轉(zhuǎn)角的趨勢(shì),這在矢車菊素-3-O-葡萄糖苷與7S/11S蛋白相互作用研究中也有所體現(xiàn)[36],使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)更為松散。二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化與前文熒光光譜的研究結(jié)果結(jié)合,可以看出異黃酮的添加使BCG的結(jié)構(gòu)更為疏松,內(nèi)部緊湊的基團(tuán)暴露在外部環(huán)境中。
圖5 異黃酮對(duì)BCG二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響Fig.5 Effects of isoflavones on the secondary structure of BCG
2.2.1 復(fù)合物的結(jié)構(gòu)
由圖6A、B可知,相較于原蛋白,2 種活性異黃酮與蛋白形成復(fù)合物的二級(jí)結(jié)構(gòu)中α-螺旋相對(duì)含量略有升高,占主要地位的β-折疊相對(duì)含量均降低。由于結(jié)合方式與異黃酮種類不同,2 種復(fù)合物結(jié)構(gòu)變化仍有差別,BCG-Gen復(fù)合物主要表現(xiàn)為β-轉(zhuǎn)角相對(duì)含量顯著升高,而BCG-Dai復(fù)合物表現(xiàn)為無規(guī)卷曲相對(duì)含量顯著升高。
圖6 異黃酮-BCG復(fù)合物的結(jié)構(gòu)表征Fig.6 Structure of isoflavone-BCG complexes
蛋白質(zhì)在280 nm處的吸收峰主要由芳香族氨基酸(如Tyr和Trp)的π-π*躍遷引起[33],可以提供有關(guān)蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)的信息。由圖6C可知,與原蛋白相比,BCG-Gen-A和BCG-Dai-N在280 nm處的吸收峰強(qiáng)度增強(qiáng),而BCG-Gen-N和BCG-Dai-A吸收峰強(qiáng)度減弱。這表明BCG-Gen-A和BCG-Dai-N的蛋白展開程度變大,使得Tyr和Trp殘基暴露在蛋白質(zhì)表面,導(dǎo)致紫外吸收峰強(qiáng)度增加[28];而BCG-Gen-N和BCG-Dai-A暴露在表面的芳香族氨基酸殘基數(shù)量有所減少,可能是因?yàn)閺?fù)合物的二級(jí)結(jié)構(gòu)組成發(fā)生了較大的變化,導(dǎo)致芳香族氨基酸的分布出現(xiàn)差異。
由圖6D可知,相較于原蛋白,BCG-Gen-A、BCGDai-A與BCG-Dai-N的表面疏水性增強(qiáng),疏水基團(tuán)暴露;而BCG-Gen-N的表面疏水性明顯減小。
2.2.2 復(fù)合物的潛在致敏性
為探究復(fù)合物潛在致敏性,采用競(jìng)爭(zhēng)ELISA評(píng)估BCG及其復(fù)合物的特異性IgE結(jié)合能力,以IC50表示,IC50越大,樣品與IgE的結(jié)合能力越弱。由圖7A可知,復(fù)合物的IC50均顯著變?。≒<0.05),其中堿性復(fù)合物的IC50變化尤為顯著,即BCG與2 種異黃酮復(fù)合物的致敏性增強(qiáng),特別是堿性復(fù)合物。
圖7 異黃酮-BCG復(fù)合物的潛在致敏性Fig.7 Potential allergenicity of isoflavone-BCG complexes
通過免疫印跡法鑒定BCG及其復(fù)合物消化產(chǎn)物的潛在致敏性。由圖7B~E可知,蛋白及復(fù)合物消化后存在已被降解的小分子,以及未被消化的蛋白β亞基和大分子聚合物。免疫印跡結(jié)果顯示,蛋白中β亞基及大分子聚合物顯色明顯,而消化后小分子不顯色。嬰幼兒消化產(chǎn)物中BCG-Dai-N與成人消化產(chǎn)物中BCG-Gen-A的免疫印跡條帶顯色明顯強(qiáng)于原蛋白及其他復(fù)合物,具有一定的潛在致敏性。消化產(chǎn)物的電泳與免疫印跡結(jié)果與前文ELISA結(jié)果相互印證,復(fù)合物致敏性的升高也可能是由于蛋白質(zhì)與異黃酮結(jié)合后產(chǎn)生了致敏性強(qiáng)的大分子聚合物,導(dǎo)致表現(xiàn)出較強(qiáng)的IgE結(jié)合能力。
與2 種異黃酮結(jié)合后,BCG的潛在致敏性增強(qiáng),類似的研究結(jié)果在操?gòu)?qiáng)等[37]研究中也有報(bào)道:卵白蛋白-白藜蘆醇相互作用后卵白蛋白的體外IgE結(jié)合能力變強(qiáng)。結(jié)合前文復(fù)合物結(jié)構(gòu)的表征結(jié)果推測(cè),復(fù)合物致敏性增強(qiáng)可能是因?yàn)楫慄S酮與BCG相互作用后,蛋白結(jié)構(gòu)變得更為松散,抗原表位更多地暴露在復(fù)合物表面。并且相較于體外實(shí)驗(yàn),人體內(nèi)的過敏機(jī)制更為復(fù)雜,已有較多研究證明了異黃酮的抗過敏能力。體外血清學(xué)實(shí)驗(yàn)僅表明與2 種活性異黃酮相互作用后蛋白的IgE結(jié)合能力有所增強(qiáng),但黃酮類化合物在體內(nèi)可能通過影響免疫細(xì)胞、調(diào)節(jié)免疫因子等途徑達(dá)到緩解過敏的作用,后續(xù)將通過細(xì)胞實(shí)驗(yàn)及動(dòng)物實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步探究異黃酮對(duì)于大豆過敏蛋白致敏性的影響機(jī)制。
本研究采用多種光譜方法對(duì)大豆中Gen/Dai與BCG的相互作用及復(fù)合物的結(jié)構(gòu)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)2 種活性異黃酮通過靜態(tài)猝滅方式猝滅BCG的內(nèi)源性熒光,n均接近1,作用力以疏水相互作用為主;而2 種異黃酮與BCG相互作用后會(huì)導(dǎo)致蛋白的結(jié)構(gòu)與氨基酸殘基微環(huán)境發(fā)生改變,使蛋白結(jié)構(gòu)更為松散。體外血清學(xué)實(shí)驗(yàn)結(jié)果說明,復(fù)合物與消化產(chǎn)物的致敏性均強(qiáng)于原蛋白,這可能是由于相互作用后蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)展開,使更多的過敏原表位暴露。