武彬,丁雨溪,王靜,夏建平,馬立威,張勁松
(愛爾卓越眼科醫(yī)院眼科,沈陽 110003)
隨著人口老齡化的日益嚴(yán)重,白內(nèi)障的發(fā)生率逐年遞增,已經(jīng)成為影響老年人健康的嚴(yán)重問題[1]。白內(nèi)障的發(fā)生、發(fā)展機(jī)制復(fù)雜,與多種生理進(jìn)程密切相關(guān),還與周圍環(huán)境暴露和表觀遺傳有關(guān)[1]。微RNA(microRNA,miRNA)對(duì)基因表達(dá)的調(diào)控是一種表觀遺傳調(diào)控機(jī)制。miRNA是短片段的非編碼RNA序列,長(zhǎng)度約為20~22個(gè)堿基序列。研究[2]報(bào)道,晶狀體和白內(nèi)障晶狀體樣本的中央上皮的miRNA表達(dá)譜不同,表明不同表達(dá)的miRNA可能在晶狀體發(fā)育和白內(nèi)障發(fā)生中發(fā)揮作用。
miR-146a-5p是miR-146家族的成員,miR-146a是最新研究熱點(diǎn)之一,在多個(gè)物種中高度保守,人miR-146a位于5號(hào)染色體LOC285628基因的第2個(gè)外顯子上[3]。miR-146a-5p主要參與調(diào)控細(xì)胞的增殖、凋亡、分化和細(xì)胞發(fā)育[4-6]。胃癌、肺癌和前列腺癌中,miR-146a-5p水平低于癌旁組織。miR-146-5p可以調(diào)控食管鱗狀細(xì)胞上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化,通過直接與Notch2的3’非翻譯區(qū)(3’-untranslated region,3’-UTR)靶向結(jié)合,抑制Notch2的表達(dá),從而發(fā)揮作用[7]。然而,關(guān)于miR-146a-5p在年齡相關(guān)性白內(nèi)障中作用的研究很少。本研究探討了miR-146a-5p對(duì)人晶狀體上皮細(xì)胞(human lens epithelial cell,HLEC)凋亡的調(diào)控作用,采用實(shí)時(shí)定量PCR(real-time quantitative PCR,qRT-PCR)檢測(cè)白內(nèi)障患者晶狀體上皮組織中miR-146a-5p的表達(dá),確定miR-146a-5p為潛在的疾病生物標(biāo)志物;建立體外細(xì)胞模型,通過過表達(dá)miR-146a-5p,探討其對(duì)細(xì)胞凋亡的影響以及線粒體相關(guān)蛋白的變化;并進(jìn)一步驗(yàn)證miR-146a-5p對(duì)Notch2 3’-UTR的靶向調(diào)控作用,以及miR-146a-5p對(duì)Notch2下游蛋白表達(dá)的影響。
采集2018年12月至2020年10月間我院收治的白內(nèi)障患者的晶狀體上皮樣本,通過完整的連續(xù)環(huán)形撕囊術(shù)獲得晶狀體上皮。所有患者均接受完整的術(shù)前眼科檢查,除年齡相關(guān)性白內(nèi)障外無其他眼部疾病。根據(jù)晶狀體混濁分級(jí)系統(tǒng)Ⅲ的修訂版本,對(duì)白內(nèi)障的類型和嚴(yán)重程度進(jìn)行分級(jí)和記錄。選擇CN 4~6分、C 4~5分和P 4~5分(C,皮質(zhì)性混濁;N,晶狀體核混濁;P,后囊下性混濁)的15例患者晶狀體為白內(nèi)障組,患者年齡60~70歲,其中男8例,女7例。收集我院眼科眼庫新鮮人眼晶狀體上皮樣本15例為對(duì)照組,患者年齡55~65歲,其中男9例,女6例。本研究通過我院倫理委員會(huì)的批準(zhǔn),所有患者均簽署知情同意書。
采用qRT-PCR檢測(cè)組織或細(xì)胞中miR-146a-5p的表達(dá)水平。應(yīng)用miRNeasy試劑盒(德國QIAGEN公司)從總RNA中分離miRNA,并應(yīng)用1 μg RNA和Prime Script RT試劑盒(日本TaKaRa公司)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,以U6為內(nèi)參。使用SYBR Premix Ex Taq(日本TaKaRa公司)對(duì)特定產(chǎn)物進(jìn)行3次擴(kuò)增和檢測(cè),并對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性反應(yīng) 15 min,94℃變性反應(yīng) 15 s,55 ℃退火反應(yīng) 30 s,70 ℃延伸反應(yīng)30 s,40 個(gè)循環(huán)反應(yīng)。
采用qRT-PCR檢測(cè)NDUFS8、SDHb、COX5b、ATP5a1mRNA的表達(dá)水平,以β-actin為內(nèi)參,TRIzol法提取RNA后,反轉(zhuǎn)錄為cDNA。PCR反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性3 min,95 ℃變性反應(yīng) 5 s,56 ℃退火反應(yīng)30 s,72 ℃延伸反應(yīng) 30 s,40 個(gè)循環(huán)反應(yīng)。應(yīng)用2-ΔΔCt法計(jì)算各組間mRNA的相對(duì)表達(dá)水平。
HLEC細(xì)胞系SRA01/04購自美國ATCC公司。在含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。將miR-146a-5p mimics和miR-146a-5p NC(中國上海生工股份有限公司)轉(zhuǎn)染到細(xì)胞中,采用Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑進(jìn)行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染24 h后采用qRT-PCR檢測(cè)miR-146a-5p水平。
采用Annexin V-FITC/PI凋亡檢測(cè)試劑盒(美國eBioscience公司),將轉(zhuǎn)染miR-146a-5p mimics和miR-146a-5p NC的細(xì)胞在轉(zhuǎn)染后48 h進(jìn)行細(xì)胞凋亡檢測(cè)。按照試劑盒說明書,將轉(zhuǎn)染48 h后的SRA01/04細(xì)胞1 000g離心10 min,用預(yù)冷的PBS清洗,并重新懸浮在250 μL結(jié)合緩沖液中。將細(xì)胞與Annexin V-FITC和PI在室溫下黑暗中孵育15 min,隨后用流式細(xì)胞儀(美國BD 公司)進(jìn)行分析。采用ImageJ軟件分析細(xì)胞凋亡情況。
將消化后的SRA01/04細(xì)胞在放射免疫沉淀法裂解緩沖液中4 ℃裂解30 min。使用線粒體分離試劑盒(美國賽默飛公司)分離線粒體,蛋白定量、蛋白變性后,取30 μg蛋白在10%SDS-PAGE中分離,然后轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,4 ℃下與caspase 9、caspase 12、細(xì)胞色素c(cytochrome c,Cyt c)、Notch2、Hey1、GAPDH抗體孵育過夜;與HRP標(biāo)記的二抗結(jié)合后,采用ECL Plus化學(xué)發(fā)光試劑盒(美國GE醫(yī)療公司)檢測(cè),采用ImageJ軟件進(jìn)行灰度值分析。
將轉(zhuǎn)染miR-146a-5p mimics和miR-146a-5pNC的胞,使用2’,7’-二氯二氫熒光素-二乙酸酯(DCFH-DA,美國Sigma公司)對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生的ROS進(jìn)行定量。細(xì)胞與10.0 μmol/L DCFH-DA在37 ℃下孵化30 min。采用熒光電鏡觀察細(xì)胞內(nèi)熒光強(qiáng)度變化,拍照后,采用ImageJ軟件計(jì)算ROS水平。
采用TargetScan生物信息學(xué)網(wǎng)站(https://www.targetscan.org/vert_42/)預(yù) 測(cè)miR-146a-5p 靶 點(diǎn)。采用雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)進(jìn)行驗(yàn)證,用含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)HEK293T細(xì)胞。將Notch2mRNA的野生型3’-UTR片段以及含有預(yù)測(cè)miR-146a-5p結(jié)合序列或無預(yù)測(cè)序列的miR-NC結(jié)合序列的構(gòu)建體克隆到psiCHECK2熒光素酶報(bào)告載體中(美國Promega公司),分別為Notch2 3’-UTR WT+miR-146a-5p組 和Notch2 3’-UTR WT+miR-NC組。攜帶Notch2mRNA的3’-UTR突變片段以及結(jié)合序列的miR-NC也被克隆到psiCHECK2熒光素酶報(bào)告載體中,分別為Notch2 3’-UTR MUT+miR-146a-5p組 和Notch2 3’-UTR MUT+miR-NC組。將HEK293T細(xì)胞接種在24孔板中,用FuGENE 6(美國Promega公司)與10 μmol/L miR-146a-5p或miR-NC和2.5 μg psiCHECK2載體共同轉(zhuǎn)染,該載體含有Notch2 3’-UTR的突變或野生預(yù)測(cè)片段。擴(kuò)增子被插入到熒光素酶報(bào)告基因的cDNA下游載體中。轉(zhuǎn)染48 h后,使用雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)(美國Promega公司),自動(dòng)微孔板測(cè)定儀測(cè)量相對(duì)熒光素酶表達(dá),并計(jì)算活性值。
與對(duì)照組相比,白內(nèi)障組miR-146a-5p表達(dá)明顯上調(diào)(P< 0.05),見圖1。
圖1 qRT-PCR檢測(cè)白內(nèi)障組和對(duì)照組晶狀體上皮中miR-146a-5p的表達(dá)Fig.1 Expression of miR-146a-5p in lens epithelial samples of cataract patients and control subjects detected by qRT-PCR
qRT-PCR結(jié)果(圖2A)顯示,miR-146a-5p mimics轉(zhuǎn)染SRA01/04細(xì)胞后,miR-145a-5p處于過表達(dá)狀態(tài)。Annexin V和PI雙染色結(jié)果(圖2B)顯示,miR-146a-5p過表達(dá)增加了SRA01/04細(xì)胞的早期和晚期凋亡水平。檢測(cè)轉(zhuǎn)染后細(xì)胞中caspase 9和caspase 12表達(dá)的變化,結(jié)果(圖2C)顯示,與miR-146a-5p NC組相比,miR-146a-5p mimics組細(xì)胞中caspase 9表達(dá)水平顯著增高(P< 0.05),但caspase 12表達(dá)變化的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P> 0.05)。上述結(jié)果表明,線粒體功能紊亂是miR-146a-5p調(diào)控的第一步,通過caspase 9的激活引發(fā)miR-146a-5p誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。
圖2 miR-146a-5p模擬物促進(jìn)SRA01/04細(xì)胞凋亡Fig.2 miR-146a-5p mimics promotes apoptosis in lens epithelial SRA01/04 cells
miR-146a-5p mimics轉(zhuǎn)染SRA01/04細(xì)胞后,MMP-2和MMP-9表達(dá)均下調(diào)(圖3A),表明miR-146a-5p mimics引發(fā)MMP蛋白破壞。進(jìn)一步分離各組細(xì)胞中的線粒體和細(xì)胞質(zhì),Western blotting結(jié)果(圖3B)顯示,miR-146a-5p過表達(dá)導(dǎo)致Cyt c從線粒體轉(zhuǎn)移到細(xì)胞質(zhì)。miR-146a-5p NC或miR-146a-5p mimics轉(zhuǎn)染SRA01/04細(xì)胞48 h后,qRT-PCR結(jié)果(圖3C)顯示,與miR-146a-5p NC組相比,miR-146a-5p mimics組細(xì)胞中NDUFS8、COX5b和ATP5a1mRNA的表達(dá)水平顯著下調(diào)(P<0.05),表明線粒體電子運(yùn)輸鏈被增強(qiáng)的miR-146a-5p表達(dá)阻斷。同時(shí)免疫熒光結(jié)果(圖3D)顯示,與miR-146a-5p NC組相比,miR-146a-5p mimics組細(xì)胞中ROS水平下降。結(jié)果證實(shí),miR-146a-5p過表達(dá)可能促進(jìn)HLEC中ROS的釋放,激活氧化應(yīng)激反應(yīng)。
圖3 miR-146a-5p通過誘導(dǎo)線粒體功能紊亂促進(jìn)SRA01/04細(xì)胞凋亡Fig.3 miR-146a-5p promotes the apoptosis of SRA01/04 cells by inducing mitochondrial dysfunction
TargetScan網(wǎng)站預(yù)測(cè)分析結(jié)果(圖 4A)顯示,Notch2 3’-UTR 中部分核苷酸序列能與 miR-146a-5p特異性互補(bǔ)配對(duì)。雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)(圖4B)發(fā)現(xiàn),與miR-146a-5p NC組相比,miR-146a-5p mimics組Notch2 3’-UTR WT載體的熒光素酶相對(duì)活性顯著降低(P< 0.05),而Notch2 3’-UTR MUT 熒光素酶相對(duì)活性無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P> 0.05),結(jié)果表明,miR-146a-5p NC不影響突變體構(gòu)建中的熒光素酶活性。Western blotting結(jié)果(圖4C)證實(shí),與miR-146a-5p NC組相比,miR-146a-5p mimics組Notch2的表達(dá)明顯下調(diào)(P< 0.05)。
圖4 miR -146a-5p靶向結(jié)合Notch2的3’-UTR并下調(diào)Notch2的表達(dá)Fig.4 miR-146a-5p specifically targets the 3’-UTR of Notch2 and reduces its expression
與miR-146a-5p NC組相比,miR-146a-5p mimics組SRA01/04細(xì)胞中Hey1蛋白表達(dá)明顯下調(diào)(P< 0.05)。見圖5。
圖5 Western blotting檢測(cè)Hey1蛋白的表達(dá)水平Fig.5 Expression of Hey1 protein detected by Western blotting
白內(nèi)障是致盲的主要原因之一,與衰老過程密切相關(guān)。近期有研究報(bào)道,miR-146a-5p過表達(dá)能夠激活前列腺癌[4]和非小細(xì)胞肺癌[3]細(xì)胞凋亡,并引發(fā)細(xì)胞周期阻滯。同時(shí),miR-146a-5p通過靶向調(diào)控Notch2的水平,影響心肌缺血再灌注大鼠的心肌損傷[8]。此外,miR-146a在多種細(xì)胞和組織中調(diào)控慢性炎癥反應(yīng)[9],而慢性炎癥可誘發(fā)機(jī)體的氧化損傷、DNA損傷和干細(xì)胞衰老,這些均與加速衰老密切相關(guān)[10]?;谏鲜鲅芯繄?bào)道,本研究通過qRT-PCR發(fā)現(xiàn),miR-146a在年齡相關(guān)性白內(nèi)障晶狀體上皮中表達(dá)上調(diào)。
大量研究[11]證實(shí),多種因素與白內(nèi)障的發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān),包括糖尿病、紫外線過量照射、不良藥物使用和其他眼部疾病等。上述疾病因素中,氧化應(yīng)激和由氧化應(yīng)激產(chǎn)生的ROS被認(rèn)為是白內(nèi)障的主要易感因素。LI等[12]的研究表明,晶狀體上皮細(xì)胞凋亡是哺乳動(dòng)物非先天性白內(nèi)障發(fā)生的特性表型。因此,本研究檢測(cè)miR-146a-5p過表達(dá)的HLEC中的凋亡生物標(biāo)志物和細(xì)胞功能,結(jié)果表明,miR-146a-5p通過線粒體功能障礙激活HLEC凋亡,包括阻斷電子傳遞、形成ROS,進(jìn)一步將Cyt c釋放到細(xì)胞質(zhì)中,并觸發(fā)caspase 9激活。
為了鑒定miR-146a-5p的靶基因,本研究采用TargetScan靶預(yù)測(cè)工具,預(yù)測(cè)Notch2是miR-146a-5p的靶基因,并通過熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證了miR-146a-5p與Notch2的3’-UTR特異性結(jié)合,同時(shí)Western blotting結(jié)果證實(shí)miR-146a-5p與Notch2的表達(dá)呈負(fù)相關(guān)。1991年和1997年,WEINMASTER等[13]證實(shí)Notch受體分別在果蠅和發(fā)育中的大鼠眼睛中表達(dá)。對(duì)出生后大鼠晶狀體上皮細(xì)胞分化進(jìn)行的體外研究結(jié)果表明,在成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子依賴的次級(jí)纖維細(xì)胞分化過程中,Notch2信號(hào)被激活,但未檢測(cè)到相應(yīng)的Notch1激活。Notch2條件突變小鼠表現(xiàn)出嚴(yán)重的小眼畸形、纖維細(xì)胞形態(tài)破壞和白內(nèi)障表型[14]。由此可見,Notch2突變和表達(dá)下調(diào)是白內(nèi)障產(chǎn)生的主要原因之一。Hey1是Notch信號(hào)通路下游重要的調(diào)控蛋白,與胚胎血管形成有關(guān)[15]。本研究除發(fā)現(xiàn)miR-146a-5p抑制Notch2表達(dá)外,還發(fā)現(xiàn)Notch2下游的重要調(diào)控蛋白Hey1明顯下調(diào),進(jìn)一步證實(shí)miR-146a-5p對(duì)Notch2信號(hào)通路的抑制作用。
綜上所述,miR-146a-5p在白內(nèi)障患者晶狀體上皮組織中表達(dá)上調(diào),其過表達(dá)能夠促進(jìn)HLEC凋亡,其作用機(jī)制與影響線粒體穩(wěn)態(tài)和下調(diào)Notch2信號(hào)通路密切相關(guān)。