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    轉(zhuǎn)錄因子c-Jun對人血管平滑肌細胞中線粒體融合基因2表達調(diào)控作用的實驗研究

    2019-06-10 12:42:40羅興才王佐廣吳瓊辛毅劉潔琳劉雅魏永祥
    心肺血管病雜志 2019年5期
    關(guān)鍵詞:載體陰性調(diào)控

    李 笑 羅興才 王佐廣 吳瓊 辛毅 劉潔琳 劉雅 魏永祥

    增殖性心血管疾?。╬roliferative cardiovascular diseases,PCVDs)如動脈粥樣硬化、動脈損傷后再狹窄和高血壓等是導致全球人類死亡的主要原因之一,其特征是血管平滑肌細胞(vascular smooth muscle cells,VSMCs)遷移、增殖和細胞外基質(zhì)的合成[1]。 值得注意的是,VSMCs增殖在PCVDs中的作用尚未完全闡明[2]。因而,探討VSMCs的增殖機制并找出調(diào)節(jié)其增殖的關(guān)鍵物質(zhì),已成為防治高血壓、冠心病等各種PCVDs的重點[3]。

    2004年,陳光慧等發(fā)現(xiàn)的一種基因線粒體融合基因2(Mitofusin 2,Mfn2)在自發(fā)性高血壓大鼠(SHRs) 的VSMCs、 心臟、大腦中的表達顯著下調(diào)[4]。迄今為止,雖然Mfn2對VSMCs增殖的負向調(diào)控作用已明確,但Mfn2的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機制仍未完全闡明[4-5]。

    激活蛋白1(activator protein 1,AP1)是一種重要的核轉(zhuǎn)錄因子,以高度保守的二聚體堿性亮氨酸拉鏈(bZIP)DNA結(jié)合域為特征,是由Jun(v-Jun、c-Jun、JunB和JunD)、Fos(v-Fos、c-Fos、Fos b、Fra-1和Fra-2)、ATF(ATF2、ATF3/LRF1、B-ATF、JDP1和JDP2) 和MAF(c-Maf、MafB、MafA、MafG/F/K和Nrl)蛋白家族組成的同源或異源二聚體,其中典型的是由c-Jun與c-Fos組成的異源二聚體[6]。大量證據(jù)表明AP1經(jīng)過AKT1/AP1[7]、JNK和AP1[8]等多種信號通路參與了VSMCs的增殖。

    本研究的目的是探討轉(zhuǎn)錄因子c-Jun對人血管平滑肌細胞(hVSMCs)中Mfn2表達的調(diào)控作用,為Mfn2在EH、冠心病及其他PCVDs的表達下調(diào)提供線索并提供其潛在的治療靶點,同時為預防血管成形術(shù)后再狹窄和冠狀動脈旁路移植術(shù)后再狹窄提供參考。

    材料與方法

    1.siRNA、慢病毒載體與試劑 c-Jun siRNA及對照siRNA購自廣州市銳博生物科技有限公司,EntransterTM-R4000轉(zhuǎn)染試劑購自英格恩生物公司。c-Jun基因過表達慢病毒載體(GV358)和空載體、感染添加劑、感染增強溶液購自上海吉凱基因化學技術(shù)有限公司。

    2.細胞培養(yǎng)與處理 hVSMCs來源于正常人主動脈的中間層,購自上海信裕生物科技有限公司。將細胞置于常規(guī)培養(yǎng)皿內(nèi),以添加了10%胎牛血清(Gibco)、100 U/mL鏈霉素和100 mg/mL青霉素的DMEM(Thermo Scientific)為培養(yǎng)基,培養(yǎng)環(huán)境為37℃含5%CO2飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱,培養(yǎng)基隔天更換,3~4 d達到融合。

    3.siRNA轉(zhuǎn)染 提前24 h將hVSMCs以3×105個細胞/2 mL/孔的密度接種到6孔板中,然后轉(zhuǎn)染時即鋪板第二天細胞匯合度約為30%。依照轉(zhuǎn)染試劑EntransterTM-R4000說明進行siRNA轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染體系為每孔:2.412μg siRNA,3.6μL EntransterTM-R4000,轉(zhuǎn)染并繼續(xù)培養(yǎng)26 h后,分別提取細胞RNA、蛋白進行RT-PCR、Western blot分析結(jié)果。c-Jun siRNA靶序列為:5'-CAAACCTCAGCAACTTCAA-3'。

    圖1 慢病毒載體(GV358)及克隆位點圖譜(MCS為多克隆位點)

    4.慢病毒轉(zhuǎn)染 提前一天用完全培養(yǎng)基制備密度為3×104個/mL的hVSMCs細胞懸液,并將hVSMCs以3×104個細胞/2 mL/孔的密度接種到6孔板中。利用由上海吉凱基因技術(shù)有限公司構(gòu)建的攜帶c-Jun基因過表達慢病毒載體(GV358,圖1)的慢病毒轉(zhuǎn)染hVSMCs,轉(zhuǎn)染體系見表1。轉(zhuǎn)染10 h后,換回常規(guī)培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染約96 h,熒光表達豐度較高時,用顯微鏡觀察,然后分別提取細胞RNA、蛋白做進一步實驗(RT-PCR、Western blot)分析結(jié)果。

    表1 慢病毒轉(zhuǎn)染體系

    5.RT-PCR檢測細胞c-Jun和Mfn2的mRNA水平 根據(jù)Trizol試劑(Invitrogen)從hVSMCs中提取總RNA。按照cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Promega)將總RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。測定RNA濃度和純度后進行PCR擴增。引物用Primer-BLAST進行設(shè)計(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/),由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

    6.Western blot法檢測細胞c-Jun和Mfn2的蛋白水平用含有蛋白酶抑制劑混合物的RIPA裂解緩沖液(北京康為世紀生物科技有限公司)提取hVSMCs總蛋白。根據(jù)BCA蛋白檢測試劑盒(Thermo Scientific)測定蛋白濃度。用10% SDSPAGE凝膠將蛋白樣品電泳分離,然后轉(zhuǎn)移到PVDF膜(Millipore)上,用5% BSA封閉液室溫封閉1 h,分別對應加入一抗c-Jun(No.9165;Cell Signaling,1∶1 000),Mfn2(No.11925;Cell Signaling,1∶1 000),和GAPDH(No.GA003-R; 北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責任公司,1∶2 500),4℃搖床上孵育過夜。用TBST緩沖液(北京康為世紀生物科技有限公司)洗膜3次,10 min/次。用IRDye 680RD?山羊抗兔(No.926-68071;LI-COR,Inc.,1∶10 000)室溫孵育1 h。使用Odyssey紅外成像系統(tǒng)(基因公司)掃描和光密度分析。

    7.統(tǒng)計學方法 使用SPSS 20.0軟件進行統(tǒng)計分析。計量資料用均數(shù)±標準差表示。通過單因素方差分析(ANOVA)和LSD post hoc比較得出多重比較的P值。以P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。

    結(jié) 果

    1.Mfn2在轉(zhuǎn)錄因子c-Jun敲除hVSMCs中的表達情況 在光鏡下,siRNA干擾組hVSMCs數(shù)目較陰性siRNA對照組和正常對照組明顯增加(圖2 A)。此外,在熒光顯微鏡下觀察培養(yǎng)的hVSMCs中Cy3的表達,經(jīng)熒光標記的非靶向siRNA處理的hVSMCs中有大量的亮紅色熒光,表明其轉(zhuǎn)染效率較高。進一步用RT-PCR在培養(yǎng)的hVSMCs中檢測到Mfn2的表達(圖2B),siRNA干擾組(0.671±0.061)明顯低于陰性siRNA對照組(1.110±0.080,P<0.01)和正常對照組(1.000±0,P<0.01)。 此外,與陰性siRNA對照組(1.042±0.039,P<0.01)和正常對照組(1.000±0,P<0.01)相比,用Western blot檢測到siRNA干擾組(0.571±0.049)Mfn2蛋白水平(圖2C)顯著降低。

    2.過表達c-Jun后hVSMCs中Mfn2的表達情況 轉(zhuǎn)染慢病毒并繼續(xù)培養(yǎng)96 h后,用熒光顯微鏡察看培養(yǎng)的hVSMCs中EGFP的表達狀況。病毒組有大量亮綠色熒光(圖3 A),這表明轉(zhuǎn)染效率相對較高。進一步用RT-PCR檢測到慢病毒過表達組(1.414±0.063)在培養(yǎng)的hVSMCs中Mfn2 mRNA的表達(圖3B)明顯高于陰性病毒對照組(1.056±0.020,P<0.01)和正常對照組(1.000±0,P<0.01)。此外,與陰性病毒對照組(1.089±0.026,P<0.01)和正常對照組(1.000±0,P<0.01)相比,用Western blot檢測到慢病毒過表達組(1.449±0.044)Mfn2蛋白水平(圖3C)顯著升高。值得注意的是,慢病毒轉(zhuǎn)染96 h后,在光鏡下觀察到慢病毒過表達組的hVSMCs數(shù)量明顯低于陰性病毒對照組和正常對照組(圖3 A)。

    討 論

    在前期研究中,我們已經(jīng)報道了Mfn2的表達在高血壓患者的血管組織和VSMCs中明顯低于對照組,且在SHR VSMCs內(nèi)顯著低于WKY大鼠[9-11]。關(guān)于Mfn2基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機制方面,目前國內(nèi)、外已經(jīng)進行了一些研究,如Sorianello E等的研究報道轉(zhuǎn)錄因子特異性蛋白質(zhì)1(Sp1)是VSMCs中正向調(diào)控Mfn2表達的關(guān)鍵因子之一[12]。然而,他們僅部分闡明了Mfn2表達的調(diào)控機制,且轉(zhuǎn)錄因子在基因表達調(diào)控中發(fā)揮著十分重要的作用,因此研究除Sp1外的其他轉(zhuǎn)錄因子對Mfn2的調(diào)控非常重要。

    表2 所用引物序列、退火溫度及其擴增產(chǎn)物片段的大小

    圖2 siRNA敲減c-Jun抑制了培養(yǎng)的hVSMCs中Mfn2 mRNA和蛋白的表達 A:不同siRNA轉(zhuǎn)染26 h后,光鏡下hVSMCs的增殖情況;B:以GAPDH為對照的代表性RT-PCR及c-Jun和Mfn2的mRNA表達定量:Mfn2、c-Jun和GAPDH(n=3)。 與正常對照組相比,*P<0.05,**P<0.01;與陰性siRNA對照組相比,?P<0.05,??P<0.01;C:以GAPDH為對照的代表性蛋白質(zhì)印跡及c-Jun和Mfn2的蛋白表達定量:Mfn2、c-Jun和GAPDH(n=3)。與正常對照組相比,*P<0.05,**P<0.01;與陰性siRNA對照組相比,?P<0.05,??P<0.01

    圖3 過表達c-Jun促進了培養(yǎng)的hVSMCs中Mfn2 mRNA和蛋白的表達 A:用攜帶不同慢病毒載體的慢病毒處理培養(yǎng)的hVSMCs 96 h后,熒光顯微鏡下EGFP的表達和hVSMCs的增殖情況;B:未轉(zhuǎn)染或用攜帶過表達c-Jun基因慢病毒載體的慢病毒轉(zhuǎn)染培養(yǎng)的hVSMCs后,c-Jun對hVSMCs中Mfn2 mRNA表達的影響。以GAPDH為對照的代表性RT-PCR及c-Jun和Mfn2的mRNA表達定量:Mfn2、c-Jun和GAPDH(n=3)。 與正常對照組相比,*P<0.05,**P<0.01;與陰性對照病毒組相比,?P<0.05,??P<0.01;C:以GAPDH為對照的代表性蛋白質(zhì)印跡及c-Jun和Mfn2的蛋白表達定量:Mfn2、c-Jun和GAPDH(n=3)。與正常對照組相比,*P<0.05,**P<0.01;與陰性對照病毒組相比,?P<0.05,??P<0.01

    目前已證實人類c-Jun定位于1號染色體短臂32.1部位。轉(zhuǎn)錄因子c-Jun通過靶基因如EGFR和FAS等參與了廣泛的細胞進程,包括增殖、分化和凋亡[13]。許多研究已報道c-Jun通過轉(zhuǎn)錄調(diào)控調(diào)節(jié)涉及VSMCs增殖、遷移、ROS產(chǎn)生和胞外基質(zhì)降解的細胞過程的多種基因,在VSMCs增殖中起著重要作用[14-15]。由于已有大量研究表明Mfn2在增殖的VSMCs中 低 表 達[5],c-Jun也 與VSMCs增 殖 有關(guān)[14],因此,我們推測Mfn2可能是轉(zhuǎn)錄因子c-Jun的潛在靶基因之一,并且我們前期生物信息學分析發(fā)現(xiàn)Mfn2基因啟動子區(qū)存在著c-Jun結(jié)合位點。然而,目前尚未檢索到國、內(nèi)外對于c-Jun與Mfn2相關(guān)的報道。

    為了闡明c-Jun對Mfn2的調(diào)控作用,本研究首先采用了比較經(jīng)典可靠的RNA干擾實驗。發(fā)現(xiàn)用c-Jun siRNA處理培養(yǎng)的hVSMCs沉默靶基因c-Jun后(圖2),與陰性siRNA對照和正常對照組相比,siRNA干擾組Mfn2 mRNA和蛋白的表達均顯著降低,且差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),而hVSMCs的數(shù)量明顯增多,表明c-Jun siRNA在培養(yǎng)的hVSMCs中干擾成功,且能抑制Mfn2的表達并促進hVSMCs的增殖。

    本研究進一步應用慢病毒過表達載體將c-Jun基因轉(zhuǎn)入hVSMCs。研究結(jié)果顯示,當hVSMCs被攜帶c-Jun基因過表達慢病毒載體的慢病毒轉(zhuǎn)染后(圖3),慢病毒過表達組Mfn2 mRNA和蛋白的表達均顯著增多,且差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),而hVSMCs的數(shù)量明顯減少,提示過表達c-Jun可以促進Mfn2的表達從而抑制hVSMCs的增殖。結(jié)合RNA干擾實驗的結(jié)果,可以得知c-Jun在轉(zhuǎn)錄水平上能正向調(diào)控Mfn2的表達;而且在翻譯水平上,c-Jun與Mfn2的表達趨勢也一致。在調(diào)控機制方面,由于Mfn2基因啟動子區(qū)存在多個轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點,因此,c-Jun對Mfn2的調(diào)控機制也可能是通過與其啟動子區(qū)結(jié)合實現(xiàn)的。此外,本研究表明hVSMCs的增殖隨Mfn2基因表達的變化而出現(xiàn)相應的變化,這與以前的研究結(jié)果即Mfn2可以負向調(diào)控VSMCs的增殖一致[9-10]。

    關(guān)于Mfn2調(diào)控VSMCs增殖方面,已有研究報道Mfn2通過抑制ras-raf-MEK/MAPK信號通路的表達進而抑制VSMCs增殖[4],值得注意的是,c-Jun在VSMCs增殖中的作用也與ras-raf-MEK/MAPK信號通路有關(guān)[16],因而,c-Jun在VSMCs增殖中的調(diào)控作用可能是通過Mfn2基因與此信號通路關(guān)聯(lián)的,具體機制仍需進一步研究驗證。

    綜上所述,本研究首次證明c-Jun在培養(yǎng)的hVSMCs中調(diào)控Mfn2的表達。下調(diào)c-Jun的表達可以導致培養(yǎng)的hVSMCs中Mfn2 mRNA和蛋白的表達均顯著降低;而上調(diào)c-Jun的表達可引起培養(yǎng)的hVSMCs中Mfn2 mRNA和蛋白的表達顯著增加,并影響hVSMCs增殖。因此,c-Jun可能是一種新的調(diào)節(jié)Mfn2表達的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子,這為Mfn2在EH和其他PCVDs增殖的hVSMCs中低表達的進一步研究提供了參考。

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