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      楚雄葛根提取工藝優(yōu)化及免疫調(diào)節(jié)活性初探

      2023-01-12 07:18:38趙悅李佳錦張希楊婧娟馬雅鴿
      食品工業(yè) 2022年12期
      關(guān)鍵詞:水提物楚雄葛根素

      趙悅,李佳錦,張希,楊婧娟,馬雅鴿*

      云南中醫(yī)藥大學(xué)(昆明 650500)

      葛根常作為保健食品的原料。葛根中的活性成分有黃酮類(lèi)化合物(3.78%)[1]、香豆素類(lèi)、氨基酸類(lèi)等[2],而如何提高葛根素提取效率一直是研究熱點(diǎn)。常用的傳統(tǒng)提取法有水提取法、醇提取法[3]和回流法[4];現(xiàn)代提取工藝有微波輔助提取[5]、超聲提取[6]、酶解法、超臨界流體提取法[7]、半仿生提取法[8]、仿生提取法[9]等。水提和醇提法最為常見(jiàn),但用這2種方法提取葛根素得率的差異需做進(jìn)一步試驗(yàn)研究。葛根素、黃酮類(lèi)含量常見(jiàn)的檢測(cè)方法有高效液相法(high performance liquid chromatography,HPLC)[10]、紫外分光光度法[1]等。葛根素具有廣泛的藥理活性,如降壓[11]、降糖[12]、改善骨質(zhì)疏松[13]、保護(hù)心肌細(xì)胞[14]、抗腫瘤[15]、抗血小板聚集等[2,16]。還可用于輔助治療心腦循環(huán)障礙相關(guān)疾病[11,17-18],及慢性酒精誘導(dǎo)的肝損傷[19]、糖尿病[16,20-23]。近年來(lái),對(duì)于免疫類(lèi)疾病的研究也成為熱點(diǎn),試驗(yàn)研究更是涉及細(xì)胞、動(dòng)物、通路等,相關(guān)研究技術(shù)和思路也更加成熟和系統(tǒng)。葛根素也具一定免疫調(diào)節(jié)作用,如葛根素可通過(guò)NF-κB信號(hào)通路減輕高糖誘導(dǎo)的RSC96細(xì)胞炎癥[24],但研究并不全面。

      基于此,試驗(yàn)采用高效液相色譜法[10]測(cè)定楚雄葛根粉中葛根素含量;采用均勻設(shè)計(jì)法[8],對(duì)葛根素及黃酮的水提和醇提工藝進(jìn)行優(yōu)化和對(duì)比研究;以小鼠RAW264.7巨噬細(xì)胞為模型,探討2種提取物對(duì)RAW264.7的免疫調(diào)節(jié)活性。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      楚雄葛根全粉(Chuxiong Radix Puerariae thomsonii Powder,CRPTP,云南省楚雄州姚安縣);RAW264.7細(xì)胞(RAW購(gòu)自武漢普諾賽生命科技有限公司,源自Abelson鼠科白血病病毒誘導(dǎo)的腫瘤;sIg-、Ia-抗原、Thy-1.2表面抗原陰性。RAW264.7細(xì)胞不分泌可檢測(cè)到的病毒顆粒,XC斑點(diǎn)形成試驗(yàn)陰性。RAW264.7細(xì)胞可以胞飲中性紅并吞噬乳膠顆粒與酵母聚糖,并且可以抗體依賴(lài)性地分解綿羊紅血球與腫瘤靶細(xì)胞。LPS或PPD處理2的、可誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞分解紅血球,但對(duì)腫瘤靶細(xì)胞無(wú)作用)。

      蘆丁(99.99%,上海源葉生物科技有限公司);葛根素(99.99%,上海麥克林生物科技有限公司);其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純;中性紅細(xì)胞增殖及細(xì)胞毒性檢測(cè)試劑盒(碧云天生物技術(shù)有限公司);脂多糖(LPS,純度≥98%,Solarbio);CCK-8試劑盒(proteintech);胎牛血清(BI公司);DMEM高糖培養(yǎng)基(美國(guó)gibico公司)

      1.2 儀器與設(shè)備

      紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(L5S,上海精密儀器儀表有限公司);電子天平(CP214,上海奧豪斯儀器有限公司);超聲波清洗機(jī)(SB-5200D,寧波新芝生物科技股份有限公司);電熱恒溫水浴鍋(DK-98-Ⅱ,天津市泰斯特儀器有限公司);低速離心機(jī)(SC-3614,安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司);電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(HGZF-Ⅱ/H-101-3,上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司);超純水儀(LAB-250SY,南京歐鎧環(huán)境科技有限公司);高效液相色譜儀(HITACHI L2000,美國(guó)安捷倫公司)。

      1.3 方法

      1.3.1 葛根素和黃酮提取方法

      稱(chēng)取5.000 0 g的葛根粉,配好提取液,頻率40 kHz,功率100 W,室溫,超聲5 min,控制不同條件提取,提取物離心15 min,得到葛根提取液。

      1.3.1.1 水提法

      采用DPS軟件,以葛根素和總黃酮含量為指標(biāo),進(jìn)行提取時(shí)間(X1)、提取溫度(X2)和料液比(X3)的三因素九水平均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì),進(jìn)行試驗(yàn),對(duì)楚雄葛根水提物中葛根素和黃酮的提取條件進(jìn)行優(yōu)化。

      1.3.1.2 醇提法

      采用DPS軟件,以葛根素和總黃酮含量為指標(biāo),進(jìn)行乙醇體積分?jǐn)?shù)(X1)、提取時(shí)間(X2)、提取溫度(X3)、料液比(X4)的四因素九水平的均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì),進(jìn)行試驗(yàn),對(duì)楚雄葛根醇提物中葛根素和黃酮的提取條件進(jìn)行優(yōu)化。

      1.3.2 高效液相色譜法測(cè)定葛根素含量

      色譜條件:ODSHYPERSIL色譜柱(250 nm×4.6 mm,5 μm),流動(dòng)相為甲醇-水(25∶75,V/V),流速1.0 mL/min,柱溫25 ℃,進(jìn)樣量20 μL,檢測(cè)波長(zhǎng)250 nm。

      樣品溶液的制備:準(zhǔn)確稱(chēng)取5.000 g葛根粉,置于250 mL圓底燒瓶中,加入100 mL 70%的乙醇,在80 ℃水浴鍋中回流提取60 min,提取液以3 000 r/min離心10 min,取上清液,加入70%的乙醇定容至100 mL,待測(cè)。

      葛根素含量的測(cè)定:用雙蒸水將100 mg/mL的葛根素標(biāo)準(zhǔn)品母液,稀釋成質(zhì)量濃度為10,20,30,40,50,60,80,100,120和200 μg/mL的葛根素標(biāo)準(zhǔn)品使用液。進(jìn)樣量20 μL,進(jìn)行HPLC測(cè)定。以葛根素含量為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。取4種市售葛根樣品液,進(jìn)樣量20 μL,根據(jù)峰面積計(jì)算葛根素含量[22]。

      1.3.3 分光光度法測(cè)定葛根素含量

      用30%乙醇配制100 mg/mL葛根素標(biāo)準(zhǔn)液,稀釋成質(zhì)量濃度為0,10,20,30,40,50,60,80,100和120 μg/mL的葛根素標(biāo)準(zhǔn)品使用液。在波長(zhǎng)250 nm處,測(cè)定吸光度。以葛根素濃度為橫坐標(biāo),250 nm處吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。用紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)在波長(zhǎng)250 nm處,測(cè)定葛根提取液的吸光度,將吸光度代入葛根素標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算樣品中葛根素含量。

      1.3.4 分光光度法測(cè)定總黃酮含量

      用80%乙醇體積分?jǐn)?shù)配制質(zhì)量濃度100 μg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液母液,稀釋成質(zhì)量濃度為0,20,30,40,50,60,70和80 μg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)系列使用液。在波長(zhǎng)510 nm處測(cè)量吸光度。以蘆丁濃度為橫坐標(biāo),A510nm為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。在波長(zhǎng)510 nm處,測(cè)定葛根提取液的吸光度,將吸光度代入蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算樣品中黃酮含量。

      1.3.5 葛根粉水提物和葛根粉醇提物對(duì)RAW264.7細(xì)胞增殖作用的影響

      將長(zhǎng)勢(shì)良好的RAW264.7細(xì)胞以1×105CFU/mL的密度取200 μL接種到96孔板[25],在5% CO2,37℃條件下培養(yǎng)24 h。設(shè)置空白組(NG)、陽(yáng)性對(duì)照組(LPS)、給藥組,給藥組分別加入葛根水提物(pueraria aqueous extract,PAE)和葛根醇提物(pueraria ethanol extract,PEE)且分別設(shè)低、中、高劑量組,濃度分別為50,200和800 μg/mL,每組5個(gè)復(fù)孔。繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,棄去培養(yǎng)液,向每孔加入10 μL的CCK-8溶液,并加培養(yǎng)液至100 μL,將96孔板置于培養(yǎng)箱中孵育1 h,用酶標(biāo)儀在450 nm處測(cè)定吸光度,按式(1)計(jì)算細(xì)胞增殖率,即細(xì)胞活力。

      1.3.6 葛根水提物及醇提物對(duì)RAW264.7細(xì)胞吞噬作用的影響

      將長(zhǎng)勢(shì)良好的RAW264.7細(xì)胞以1×105CFU/mL的密度,取200 μL接種到96孔板,在5% CO2,37 ℃條件下培養(yǎng)24 h。棄去舊培養(yǎng)液,設(shè)置空白組(NG)、陽(yáng)性對(duì)照組(LPS)、給藥組,給藥組分別加入PAE和PEE,且分別設(shè)低、中、高劑量組,每組5個(gè)復(fù)孔。培養(yǎng)12 h后,棄去舊培養(yǎng)液,用PBS緩沖液清洗1次,加入50 μL中性紅染色液,染色20 min,棄去染色液,用PBS緩沖液清洗2次,在顯微鏡下檢測(cè)細(xì)胞染色情況。加入200 μL中性紅檢測(cè)裂解液,室溫振蕩裂解10 min,裂解50 min,用酶標(biāo)儀在540 nm處測(cè)定吸光度,按式(2)計(jì)算吞噬率。

      1.3.7 數(shù)據(jù)處理

      試驗(yàn)采用DPS 9.50軟件對(duì)所有數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸分析,擬合出變量之間的方程,用于最優(yōu)條件的選擇,其他所有數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(SD)表示。數(shù)據(jù)采用一般線性模型和單因素方差分析,組間差異采用Duncan’s multiple range檢驗(yàn),采用SPSS軟件。每個(gè)試驗(yàn)至少重復(fù)3次。差異顯著,P<0.05,差異極顯著,P<0.01。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 HPLC法測(cè)定種植楚雄葛根全粉中葛根素含量結(jié)果與分析

      不同標(biāo)準(zhǔn)品濃度測(cè)得葛根素標(biāo)準(zhǔn)曲線方程y=51.853x+114.48,相關(guān)系數(shù)R2=0.998 8,說(shuō)明該標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性相關(guān)性良好,可用于葛根素含量10~200 μg/mL的樣品測(cè)定,見(jiàn)圖1。根據(jù)色譜條件測(cè)定楚雄葛根全粉中葛根素峰面積,見(jiàn)圖2,計(jì)算出樣品中葛根素含量,如表1所示。

      圖1 葛根素標(biāo)準(zhǔn)曲線的高效液相色譜圖

      圖2 楚雄葛根全粉中葛根素含量的高效液相色譜圖

      表1 楚雄葛根全粉中葛根素含量測(cè)定結(jié)果

      經(jīng)過(guò)對(duì)楚雄姚安的葛根全粉中葛根素含量的測(cè)定,結(jié)果得出其葛根素含量為4.05 mg/g。

      2.2 楚雄葛根中葛根素和黃酮水提工藝的優(yōu)化結(jié)果與討論

      測(cè)得葛根素含量標(biāo)準(zhǔn)曲線方程y=0.033 5x+0.115 9,相關(guān)系數(shù)R2=0.995 2,說(shuō)明該標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性相關(guān)性良好,可用于葛根素含量10~100 μg/mL的樣品測(cè)定。蘆丁含量標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.011 1x+0.003 3,相關(guān)系數(shù)R2=0.995 4,說(shuō)明該標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性相關(guān)性良好,可用于黃酮含量20~80 μg/mL的樣品測(cè)定。楚雄葛根水提物中葛根素和黃酮含量如表2所示。

      表2 均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì)水提葛根中葛根素和黃酮測(cè)定結(jié)果(以干重計(jì))

      利用DPS數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)中二次多項(xiàng)式逐步回歸分析法對(duì)在各試驗(yàn)方案下所得含量進(jìn)行分析,得到水提物葛根素和黃酮含量回歸方程:Y1=557.96+82.11X1+63.58X3-29.41X22-30.60X32+28.14X1X3+79.28X2X3;Y2=647.10-250.68X2-61.08X3+30.48X22-5.85X1X2+2.87X1X3+10.79X2X3。

      Y1相關(guān)系數(shù)R=0.996 7,顯著水平P=0.019 4,Y2相關(guān)系數(shù)R=0.994,顯著水平P=0.035 6,說(shuō)明2個(gè)回歸方程相關(guān)性較好。通過(guò)回歸方程分析,預(yù)測(cè)的葛根素水提的最優(yōu)工藝條件為提取時(shí)間135 min、溫度92.7 ℃、料液比1∶50(g/mL),葛根素含量最高提取值為1 156.05 μg/g。預(yù)測(cè)的黃酮水提的最優(yōu)工藝條件為提取時(shí)間15 min、溫度92.7 ℃、料液比1∶48(g/mL),黃酮含量最高提取值為5 221.02 μg/g。

      綜合考慮,在時(shí)間135 min、溫度92.7 ℃、料液比1∶50(g/mL)條件下,各進(jìn)行3次平行試驗(yàn),水提物葛根素平均含量為809.42±11.32 μg/g,黃酮平均含量為3 848.08±23.43 μg/g。將葛根素和黃酮的平均值與最高含量預(yù)測(cè)值進(jìn)行比較,即此條件下所得葛根素含量為預(yù)測(cè)值的70.00%,黃酮含量為預(yù)測(cè)值的73.70%。2個(gè)預(yù)測(cè)值誤差較大,但仍能接受。

      2.3 楚雄葛根中葛根素和黃酮醇提工藝的優(yōu)化結(jié)果與討論

      楚雄葛根醇提物中葛根素和黃酮含量如表3所示。

      表3 均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì)醇提葛根中葛根素和黃酮測(cè)定結(jié)果(以干重計(jì))

      利用DPS數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)中二次多項(xiàng)式逐步回歸分析法對(duì)在各試驗(yàn)方案下所得含量進(jìn)行分析,得醇提葛根素和黃酮含量回歸方程:Y1=-172.64+155.48X3+755.11X4-32.46X32-46.06X42-4.85X1X2+1.05X1X4-0.30X3X4;Y2=666.16-134.67X1-26.00X2-12.30X4+7.61X12+3.68X22+1.82X42-0.11X1X4

      Y1相關(guān)系數(shù)R=1,顯著水平P=0.05,Y2相關(guān)系數(shù)R=1,顯著水平P=0.002 9,說(shuō)明2個(gè)回歸方程相關(guān)性較好。通過(guò)回歸方程分析可知,在此方案下醇提葛根素的最優(yōu)工藝條件為乙醇體積分?jǐn)?shù)90%、提取時(shí)間15 min、溫度33.5 ℃、料液比1∶48(g/mL)。醇提黃酮的最優(yōu)工藝條件為乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、提取時(shí)間135 min、溫度60 ℃、料液比1∶50(g/mL)。在此工藝條件下,預(yù)測(cè)的葛根素含量和黃酮含量最高提取值分別為638.67和3 136.78 μg/g??蓪?duì)此試驗(yàn)方案下所得最佳指標(biāo)的試驗(yàn)方案進(jìn)行驗(yàn)證。

      綜合考慮,在乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、提取時(shí)間135 min、溫度60 ℃、料液比1∶50(g/mL)條件下,分別進(jìn)行3組平行試驗(yàn),葛根素含量為590.21±21.44 μg/g,黃酮含量為3 089.72±45.36 μg/g。分別將葛根素和黃酮的平均值與最高含量預(yù)測(cè)值進(jìn)行比較,即此條件下所得葛根中葛根素含量為預(yù)測(cè)值的92.41%,黃酮含量為預(yù)測(cè)值的98.50%。在誤差允許的范圍內(nèi)驗(yàn)證成功。

      在水提法和醇提法2種最優(yōu)工藝條件下,水提物葛根素平均含量為809.42±11.32 μg/g,黃酮平均含量為3 849.08±23.43 μg/g,醇提物葛根素平均含量為590.21±21.44 μg/g,黃酮平均含量為3 089.72±45.36 μg/g。結(jié)果表明在最佳工藝條件下水提所得到的葛根素和黃酮含量都略高,但是差異不顯著。

      2.4 PAE及PEE對(duì)RAW264.7細(xì)胞的增殖作用影響

      由圖3(A)可知,與NG組比較,LPS組,100,200和400 μg/mL PAE對(duì)RAW264.7細(xì)胞的促進(jìn)作用具有顯著性差異,提示PAE對(duì)RAW264.7細(xì)胞的增殖均有一定促進(jìn)作用。由圖3(B)可知,與空白組比較,LPS組,200,400和800 μg/mL葛根水提物對(duì)RAW264.7細(xì)胞的促進(jìn)作用具有顯著性差異,PEE對(duì)RAW264.7細(xì)胞的增殖均有一定促進(jìn)作用。同時(shí),隨著濃度的增加,PAE和PEE對(duì)細(xì)胞的增殖作用都呈現(xiàn)先上升后降低趨勢(shì),但是兩者增殖作用的差別不顯著。PAE最佳濃度為200 μg/mL,PEE最佳濃度為400 μg/mL。

      圖3 PAE(A)和PEE(B)對(duì)巨噬細(xì)胞RAW264.7細(xì)胞活力的影響

      2.5 PAE和PEE對(duì)RAW264.7細(xì)胞中性紅吞噬作用影響

      由圖4可知,與NG組比較,陽(yáng)性組能極顯著增強(qiáng)RAW264.7細(xì)胞的吞噬能力,PAE濃度50和200 μg/mL,PEE濃度200 μg/mL時(shí)能極顯著增強(qiáng)RAW264.7細(xì)胞的吞噬能力,且隨著濃度的增加,對(duì)RAW264.7細(xì)胞吞噬能力的作用呈先上升后下降趨勢(shì)。低濃度時(shí),PAE大于PEE;高濃度時(shí),PAE小于PEE,但兩者吞噬作用的差別不顯著。結(jié)果表明PAE及PEE均能有效激活RAW264.7細(xì)胞發(fā)揮吞噬作用,而且兩者的差異不顯著。

      圖4 PAE和PEE對(duì)巨噬細(xì)胞RAW264.7吞噬作用的影響(平均值)

      3 結(jié)論

      由試驗(yàn)結(jié)果可知,水提法在最優(yōu)提取工藝下所得葛根素和黃酮含量都略高。由此可見(jiàn),不同提取方法下的葛根素得率存在一定差異,因此,實(shí)際生產(chǎn)過(guò)程中應(yīng)確定最佳提取方法,才能提高生產(chǎn)效率,避免原料、人工、資金等的浪費(fèi)。通過(guò)PAE和PEE刺激RAW264.7細(xì)胞發(fā)現(xiàn)兩者在促進(jìn)RAW264.7細(xì)胞的增殖和吞噬能力方面不存在顯著差異,但試驗(yàn)并未進(jìn)一步研究葛根提取物提高免疫的機(jī)制,后續(xù)試驗(yàn)可將細(xì)胞因子及相關(guān)通路中蛋白的表達(dá)作為檢測(cè)指標(biāo),深入探索葛根提取物通過(guò)調(diào)控具體通路及通路蛋白發(fā)揮免疫作用的機(jī)理。綜上,實(shí)際生產(chǎn)中可用PAE作為原料,開(kāi)發(fā)具有免疫調(diào)節(jié)功能的食品,以滿(mǎn)足市場(chǎng)需求,為功能食品工藝研究、質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn)的制定和開(kāi)發(fā)其免疫相關(guān)功能食品奠定理論基礎(chǔ)。

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