微生物中自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘及其在天然產(chǎn)物發(fā)現(xiàn)中的應(yīng)用

謝麗媛，姜逢霖，胡友財(cái)

（中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院&北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院藥物研究所，天然藥物活性物質(zhì)與功能?chē)?guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，北京 100050）

微生物來(lái)源的天然產(chǎn)物由于具有結(jié)構(gòu)多樣、活性顯著等特點(diǎn)，一直以來(lái)是藥物先導(dǎo)化合物的重要來(lái)源。以活性為導(dǎo)向的微生物天然產(chǎn)物研究模式幫助研究人員獲得了大量具有藥物開(kāi)發(fā)潛力的化合物，曾經(jīng)引領(lǐng)了新藥尤其是抗生素研發(fā)的黃金時(shí)代。然而，自然界中存在的微生物分布極其廣泛，產(chǎn)生的天然產(chǎn)物更是數(shù)量巨大，僅采用傳統(tǒng)的研究模式已無(wú)法實(shí)現(xiàn)對(duì)活性天然產(chǎn)物的高效挖掘。已知化合物的重復(fù)發(fā)現(xiàn)、實(shí)驗(yàn)室環(huán)境下微生物部分代謝產(chǎn)物的缺失等問(wèn)題亟需開(kāi)發(fā)新技術(shù)、新方法來(lái)解決[1-2]。

隨著基因組測(cè)序成本的大幅降低以及生物信息學(xué)技術(shù)的飛速發(fā)展，基因組導(dǎo)向的天然產(chǎn)物發(fā)現(xiàn)策略吸引了越來(lái)越多的關(guān)注。利用生物信息學(xué)手段對(duì)微生物的基因組數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行挖掘，可以高效快速地鎖定具有研究?jī)r(jià)值的生物合成基因簇。基于基因簇中各個(gè)基因的功能，可以對(duì)天然產(chǎn)物的結(jié)構(gòu)信息進(jìn)行預(yù)測(cè)，從而助力研究人員實(shí)現(xiàn)目標(biāo)天然產(chǎn)物的針對(duì)性分離。若基因簇在原始產(chǎn)生菌中不表達(dá)或表達(dá)量低，則可通過(guò)引入強(qiáng)啟動(dòng)子、敲除轉(zhuǎn)錄抑制因子、過(guò)表達(dá)轉(zhuǎn)錄激活因子、異源表達(dá)或報(bào)告基因指導(dǎo)下的突變株篩選（reporter-guided mutant selection，RGMS）等策略對(duì)該基因簇進(jìn)行激活，以獲得其表達(dá)產(chǎn)物[3-5]。

目前基因組挖掘的主要手段之一是基于核心酶進(jìn)行挖掘。由于催化同一類型化合物骨架形成的核心酶具有序列保守性，可通過(guò)同源比對(duì)尋找編碼核心酶的基因，繼而對(duì)其上下游基因進(jìn)行功能分析，獲得完整的生物合成基因簇[6-8]。有研究人員針對(duì)天然產(chǎn)物藥效團(tuán)的生物合成基因進(jìn)行基因挖掘，以此發(fā)現(xiàn)了許多結(jié)構(gòu)新穎的活性天然產(chǎn)物[9]。

基因組挖掘的另一有效手段是基于自抗性基因進(jìn)行挖掘，這是發(fā)現(xiàn)活性天然產(chǎn)物的另一高效策略。微生物產(chǎn)生的次級(jí)代謝產(chǎn)物通過(guò)抑制競(jìng)爭(zhēng)者體內(nèi)行使基本代謝功能的管家酶活性來(lái)殺死競(jìng)爭(zhēng)者，或限制其生長(zhǎng)。當(dāng)這些代謝產(chǎn)物的產(chǎn)生菌體內(nèi)也存在同源的管家酶時(shí)，為避免自身受到傷害，其天然產(chǎn)物生物合成基因簇內(nèi)進(jìn)化出自抗性基因，通過(guò)多種自抗性機(jī)制來(lái)發(fā)揮解毒作用。特別地，當(dāng)簇內(nèi)的自抗性基因編碼了管家酶的同源抗性變體時(shí)，該基因還可為天然產(chǎn)物的靶點(diǎn)發(fā)現(xiàn)提供線索，這也搭起了天然產(chǎn)物、生物合成基因簇和靶點(diǎn)之間的橋梁[10]。

本文旨在綜述微生物中常見(jiàn)的自抗性機(jī)制以及基于自抗性基因進(jìn)行基因組挖掘的策略和應(yīng)用，并對(duì)近年發(fā)展起來(lái)的相關(guān)生物信息學(xué)工具進(jìn)行簡(jiǎn)要介紹。

1 常見(jiàn)的自抗性機(jī)制

微生物為了生存，會(huì)合成有毒的次級(jí)代謝產(chǎn)物來(lái)殺死其競(jìng)爭(zhēng)者或抑制其生長(zhǎng)。為了不被自身代謝產(chǎn)物影響，同時(shí)利用它們創(chuàng)造競(jìng)爭(zhēng)優(yōu)勢(shì)，產(chǎn)生菌必須進(jìn)化出某種自抗性機(jī)制，以實(shí)現(xiàn)“殺敵不傷己”的效果。常見(jiàn)的自抗性機(jī)制包括外排泵、化合物封閉、前藥、化學(xué)修飾、靶點(diǎn)修飾、DNA 修復(fù)和管家酶抗性變體（即自抗酶）等[11]（見(jiàn)圖1）。此外，某些微生物體內(nèi)還存在多種自抗性機(jī)制的協(xié)同作用，從而實(shí)現(xiàn)更加有效的自我保護(hù)。

圖1 主要的自抗性機(jī)制Figure 1 Main mechanisms of self-resistance

1.1 外排泵

外排泵（efflux pumps）可將微生物產(chǎn)生的次級(jí)代謝產(chǎn)物排出胞外，從而避免毒性化合物與胞內(nèi)靶點(diǎn)蛋白相互作用。外排泵主要分為5 類：ATP 結(jié)合盒（ATP binding cassette，ABC）家族、主要易化超家族（major facilitator superfamily，MFS）、小多藥耐藥（small multidrug resistance，SMR）家族、多藥與毒物外排（multidrug and toxic microbial extrusion，MATE）家族和耐藥結(jié)節(jié)細(xì)胞分化（resistance-nodulation-cell division，RND）家族，其中最常見(jiàn)的是ABC 和MFS 家族。編碼外排泵的基因在許多天然產(chǎn)物的生物合成基因簇中均有報(bào)道，例如柔紅霉素（daunorubicin）生物合成基因簇中的drrA和drrB[12-13]，土霉素（oxytetracycline）生物合成基因簇中的otrB[14]以及myxin 生物合成基因簇中的lexABC[15]等，它們與生物合成基因共同表達(dá)和調(diào)控，準(zhǔn)確高效地發(fā)揮了自抗性作用。除此之外，部分編碼外排泵的基因并不與生物合成基因簇毗鄰。例如，基因efrT不在efrotomycin B1 的生物合成基因簇內(nèi)，但其編碼的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在efrotomycin B1 的異源宿主體內(nèi)起到了增強(qiáng)菌株自抗性、提高化合物產(chǎn)量的作用[16]。

1.2 化合物封閉

通過(guò)編碼化合物結(jié)合蛋白，將化合物封閉在蛋白空腔內(nèi)而不能與靶點(diǎn)蛋白結(jié)合的策略，稱為化合物封閉。例如，乳酸鏈球菌素（nisin）可與合成細(xì)胞壁的前體lipid Ⅱ結(jié)合，插入細(xì)菌細(xì)胞膜并形成孔洞，造成細(xì)菌死亡。為了避免自身的細(xì)胞膜受到影響，乳酸鏈球菌素的產(chǎn)生菌表達(dá)了脂蛋白NisI。NisI 不會(huì)對(duì)乳酸鏈球菌素進(jìn)行修飾或降解，而僅僅是將其可逆地封閉起來(lái)，使其不能與細(xì)胞膜上的靶點(diǎn)結(jié)合[17]。在蒽醌駢合的烯二炔類化合物tiancimycin（TNM）的產(chǎn)生菌體內(nèi)也存在類似的封閉策略，自抗性基因編碼的蛋白TnmS1，TnmS2 和TnmS3 形成β-桶狀結(jié)構(gòu)，將tiancimycin 封閉在蛋白空腔中，保護(hù)產(chǎn)生菌不被烯二炔類化合物極強(qiáng)的毒性作用所影響[18]。同樣地，DNA 促旋酶抑制劑closthioamide 產(chǎn)生菌中編碼的聚硫酰胺結(jié)合蛋白CtaZ[19]、抗腫瘤化合物zorbamycin（ZBM）產(chǎn)生菌中編碼的ZBM 結(jié)合蛋白ZbmA[20]以及抗結(jié)核化合物capreomycin IIB 產(chǎn)生菌中存在的磷酸轉(zhuǎn)移酶Cph[21]也可通過(guò)化合物封閉的策略實(shí)現(xiàn)自我保護(hù)。

1.3 前藥

部分微生物在胞內(nèi)僅產(chǎn)生低毒或無(wú)毒的藥物前體，稱為前藥。有些前藥在排出胞外后，就會(huì)在分泌蛋白或膜蛋白的催化下轉(zhuǎn)化為活性形式，如5-O-磷酸化安普霉素被分泌蛋白AprZ 去磷酸化形成活性終產(chǎn)物安普霉素（apramycin）[22]，precolibactin 的N-?；?D-天冬酰胺部分被周質(zhì)中的內(nèi)膜蛋白ClbP 水解形成colibactin[23]等；有些化合物則在產(chǎn)生菌體內(nèi)一直保持前藥狀態(tài)，直至被攝取后才會(huì)轉(zhuǎn)化為活性形式，如microcin C 只有被敏感細(xì)胞攝取后，其結(jié)構(gòu)中的N-末端甲?；碗幕糠植艜?huì)被去除，形成活性產(chǎn)物[24]。

1.4 化合物修飾

為了降低胞內(nèi)積累的天然產(chǎn)物對(duì)自身產(chǎn)生的毒性，微生物還會(huì)合成相應(yīng)的酶對(duì)毒性產(chǎn)物進(jìn)行化學(xué)修飾，如乙?；⒘姿峄?、糖基化、氧化還原等，使其轉(zhuǎn)化為低毒產(chǎn)物。例如，bleomycin（BLM）和tallysomycin（TLM）等博來(lái)霉素家族化合物需要與金屬離子結(jié)合形成螯合物，繼而在氧氣存在時(shí)被活化，才能發(fā)揮其誘導(dǎo)DNA降解和抗腫瘤的作用[25-27]。為了保證自身不受到傷害，該類化合物的產(chǎn)生菌合成了N-乙酰轉(zhuǎn)移酶，將乙?；D(zhuǎn)移到參與金屬螯合的其中1 個(gè)氨基上，抑制了金屬螯合物與氧氣的相互作用，避免了活化產(chǎn)物的形成[28-29]。同樣地，乙酰轉(zhuǎn)移酶AurG 可將真菌毒素aurovertin E 轉(zhuǎn)化為?；牡投井a(chǎn)物aurovertin B[30]，磷酸轉(zhuǎn)移酶Cph 和Mur28 可分別使capreomycin IIA 和muraymycin 發(fā)生磷酸化失活[21,31]。

1.5 靶點(diǎn)修飾

活性天然產(chǎn)物可以特異性地識(shí)別并結(jié)合靶點(diǎn)，進(jìn)而干擾機(jī)體的正常生命活動(dòng)。當(dāng)靶點(diǎn)的特異性結(jié)合位點(diǎn)被修飾后，藥物與靶點(diǎn)結(jié)合的親和力會(huì)顯著降低，從而起到自我保護(hù)的效果。例如，dityromycin 可通過(guò)結(jié)合核糖體蛋白S12 來(lái)抑制核糖體移位，從而影響蛋白質(zhì)的合成。在dityromycin 的產(chǎn)生菌Streptomycessp.中，核糖體蛋白S12 上高度保守的抗生素結(jié)合位點(diǎn)發(fā)生2 個(gè)氨基酸的替換，降低了其與dityromycin 的親和力，避免了dityromycin對(duì)自身的傷害[32]。同樣，holomycin 生物合成基因簇中的hom12編碼了1 個(gè)RNA 甲基轉(zhuǎn)移酶，使得靶點(diǎn)位置的RNA 被甲基化，避免了holomycin 對(duì)產(chǎn)生菌體內(nèi)RNA 合成的抑制作用[33]。糖肽類抗生素的自抗性機(jī)制也屬于典型的靶點(diǎn)修飾。糖肽類抗生素通過(guò)與肽聚糖前體脂質(zhì)Ⅱ的D-丙氨酰-D-丙氨酸（D-alanyl-D-alanine，D-Ala-D-Ala）末端結(jié)合抑制細(xì)胞壁的合成。為了避免對(duì)自身生命活動(dòng)的影響，糖肽類抗生素的產(chǎn)生菌對(duì)靶點(diǎn)進(jìn)行了不同方式的修飾，如將肽聚糖前體脂質(zhì)Ⅱ的D-Ala-D-Ala 末端替換為D-丙氨酰-D-乳酸（D-alanyl-D-lactate，D-Ala-D-Lac）[34-38]或去除末端的D-Ala 殘基[39-41]等。

1.6 DNA 修復(fù)

抗腫瘤活性化合物能夠造成DNA 損傷，影響功能基因的正常轉(zhuǎn)錄和翻譯，進(jìn)而導(dǎo)致細(xì)胞死亡。為了保證生命活動(dòng)不受影響，微生物進(jìn)化出了DNA修復(fù)機(jī)制。其中，堿基切除修復(fù)（base excision repair，BER）機(jī)制主要用于消除小的、非螺旋扭曲的堿基損傷，如烷基化、氧化和脫氨基等。例如，yatakemycin（YTM）誘導(dǎo)DNA 發(fā)生烷基化，其生物合成基因簇中編碼的YtkR2 可啟動(dòng)BER 機(jī)制對(duì)DNA 進(jìn)行修復(fù)[42]。核苷酸切除修復(fù)（nucleotide excision repair，NER）機(jī)制則用于去除體積大的、螺旋不穩(wěn)定的損傷，例如daunorubicin 生物合成基因簇中編碼的DrrC 可通過(guò)NER 機(jī)制將daunorubicin從非共價(jià)嵌合部位去除，恢復(fù)DNA的正常轉(zhuǎn)錄[43-44]。

1.7 管家酶抗性變體（自抗酶）

如前所述，若微生物次級(jí)代謝產(chǎn)物靶向的管家酶在產(chǎn)生菌體內(nèi)保守存在，則該代謝產(chǎn)物必然對(duì)產(chǎn)生菌也有毒性作用。因此微生物會(huì)在某些代謝產(chǎn)物的基因簇內(nèi)編碼1 個(gè)管家酶的抗性變體，即自抗酶。自抗酶與管家酶的氨基酸序列高度相似，具有相同的催化活性；同時(shí)自抗酶中存在部分氨基酸突變使得其對(duì)代謝產(chǎn)物的敏感性降低，在管家酶被抑制時(shí)可以代償管家酶行使相應(yīng)的功能[10]。例如，降脂藥物洛伐他?。╨ovastatin，1，見(jiàn)圖2）是通過(guò)抑制3-羥基-3-甲基戊二酸單酰輔酶A 還原酶（3-hydroxy-3-methyl glutaryl coenzyme A reductase，HMGR）活性發(fā)揮降脂作用，其生物合成基因簇中的lvrA可編碼HMGR 的抗性變體，從而發(fā)揮自抗作用[45-46]；霉酚酸（mycophenolic acid，2，見(jiàn)圖2）可通過(guò)抑制肌苷-5'-單磷酸脫氫酶（inosine-5'-monophosphate dehydrogenase，IMPDH）的活性來(lái)發(fā)揮免疫抑制作用，其生物合成基因簇中編碼的IMPDH 抗性變體實(shí)現(xiàn)了產(chǎn)生菌對(duì)霉酚酸的自抗作用[47]；煙曲霉素（fumagillin，3，見(jiàn)圖2）是一種有效的抗血管生成藥物，可通過(guò)抑制甲硫氨酸氨肽酶-2（methionyl aminopeptidase 2，MetAP-2）來(lái)發(fā)揮其藥理作用，為了實(shí)現(xiàn)自我保護(hù)，煙曲霉素的基因簇中編碼了MetAP-2 的抗性變體，可在管家酶活性被抑制時(shí)行使代償功能[48]。此外，cladosporin（4，見(jiàn)圖2）生物合成基因簇中編碼的賴氨酰-tRNA 合成酶同源蛋白Cla4[49]、heptelidic acid（5，見(jiàn)圖2）簇中編碼的甘油醛-3-磷酸脫氫酶同工酶HepG[50-51]以及 agrocin 84（6，見(jiàn)圖2）簇中編碼的亮氨酸t(yī)RNA 合成酶抗性變體AgnB2[52-53]等也采用了這種策略來(lái)抵抗自身代謝產(chǎn)物對(duì)產(chǎn)生菌的影響。

1.8 多種自抗性機(jī)制協(xié)同作用

值得關(guān)注的是，許多微生物體內(nèi)對(duì)代謝產(chǎn)物的自抗性并不是通過(guò)單一機(jī)制實(shí)現(xiàn)的，而是利用了多種自抗性機(jī)制的協(xié)同作用[54]。例如，在萘啶霉素（naphthyridinomycin）[55-56]和A26771B[57]的生物合成過(guò)程中，產(chǎn)生菌均同時(shí)采用了前藥機(jī)制和化合物修飾機(jī)制，保護(hù)自身不被代謝產(chǎn)物的毒性作用所影響。在萘啶霉素的生物合成過(guò)程中，低毒前藥分泌至胞外后，才會(huì)被膜蛋白NapG 和分泌蛋白NapU 活化，轉(zhuǎn)化為活性產(chǎn)物萘啶霉素[55]，NapW則在胞內(nèi)通過(guò)化合物修飾將毒性中間體及進(jìn)入胞內(nèi)的萘啶霉素轉(zhuǎn)化為低毒形式[56]。A26771B 生物合成基因簇中編碼的分泌蛋白BerkD 可將排出胞外的低毒前藥berkeleylactone E 轉(zhuǎn)化為活性化合物A26771B。當(dāng)A26771B 進(jìn)入胞內(nèi)時(shí)，短鏈還原酶/脫氫酶BerkC 還可將A26771B 的C-4 位羰基還原為羥基來(lái)降低其毒性[57]。同樣地，在最小霉素（minimycin）的生物合成過(guò)程中也存在多種自抗性機(jī)制的協(xié)同作用。最小霉素生物合成基因簇中編碼的MinCN 可將毒性中間體最小霉素單磷酸的磷酸基團(tuán)脫去，從而緩解其毒性作用；同時(shí)，尿嘧啶磷酸核糖轉(zhuǎn)移酶MinD 可催化形成大量尿苷單磷酸，與胞內(nèi)殘留的最小霉素單磷酸競(jìng)爭(zhēng)靶點(diǎn)，從而降低最小霉素單磷酸與靶點(diǎn)的結(jié)合能力，最終實(shí)現(xiàn)對(duì)宿主的自我保護(hù)[58]。

2 基于自抗性基因的基因組挖掘在天然產(chǎn)物研究中的應(yīng)用

自抗性基因?qū)⑻烊划a(chǎn)物的生物合成基因簇與其生物活性聯(lián)系起來(lái)，為基因組挖掘提供了新策略[10,59]。一方面，自抗性基因通常與天然產(chǎn)物生物合成基因簇共定位，可作為基因簇的“定位標(biāo)簽”，用于指導(dǎo)天然產(chǎn)物生物合成基因簇的發(fā)現(xiàn)；另一方面，自抗性基因還可作為“活性標(biāo)簽”，指示基因簇產(chǎn)物的生物活性，或用于對(duì)基因組數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行廣泛挖掘，探索特定活性天然產(chǎn)物的生物合成基因簇。

2.1 活性天然產(chǎn)物生物合成基因簇的發(fā)現(xiàn)

在自抗性基因指導(dǎo)基因簇發(fā)現(xiàn)的早期研究階段，研究人員基于自抗功能來(lái)尋找目標(biāo)基因簇，即利用代謝產(chǎn)物對(duì)產(chǎn)生菌的基因組文庫(kù)進(jìn)行抗性篩選，能夠賦予基因文庫(kù)受體菌抗性的片段必然包含自抗性基因，而基因組中與自抗性基因毗鄰的生物合成基因簇最有可能參與該代謝產(chǎn)物的生物合成。借助這一策略，殺稻瘟菌素（blasticidin S，BS）（7，見(jiàn)圖3）和andrimid（8，見(jiàn)圖3）等化合物的生物合成基因簇相繼被鑒定出來(lái)。BS 是來(lái)源于Streptomyces griseochromogenes的肽基核苷類抗生素，廣泛應(yīng)用于植物病原真菌Pyricularia oryzae的防治[60]。Cone 等[61]利用BS 對(duì)S. Griseochromogenes的基因組文庫(kù)進(jìn)行抗性篩選，以獲得的抗性DNA 片段作為探針成功鑒定到BS 的完整生物合成基因簇bls。該基因簇包含19 個(gè)開(kāi)放閱讀框，抗性DNA 探針中包含的blsJ編碼了1 個(gè)ABC 家族的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，可將毒性產(chǎn)物轉(zhuǎn)運(yùn)出去以避免對(duì)自身的傷害[62]。除此之外，簇中blsK編碼的氨酰tRNA 轉(zhuǎn)移酶通過(guò)催化低毒藥物前體亮氨酰脫甲基殺稻瘟菌素（leucyldemethylblasticidin S，LDBS）和亮氨酰殺稻瘟菌素（leucylblasticidin S，LBS）的形成也參與了對(duì)BS 的自抗[63-64]。采用類似的策略對(duì)成團(tuán)泛菌（Pantoea agglomerans）的基因組文庫(kù)進(jìn)行篩選，Jin 等[65]獲得了乙酰輔酶A 羧化酶（acetyl CoA carboxylase，ACC）抑制劑andrimid 的完整生物合成基因簇adm。其中admQ編碼的MFS 家族轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白負(fù)責(zé)將胞內(nèi)積累的andrimid 轉(zhuǎn)運(yùn)出去，admT編碼的自抗酶與管家酶乙酰輔酶A 羧化酶β 亞基AccD 的氨基酸序列高度相似，但203 位的亮氨酸突變?yōu)榧琢虬彼崾沟肁dmT 對(duì)andrimid 的抗性顯著增加[65-67]。

圖3 自抗酶基因指導(dǎo)下鑒定生物合成基因簇的天然產(chǎn)物示例Figure 3 Examples of natural products identifying biosynthetic gene clusters guided by self-resistant enzyme genes

隨著對(duì)自抗酶的認(rèn)識(shí)不斷深入，研究人員開(kāi)始將編碼自抗酶的基因作為基因簇篩選的條件之一。當(dāng)化合物的作用靶點(diǎn)（即管家酶）已知時(shí)，可根據(jù)序列相似性尋找基因組中的抗性拷貝，繼而獲得完整的生物合成基因簇。霉酚酸（2，見(jiàn)圖2）是由青霉屬真菌產(chǎn)生的免疫抑制劑，通過(guò)抑制IMPDH 的活性來(lái)發(fā)揮其藥理作用[68]。利用產(chǎn)生菌Penicillium brevicompactum基因組中克隆得到的IMPDH 序列片段作為探針對(duì)基因組文庫(kù)進(jìn)行篩選，Regueira 等[69]獲得了2 組編碼IMPDH 的DNA 片段。由于原始IMPDH 基因周?chē)偸谴嬖? 個(gè)編碼rasGTPase 激活蛋白的基因，作者利用排除法成功鑒定到霉酚酸的生物合成基因簇mpa。異源表達(dá)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，簇內(nèi)mpaF編碼的IMPDH 對(duì)霉酚酸具有顯著的自抗作用[47]。Coumermycin A1（9，見(jiàn)圖3）是由Streptomyces rishiriensis產(chǎn)生的香豆素類化合物，具有抑制DNA 促旋酶活性的作用。Wang 等[70]同時(shí)以核心基因（dTDP-葡萄糖4，6-脫水酶基因）和抗性促旋酶基因gyrBr作為探針對(duì)產(chǎn)生菌的基因組文庫(kù)進(jìn)行篩選，成功定位到coumermycin A1 的生物合成基因簇cum。

由于基因組測(cè)序成本大幅降低，僅通過(guò)生物信息學(xué)手段對(duì)基因組數(shù)據(jù)進(jìn)行分析，而不必借助繁雜的實(shí)驗(yàn)操作就可對(duì)基因簇進(jìn)行初步定位。煙曲霉素（3，見(jiàn)圖2）是由萜類化合物fumagillol 和聚酮decatetraenedioic acid 酯化形成的MetAP-2 抑制劑[71]。Lin 等[48]對(duì)煙曲霉素產(chǎn)生菌Aspergillusfumigatus的基因組進(jìn)行篩選，發(fā)現(xiàn)fma基因簇中同時(shí)存在高度還原型聚酮合酶（highly-reducing polyketide synthase，HR-PKS）基因af370和MetAP-2基因af410，最有可能參與煙曲霉素的生物合成?；蚯贸腕w外生化實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，fma基因簇中聚酮合酶（polyketide synthase，PKS）和酰基轉(zhuǎn)移酶負(fù)責(zé)聚酮部分的生物合成，而簇中編碼的新型萜環(huán)化酶fma-TC 能夠催化法尼基焦磷酸（farnesyl pyrophosphate，F(xiàn)PP）轉(zhuǎn)化為煙曲霉素的中間體β-順式-佛手柑油烯。Kato 等[72]利用潮霉素B 對(duì)Fusariumsp. RK97-94 進(jìn)行誘導(dǎo)，在代謝產(chǎn)物中分離得到3-羥基-3-甲基戊二酸單酰輔酶A 合成酶（3-hydroxy-3-methyl glutaryl coenzyme A synthase，HMGS）抑制劑1233A（10，見(jiàn)圖3）[73]。結(jié)合轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)和基因組數(shù)據(jù)，作者發(fā)現(xiàn)在潮霉素誘導(dǎo)下轉(zhuǎn)錄水平升高的7 個(gè)基因簇中，3 號(hào)基因簇同時(shí)存在負(fù)責(zé)骨架形成的PKS 基因和HMGS 基因，于是將該基因簇確定為候選基因簇?；蚯贸龑?shí)驗(yàn)結(jié)果表明，簇中各基因均與HMGS 抑制劑1233A 的生物合成相關(guān)，這也說(shuō)明自抗酶在基因簇鑒定過(guò)程中可作為重要的篩選條件[72]。

當(dāng)天然產(chǎn)物產(chǎn)生菌的基因組尚未測(cè)序或基因組數(shù)據(jù)難以獲得時(shí)，還可利用抗性基因?qū)_(kāi)數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行挖掘，在新的產(chǎn)生菌中獲得目標(biāo)基因簇。例如，restricticin（11，見(jiàn)圖3）和lanomycin（12，見(jiàn)圖3）能夠通過(guò)與血紅素鐵配位發(fā)揮抑制甾醇14α-去甲基化酶（sterol 14α-demethylase，CYP51）活性的作用，但由于已知產(chǎn)生菌Penicillium restrictum和Pycnidophora dispersea的基因組尚未測(cè)序，這2 個(gè)化合物的生物合成途徑遲遲未能得到解析。Liu 等[74]采用自抗酶導(dǎo)向的基因組挖掘策略，利用其課題組開(kāi)發(fā)的算法對(duì)公共數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行挖掘，發(fā)現(xiàn)了5 個(gè)同時(shí)編碼CYP51 和相關(guān)生物合成酶的基因簇。其中rstn簇參與了restricticin 的生物合成，簇中各基因的功能也通過(guò)異源表達(dá)和體外生化反應(yīng)得到了闡明。另外，在Curvularia lunata和Pyrenophora dematioidea（TTI-1096）中均保守存在的基因簇則參與了lanomycin 的生物合成。研究人員利用單菌株多次級(jí)代謝產(chǎn)物（one strain many compounds，OSMAC）策略對(duì)P. dematioidea中該基因簇進(jìn)行激活，發(fā)現(xiàn)利用Wheat1 培養(yǎng)基進(jìn)行發(fā)酵時(shí)，在發(fā)酵產(chǎn)物中檢測(cè)到了lanomycin 的產(chǎn)生。

值得注意的是，有些基因簇中編碼的管家酶同源蛋白未必行使自抗功能，而是負(fù)責(zé)化合物的一步生物合成。例如，SB-203207（13，見(jiàn)圖4A）和SB-203208（14，見(jiàn)圖4A）是Streptomycessp.NCIMB 40513 產(chǎn)生的異亮氨酸t(yī)RNA 合成酶抑制劑。利用自抗性基因指導(dǎo)的基因組挖掘策略，Hu等[75]鑒定了化合物13 和14 的生物合成基因簇sbz（見(jiàn)圖4A）。但對(duì)簇中各基因功能進(jìn)行研究時(shí)，作者發(fā)現(xiàn)sbz簇中編碼的異亮氨酸合成酶SbzA 催化tRNAIle氨?；男蔬h(yuǎn)不如基因組中的管家酶Ssp_IleRS，且SbzA 可以在Ile-tRNAIle存在時(shí)將異亮氨酸轉(zhuǎn)移到中間體altemicidin 上，即參與了化合物的生物合成（見(jiàn)圖4B）。提示當(dāng)生物合成酶與管家酶的催化功能存在相似性時(shí)，可能會(huì)對(duì)自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘造成信息誤導(dǎo)，需要仔細(xì)甄別。

圖4 未行使自抗功能的自抗酶基因舉例Figure 4 Examples of self-resistant enzyme genes without self-protection function

2.2 自抗性基因?qū)虻奶烊划a(chǎn)物活性研究

由于自抗性基因具有“活性標(biāo)簽”的特點(diǎn)，研究人員逐漸意識(shí)到，天然產(chǎn)物的生物合成基因簇除了能夠闡明生物合成途徑，還為天然產(chǎn)物的生物活性研究提供了線索。例如，rumbrins 類化合物是含氯多烯吡咯類化合物，具有抗癌、抗脂質(zhì)過(guò)氧化和細(xì)胞保護(hù)作用等多種藥理活性[76-77]。筆者課題組[78]在研究rumbrin（15，見(jiàn)圖5）的生物合成過(guò)程中，發(fā)現(xiàn)了1 個(gè)潛在的自抗酶RumB。簇中基因rumB在rumbrin 的生物合成中保持轉(zhuǎn)錄，但并不參與其生物合成。生物信息分析表明，RumB 與人源硫酯酶Ⅱ（human thioesterase II，hTE）具有較高的同源性，hTE 是人類免疫缺陷病毒（human immunodeficiency virus，HIV）輔助蛋白Nef 在宿主中的分子伴侶，在HIV 感染的早期階段發(fā)揮了重要作用。因此筆者課題組推測(cè)rumbrins 類化合物可能通過(guò)靶向hTE 來(lái)發(fā)揮抗HIV 活性。體外活性評(píng)價(jià)實(shí)驗(yàn)證明，大多數(shù)rumbrins 對(duì)HIV 復(fù)制的早期階段具有明顯的抑制作用（納摩爾級(jí)），并且化合物12E-rumbrin 的抑制率與陽(yáng)性藥相當(dāng)，這與生物信息分析的結(jié)果一致。同時(shí)，筆者課題組在對(duì)同源基因簇進(jìn)行分析時(shí)，發(fā)現(xiàn)參與malbranpyrroles 生物合成的mas簇中缺少rumB的同源基因。相應(yīng)地，malbranpyrroles 展示出極弱的抗HIV 活性。以上結(jié)果表明自抗酶對(duì)化合物靶點(diǎn)發(fā)現(xiàn)具有啟示作用，為基于自抗性基因發(fā)現(xiàn)先導(dǎo)化合物及其作用靶點(diǎn)提供了新的思路。

圖5 自抗性基因指導(dǎo)下闡明天然產(chǎn)物靶點(diǎn)的示例Figure 5 Natural products targets elucidated under the guidance of self-resistant enzyme genes

在淺灰霉素類化合物（griselimycins）作用靶點(diǎn)的發(fā)現(xiàn)過(guò)程中，自抗酶基因也發(fā)揮了不可或缺的作用。淺灰霉素（griselimycin，GM，16，見(jiàn)圖5）由Streptomycessp. DSM-40835 產(chǎn)生，具有抗多藥耐藥結(jié)核分枝桿菌活性。Kling 等[79]鑒定了GM 的生物合成基因簇，并在簇中發(fā)現(xiàn)了dnaN的同源基因griR，dnaN負(fù)責(zé)編碼管家酶DNA 聚合酶的滑動(dòng)鉗部分，在DNA 復(fù)制過(guò)程中發(fā)揮重要作用。由于griR基因的引入可使原本對(duì)GM 敏感的異源宿主產(chǎn)生抗性，且表面等離子共振（surface plasmon resonance，SPR）結(jié)果顯示GriR 與GM 的親和力遠(yuǎn)低于DnaN，因此作者推測(cè)GriR 為基因簇中編碼的自抗酶，而DnaN 為淺灰霉素類化合物的靶點(diǎn)。Obafluorin（17， 見(jiàn)圖5） 是由Pseudomonas fluorescensATCC 39502 產(chǎn)生的β-內(nèi)酯類化合物，對(duì)革蘭陽(yáng)性菌和陰性菌均有抑制作用。Scott 等[80]發(fā)現(xiàn)在obafluorin 的生物合成基因簇oba中存在1 個(gè)編碼蘇氨酰-tRNA 合成酶的基因obaO，當(dāng)obaO被敲除時(shí)，敲除菌株對(duì)obafluorin 的敏感性顯著增加，且導(dǎo)入obaO的大腸埃希菌顯示出了對(duì)obafluorin的抗性。因此，作者推測(cè)obafluorin 的靶點(diǎn)為蘇氨酰-tRNA 合成酶，而ObaO 為基因簇中的自抗酶。體外生化實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了這一推測(cè)。當(dāng)存在1 μmol · L-1的obafluorin 時(shí)，管家酶蘇氨酰-tRNA 合成酶可被obafluorin 完全抑制，而在最大濃度的obafluorin 中自抗酶ObaO 依然保持部分活性。同樣地，Xie 等[81]在研究harzianic acid（18，見(jiàn)圖5）的靶點(diǎn)時(shí)也采用了自抗性基因?qū)虻牟呗?。由于Trichoderma afroharzianumt-22（Tht22）體內(nèi)參與harzianic acid生物合成的基因簇中編碼了1 個(gè)乙酰羥酸合成酶（acetohydroxyacid synthase，AHAS，在該真菌中命名為T(mén)hAHAS），作者推測(cè)harzianic acid 的作用靶點(diǎn)為AHAS。結(jié)合生物信息分析、體外生化反應(yīng)和對(duì)ThAHAS 的晶體結(jié)構(gòu)研究，作者發(fā)現(xiàn)harzianic acid 不僅可抑制原始的AHAS，對(duì)P188 發(fā)生突變的抗性AHAS 也產(chǎn)生了明顯的抑制作用。

2.3 自抗性基因?qū)虻男禄衔锇l(fā)現(xiàn)

除了為天然產(chǎn)物的生物活性研究提供線索之外，自抗性基因還可用于指導(dǎo)海量基因組數(shù)據(jù)中特定活性化合物生物合成基因簇的發(fā)現(xiàn)，從而獲得新的活性化合物。Tang 等[82]基于自抗酶基因的特點(diǎn)開(kāi)發(fā)出一套完整的基因組挖掘流程，并利用這一流程對(duì)鹽孢菌屬細(xì)菌基因組進(jìn)行了廣泛的挖掘。利用同源基因聚類、直系同源組功能鑒定等方法，作者在參與脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)和代謝的直系同源組中發(fā)現(xiàn)了管家酶FabB/F 的同源蛋白Salin8269。Salin8269 位于tlm基因簇內(nèi)，當(dāng)對(duì)tlm簇進(jìn)行異源表達(dá)時(shí)，作者在代謝產(chǎn)物中分離到具有Ⅱ型脂肪酸合成酶（fatty acid synthase type II，F(xiàn)ASII）抑制活性的thiotetronic acids 類化合物（19 ～ 22，見(jiàn)圖6），其中包括已知的thiolactomycin（TLM）。同時(shí)，作者利用同源比對(duì)方法，在Streptomyces afghaniensis中找到了類似的基因簇ttm，并在其異源表達(dá)產(chǎn)物中分離到一系列新的TLM 同系物（23 ～ 26，見(jiàn)圖6）。Thiotetronic acids 類化合物的發(fā)現(xiàn)證實(shí)了基于自抗酶進(jìn)行基因組挖掘這一策略的可行性。

圖6 以自抗性基因?yàn)閷?dǎo)向挖掘的天然產(chǎn)物示例Figure 6 Discovery of natural products guided by self-resistant gene

自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘在新型除草劑的開(kāi)發(fā)中也發(fā)揮了重要作用。支鏈氨基酸（branchedchain amino acid，BCAA）的生物合成對(duì)植物的生長(zhǎng)至關(guān)重要，由于該途徑在動(dòng)物中并不存在，因此是除草劑開(kāi)發(fā)的理想靶點(diǎn)。BCAA 的生物合成過(guò)程中有3 個(gè)酶參與，包括乙酰乳酸合酶（acetolactate synthase，ALS）、乙酰羥基酸異構(gòu)還原酶（ketolacid reductoisomerase，KARI）和二羥基酸脫水酶（dihydroxyacid dehydratase，DHAD）。Zhang 等[83]以ALS 為探針對(duì)459 個(gè)真菌測(cè)序基因組進(jìn)行篩選，發(fā)現(xiàn)了4 個(gè)含有ALS 編碼基因的生物合成基因簇，其中Aspergillus candidus基因組中的cfo簇參與了氯黃酮（27，見(jiàn)圖6）的生物合成。氯黃酮可有效抑制擬南芥種子萌發(fā)和病原菌生長(zhǎng)，且基因敲除和異源表達(dá)實(shí)驗(yàn)證實(shí)，簇中ALS 編碼基因cfoL參與了A. candidus對(duì)氯黃酮的自抗作用。Yan 等[84]則在已測(cè)序的真菌基因組中對(duì)與生物合成核心基因共定位的DHAD 基因進(jìn)行挖掘，發(fā)現(xiàn)在多個(gè)真菌基因組中保守存在的ast簇編碼了1 個(gè)DHAD 同源蛋白AstD。作者利用釀酒酵母對(duì)ast簇進(jìn)行異源表達(dá)，并分離得到基因簇產(chǎn)物aspterric acid（28，見(jiàn)圖6）。Aspterric acid 表現(xiàn)出對(duì)多種植物的生長(zhǎng)和根系發(fā)育的抑制作用[84-85]，這使其有望發(fā)展成為新一代廣譜除草劑。體外生化反應(yīng)和異源表達(dá)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，aspterric acid 可以競(jìng)爭(zhēng)性地抑制管家酶DHAD 的活性，而ast簇中編碼的同源蛋白AstD 在aspterric acid 的濃度達(dá)到溶解度極限（8 mmol · L-1）的情況下，依然可以行使正常的催化功能。同時(shí)，當(dāng)擬南芥中導(dǎo)入密碼子優(yōu)化的astD基因時(shí)，轉(zhuǎn)基因植株表現(xiàn)出對(duì)aspterric acid 的抗性。提示astD基因可用于抗aspterric acid 作物的培育，這也使得aspterric acid的除草劑開(kāi)發(fā)更具前景。

Elfamycins 是一系列具有鏈延長(zhǎng)因子Tu（elongation factor Tu，EF-Tu）抑制活性的抗生素[86]，由kirromycin，enacyloxin IIa，pulvomycin 和GE2270A 這4 類結(jié)構(gòu)不同的化合物組成。Kirromycin通過(guò)阻斷核糖體上EF-Tu·GDP（guanosine diphosphate，二磷酸鳥(niǎo)苷）的構(gòu)象變化而發(fā)揮抑制作用[87]，鏈霉菌中針對(duì)kirromycin 的抗性突變主要發(fā)生在EF-Tu 的375 位丙氨酸（A375T）上。Yarlagadda 等[88]基于抗性EF-Tu（A375T，EF-TuKirR）基因?qū)︽溍咕蚪M進(jìn)行挖掘，發(fā)現(xiàn)3個(gè)含有潛在elfamycins 生物合成基因簇的菌株，其中Streptomyce cattleya已知可以產(chǎn)生elfamycin L-681217。此外，作者在篩選到的S. sulphureusATCC 27468 代謝產(chǎn)物中分離得到phenelfamycin A（29，見(jiàn)圖6）和phenelfamycin B（30，見(jiàn)圖6），其中phenelfamycin B 可通過(guò)干擾EF-Tu 抑制蛋白質(zhì)合成，具有抗耐藥淋病奈瑟菌的活性。

ClpP 蛋白酶是ATP 依賴的蛋白水解酶，在原核及真核生物的線粒體中廣泛存在。Culp 等[89]以ClpP 為探針進(jìn)行基因組挖掘，篩選到10 條含有clpP基因的生物合成基因簇，并對(duì)其中同時(shí)包含雙模塊非核糖體肽合成酶（nonribosomal peptide synthase，NRPS）基因和Ⅰ型PKS 基因的cac基因簇進(jìn)行了深入研究。由于cac基因簇異源表達(dá)產(chǎn)物可對(duì)ClpP 進(jìn)行共價(jià)修飾（ClpP 相對(duì)分子質(zhì)量增加約328 000），作者認(rèn)為cac簇必然參與了共價(jià)ClpP 抑制劑的生物合成，并基于以上結(jié)果分離得到cac簇的真實(shí)產(chǎn)物clipibicyclene（31，見(jiàn)圖6）。Clipibicyclene 可顯著抑制管家酶ClpP 的活性，且cac簇中編碼的ClpP 同源蛋白（Cac16 和Cac17）參與了產(chǎn)生菌對(duì)clipibicyclene 的自抗作用。

有些自抗性基因雖然并非編碼管家酶抗性變體的基因，但由于在特定靶點(diǎn)抑制劑的生物合成基因簇中廣泛存在，也可用于指導(dǎo)基因組挖掘。例如，拓?fù)洚悩?gòu)酶是抗腫瘤藥物和抗生素作用的重要靶點(diǎn)，而五肽重復(fù)蛋白（pentapeptide repeat protein，PRP）提供了微生物對(duì)拓?fù)洚悩?gòu)酶抑制劑的抗性[90]。Panter 等[91]以PRP 為探針，對(duì)黏細(xì)菌基因組進(jìn)行自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘，在PyxidicoccusfallaxAn d48 中發(fā)現(xiàn)了新型拓?fù)洚悩?gòu)酶抑制劑pyxidicycline A（32， 見(jiàn)圖6） 和pyxidicycline B（33，見(jiàn)圖6）。Li 等[92]則利用普遍存在的四環(huán)素類化合物自抗性基因（tetR/marR和鄰近轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因如tetA）以及核心酶基因（PKS 基因和鏈延長(zhǎng)因子基因）對(duì)國(guó)家生物技術(shù)信息中心（National Center of Biotechnology Information，NCBI）中已注釋的20 000 余個(gè)基因組進(jìn)行篩選，通過(guò)對(duì)候選基因簇中鏈延長(zhǎng)因子的進(jìn)化樹(shù)分析，發(fā)現(xiàn)了30 個(gè)可能參與四環(huán)素類化合物生物合成的基因簇。經(jīng)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證，其中的hai基因簇為高度糖基化的新穎四環(huán)素類化合物hainancycline（34，見(jiàn)圖6）的生物合成基因簇。

2.4 生物信息學(xué)工具的開(kāi)發(fā)

隨著基因組數(shù)據(jù)的爆炸式增長(zhǎng)，對(duì)基因組數(shù)據(jù)進(jìn)行手動(dòng)挖掘已難以滿足科研人員的需求。因此許多生物信息學(xué)工具涌現(xiàn)出來(lái)，這為研究者基于自抗性基因進(jìn)行基因組挖掘提供了有力幫助。

AntiSMASH（antibiotics and secondary metabolites analysis shell，https://antismash.secondarymetabolites.org）是廣泛應(yīng)用于細(xì)菌和真菌生物合成基因簇分析的生物信息學(xué)平臺(tái)。2019 年推出的antiSMASH 5.0使用耐藥蛋白數(shù)據(jù)庫(kù)Resfams 的隱馬爾可夫模型（profile Hidden Markov Models，pHMMs）對(duì)基因簇中潛在的自抗性基因進(jìn)行注釋，為自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘提供了條件[93]。ClusterTools（https://github.com/emzodls/clusterArch）是基于BLAST（basic local alignment search tool）和pHMMs 構(gòu)建的基因組挖掘軟件。用戶以核心酶或存在特定結(jié)構(gòu)域組合的蛋白為篩選條件，尋找感興趣的基因簇。除了對(duì)參與生物合成的基因進(jìn)行篩選之外，clusterTools 還可將參與基因調(diào)控和自抗的基因作為篩選條件，因而可用于自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘[94]。

Alanjary 等[95]開(kāi)發(fā)了搜索引擎Antibiotic Resistant Target Seeker（ARTS，https://arts.ziemertlab.com）。該網(wǎng)站基于3 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)對(duì)自抗性基因進(jìn)行篩選：是否存在管家基因的重復(fù)拷貝；是否定位于生物合成基因簇內(nèi)；是否存在水平基因轉(zhuǎn)移現(xiàn)象。篩選結(jié)果最終匯總到交互式輸出表中，用戶可根據(jù)需要進(jìn)行篩選和排序，非常便捷。最初版本的ARTS 只能應(yīng)用于放線菌中，2020 年更新的ARTS 2.0[96]則可對(duì)所有細(xì)菌基因組和宏基因組數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。此外，ARTS 2.0還可對(duì)不同基因組中的相似基因簇及簇中的自抗性基因進(jìn)行比較。由于ARTS 只能充當(dāng)網(wǎng)絡(luò)服務(wù)器，每次只能執(zhí)行單項(xiàng)分析任務(wù)，且需要一定的時(shí)間進(jìn)行數(shù)據(jù)處理，開(kāi)發(fā)者們又推出了ARTS-DB 數(shù)據(jù)庫(kù)（https://arts-db.ziemertlab.com/）[97]。ARTS-DB 提供了70 000 余個(gè)基因組和宏基因組預(yù)先計(jì)算的ARTS 結(jié)果，用戶可根據(jù)ARTS 篩選的基本標(biāo)準(zhǔn)（基因拷貝、臨近基因簇和水平基因轉(zhuǎn)移）對(duì)數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行檢索。不僅如此，ARTS-DB 數(shù)據(jù)庫(kù)中還提供了其他含有相關(guān)信息數(shù)據(jù)庫(kù)的鏈接，便于用戶對(duì)篩選結(jié)果進(jìn)行進(jìn)一步分析。

Stahlecker 等[98]開(kāi)發(fā)了基于系統(tǒng)發(fā)育對(duì)目標(biāo)基因周?chē)危╪eighborhoods of gene of interest，NGIs）進(jìn)行可視化分析的工具——SYN-View（https://bitbucket.org/jstahlecker/syn-view/）。由于在親緣關(guān)系接近的菌株中管家基因的NGIs 往往保守存在，而自抗性基因的NGIs 之間存在明顯差異，因此SYN-View 的可視化結(jié)果可作為ARTS 等分析工具的補(bǔ)充，對(duì)ARTS 篩選得到的自抗性基因進(jìn)行進(jìn)一步篩選和確認(rèn)。

Vandova 等[99]開(kāi)發(fā)了與ARTS 類似的算法（https://github.com/GerganaVandova/TargetMining）。該算法除了采用基因的重復(fù)拷貝以及自抗性基因與生物合成基因簇之間的距離作為篩選標(biāo)準(zhǔn)之外，還增加了對(duì)自抗酶與核心酶之間共進(jìn)化關(guān)系的分析，對(duì)核心基因與自抗性基因之間距離的要求也更嚴(yán)格。作者利用陽(yáng)性對(duì)照組驗(yàn)證了算法的可行性，并對(duì)NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中的PKS 基因簇進(jìn)行了篩選和排序，篩選結(jié)果可為新型抗生素的研發(fā)提供參考。

Kj?rb?lling 等[100]開(kāi)發(fā)的真菌自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘（fungal resistance gene-directed genome mining，F(xiàn)RIGG）管線也是基于自抗酶基因的特點(diǎn)進(jìn)行基因挖掘的：自抗酶基因位于基因簇內(nèi)，并且是基因簇內(nèi)管家基因的同源拷貝。該管線包含5 步篩選過(guò)程，對(duì)存在自抗性基因的基因簇進(jìn)行篩選并過(guò)濾掉可能存在的假陽(yáng)性結(jié)果。利用主成分分析（principal-component analysis，PCA）、進(jìn)化樹(shù)分析、功能注釋和BLASTp（對(duì)蛋白質(zhì)的氨基酸序列進(jìn)行同源性比對(duì)，尋找同源蛋白或?qū)Φ鞍踪|(zhì)進(jìn)行功能預(yù)測(cè)）對(duì)篩選得到的候選基因簇進(jìn)行進(jìn)一步分析，可使篩選更高效。利用這一篩選策略，作者在51 株曲霉菌和青霉菌的基因組中鑒定到72 個(gè)潛在的自抗性基因，其中包含已經(jīng)得到功能表征的自抗性基因inpE（參與產(chǎn)生菌對(duì)fellutamide B 的自抗性機(jī)制），證實(shí)了該工具的有效性。值得注意的是，該管線更適用于對(duì)親緣關(guān)系較為接近的真菌基因組進(jìn)行分析，若數(shù)據(jù)庫(kù)中包含親緣關(guān)系較遠(yuǎn)的真菌，則需要對(duì)篩選參數(shù)進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。

3 總結(jié)與展望

自抗性是保證產(chǎn)生天然產(chǎn)物的微生物“殺敵不傷己”的重要機(jī)制，也為后基因組時(shí)代的基因組挖掘提供了新的策略和思路。本文歸納了微生物常見(jiàn)的自抗性機(jī)制，對(duì)自抗性基因?qū)虻幕蚪M挖掘策略及其應(yīng)用進(jìn)行了分類介紹，同時(shí)還對(duì)已開(kāi)發(fā)的基于自抗性基因進(jìn)行基因組挖掘的生物信息學(xué)工具進(jìn)行了匯總。盡管基于自抗性基因進(jìn)行基因組挖掘的策略卓有成效，但仍存在一些亟待解決的問(wèn)題。例如，自抗性基因可能存在于基因組中的其他位置而非基因簇內(nèi)[101]；部分自抗性機(jī)制與天然產(chǎn)物的生物合成途徑融合，自抗性基因編碼的酶既具有抗性，同時(shí)又作為天然產(chǎn)物的生物合成途徑酶而存在[102]；某些生物合成基因簇中的管家基因拷貝并未編碼抗性酶，而是參與了化合物生物合成[75]等。隨著對(duì)天然產(chǎn)物生物合成以及自抗性機(jī)制的深入研究，研究人員有望利用人工智能、機(jī)器學(xué)習(xí)等手段設(shè)計(jì)出更加合理高效的生物信息學(xué)工具和數(shù)據(jù)庫(kù)，更精準(zhǔn)地預(yù)測(cè)生物合成基因簇、基因簇產(chǎn)物及天然產(chǎn)物的靶點(diǎn)，從而實(shí)現(xiàn)對(duì)微生物中天然產(chǎn)物資源更好的開(kāi)發(fā)和利用。