谷營營,侯 甜,秦雅芝,張 妍,溫國琛,畢文娟,董 偉
糖尿病性骨質(zhì)疏松癥(diabetic osteoporosis,DOP)是糖尿病常見并發(fā)癥,其發(fā)病因素包括成骨細胞功能降低[1]和糖基化終末產(chǎn)物積累[2],目前臨床上主要通過降糖藥配合抗骨質(zhì)疏松藥進行治療,尚無更具有針對性的治療藥物,臨床治療效果仍待提高。Wnt信號通路是多種骨質(zhì)疏松癥發(fā)生發(fā)展的重要通路,通過影響骨穩(wěn)態(tài)平衡調(diào)控骨質(zhì)疏松的發(fā)生[3]。研究[4]表明,Wnt/β-catenin信號通路可通過調(diào)節(jié)細胞胞質(zhì)內(nèi)β-catenin表達量影響成骨細胞増殖分化。高糖狀態(tài)下Wnt/β-catenin通路表達異常后會干預成骨細胞分化,影響DOP的骨形成及代謝[5]。
特立帕肽(teriparatide,TPTD)與甲狀旁腺激素[PTH(1-84)]的前34個氨基酸分子相同,是一種用于治療重度骨質(zhì)疏松癥的促骨形成類首選藥物,能夠促進骨形成,提高骨量[6]。臨床上,TPTD多用于絕經(jīng)后重度骨質(zhì)疏松癥及伴發(fā)骨折的治療,治療效果理想[7],但尚未發(fā)現(xiàn)其影響DOP的分子學及臨床實驗研究。該實驗通過誘導MC3T3-E1細胞在高糖條件下成骨分化,同時加入TPTD及Wnt3a抑制劑,觀察TPTD對高糖環(huán)境下成骨細胞分化的影響及Wnt3a/β-catenin通路在其中的調(diào)控作用,以期為臨床上TPTD成為DOP的潛在治療藥物提供細胞學理論研究基礎。
1.1 細胞小鼠MC3T3-E1細胞,為成骨細胞前體細胞,可誘導分化為成骨細胞(中科院上海細胞庫)。
1.2 實驗方法
1.2.1細胞培養(yǎng)和實驗分組 實驗分為5組:低糖組(5.5 mmol/L葡萄糖)、低糖+TPTD組(5.5 mmol/L葡萄糖+10 nmol/L TPTD)、高糖組(16.5 mmol/L葡萄糖)、高糖+TPTD組(16.5 mmol/L葡萄糖+10 nmol/L TPTD)、高糖+TPTD+G244-LM組(16.5 mmol/L葡萄糖+10 nmol/L TPTD+0.1 μmol/L G244-LM)。MC3T3-E1細胞培養(yǎng)至含15%胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基中,在細胞接種且貼壁后,更換為含有成骨誘導液(10 nmol/L地塞米松溶液+50 μmol/L抗壞血酸溶液+10 mmol/Lβ-甘油磷酸鈉溶液)的新鮮培養(yǎng)基,并按照分組加入TPTD溶液及Wnt3a抑制劑G244-LM。
1.2.2細胞增殖實驗 5組細胞于96孔板中培養(yǎng)24、48、72 h后,加入CCK-8溶液,37 ℃恒溫培養(yǎng)4 h后,測定490 nm處的吸光度值,并按照數(shù)據(jù)繪制5組細胞的生長曲線圖。5組細胞培養(yǎng)3d后,PBS沖洗3次,加入鈣黃綠素乙酰氧基甲酯(calcein acetoxymethyl ester,Calcein-AM)染色工作液,室溫避光孵育20 min,熒光顯微鏡觀察細胞染色情況并進行細胞計數(shù)。
1.2.3成骨分化檢測 5組細胞培養(yǎng)7 d后,4%多聚甲醛溶液室溫固定15 min,NBT/BCIP堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)試劑避光染色30 min,PBS沖洗3次,觀察各組細胞ALP染色情況。ALP試劑盒檢測各組細胞蛋白活性,酶標儀讀取各組數(shù)據(jù)。5組細胞培養(yǎng)21 d后,每孔加入4%多聚甲醛溶液于室溫固定15 min,1%茜素紅s染色20 min,PBS洗滌3次后觀察鈣化沉積情況。使用Image J軟件分析茜素紅陽性面積占總面積百分比。
1.2.4免疫熒光分析 5組細胞培養(yǎng)5 d后,4%多聚甲醛固定15 min,0.5% Triton X-100溶液透化細胞15 min,室溫下加入FITC-phalloidin孵育3 h后,用5 μg/ml DAPI室溫孵育5 min后,觀察各組細胞肌動蛋白形成情況。
1.2.5實時熒光定量PCR分析 將各組細胞總RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,SYBR?Green Realtime PCR Master Mix進行Real-time PCR,PCR產(chǎn)物用StepOnePlus實時PCR系統(tǒng)(美國賽默飛世爾科技公司)檢測。選用GAPDH作為內(nèi)參基因。反應程序:95 ℃、1 min,95 ℃、15 s,60 ℃、15 s,72 ℃、45 s,共40個循環(huán)。以2-ΔΔCT法分析測定基因表達水平,引物序列見表1。
表1 實時定量PCR目的基因引物序列
2.1 TPTD對高糖條件下MC3T3-E1細胞增殖活性的影響應用CCK-8法測定5組細胞培養(yǎng)24、48、72 h后各組細胞增殖情況。結(jié)果顯示,各組細胞增殖活性結(jié)果差異無統(tǒng)計學意義(F=0.985,P>0.05)。見圖1、表2。提示TPTD對高糖環(huán)境下各組細胞增殖活性無影響。
圖1 CCK-8實驗檢測細胞培養(yǎng)24、48、72 h后各組細胞的生長增殖曲線
表2 CCK-8檢測高糖環(huán)境下MC3T3-E1細胞增殖活性
5組細胞培養(yǎng)3 d后,進行Calcein-AM染色觀察細胞增殖趨勢。各組細胞計數(shù)結(jié)果分別為:低糖組(437.43±37.19)個,低糖+TPTD組(494.13±66.04)個,高糖組(401.20±44.42)個,高糖+TPTD組(409.90±79.08)個,高糖+TPTD+G244-LM組(342.06±53.42)個。各組細胞計數(shù)結(jié)果差異無統(tǒng)計學意義(F=2.742,P>0.05)。見圖2。提示各組細胞增殖趨勢無明顯差異。
圖2 各組細胞培養(yǎng)3 d后Calcein-AM染色觀察細胞增殖 Calcein-AM染色 ×40 A:低糖組;B:低糖+TPTD組;C:高糖組;D:高糖+TPTD組;E:高糖+TPTD+G244-LM組
2.2 TPTD對高糖條件下成骨細胞分化的影響5組細胞培養(yǎng)7 d后,進行ALP染色及蛋白活性檢測。ALP染色結(jié)果顯示:各組細胞都存在不同程度的成骨分化現(xiàn)象,其中,低糖+TPTD組細胞染色區(qū)域高于其他四組,細胞分化狀態(tài)較好(P<0.05);高糖組細胞分化較少,明顯低于高糖+TPTD組和低糖組細胞的分化結(jié)果(P<0.05);高糖+TPTD組染色區(qū)域高于高糖組和高糖+TPTD+G244-LM組(P<0.05),見圖3。蛋白定量檢測結(jié)果(U/g)為:低糖組(0.508±0.006),低糖+TPTD組(0.767±0.026),高糖組(0.382±0.019),高糖+TPTD組(0.449±0.022),高糖+TPTD+G244-LM組(0.213±0.008)(F=449.804,P<0.05)。結(jié)果提示高糖抑制成骨細胞ALP分化及蛋白活性,TPTD促進成骨細胞ALP分化及蛋白活性;高糖+TPTD組加入Wnt3a抑制劑后,成骨細胞分化量減少,蛋白活性降低。
圖3 各組細胞培養(yǎng)7 d后ALP染色后觀察A:低糖組;B:低糖+TPTD組;C:高糖組;D:高糖+TPTD組;E:高糖+TPTD+G244-LM組;1:×40;2:×100
5組細胞培養(yǎng)21 d后,進行茜素紅s染色。結(jié)果顯示,低糖組(16.82%±0.98%)、低糖+TPTD組(32.40%±1.09%)、高糖組(11.79%±1.28%)、高糖+TPTD組(19.26%±0.78%)、高糖+TPTD+G244-LM組(7.51%±1.15%)各組細胞染色陽性區(qū)域比組間差異有統(tǒng)計學意義(F=235.692,P<0.05)。見圖4。低糖+TPTD組細胞染色陽性區(qū)域比最高(P<0.05);高糖組細胞染色陽性區(qū)域比低于低糖組(P<0.05),高糖+TPTD組細胞染色陽性區(qū)域比高于高糖+TPTD+G244-LM組(P<0.05)。以上結(jié)果表明:高糖抑制成骨細胞分化;TPTD的加入促進成骨細胞分化;在高糖+TPTD組加入Wnt3a抑制劑后,成骨細胞分化水平降低。
圖4 細胞培養(yǎng)21 d后進行茜素紅s染色結(jié)果A:低糖組;B:低糖+TPTD組;C:高糖組;D:高糖+TPTD組;E:高糖+TPTD+G244-LM組;1:×40;2:×100
2.3 TPTD對高糖條件下成骨細胞肌動蛋白的影響5組細胞培養(yǎng)5 d后,免疫熒光染色結(jié)果顯示,低糖+TPTD組細胞骨架最清晰;高糖組和高糖+TPTD+G244-LM組細胞骨架清晰程度均低于高糖+TPTD組。見圖5。結(jié)果表明,高糖降低MC3T3-E1細胞細胞骨架清晰程度;TPTD的加入提高了細胞骨架清晰程度;Wnt3a抑制劑明顯降低高糖+TPTD組細胞骨架清晰程度。
圖5 5組細胞細胞骨架FITC-phalloidin染色及細胞核DAPI染色觀察 ×400A:低糖組;B:低糖+TPTD組;C:高糖組;D:高糖+TPTD組;E:高糖+TPTD+G244-LM組
2.4 TPTD對高糖條件下成骨相關(guān)基因mRNA表達的影響5組細胞進行Real-time PCR檢測結(jié)果顯示:低糖+TPTD組細胞Wnt3a、β-catenin、Tcf1、OPG、COLⅠ mRNA水平最高;低糖組各基因mRNA水平均高于高糖組;高糖+TPTD組細胞各基因mRNA水平均高于高糖組和高糖+TPTD+G244-LM組。見圖6。結(jié)果表明,高糖抑制成骨細胞Wnt3a、β-catenin、Tcf1、OPG、COLⅠ mRNA表達;加入TPTD后促進成骨細胞上述各基因mRNA表達;加入Wnt3a抑制劑后各基因mRNA表達均降低。
圖6 5組細胞進行Real-time PCR分析結(jié)果A:低糖組;B:低糖+TPTD組;C:高糖組;D:高糖+TPTD組;E:高糖+TPTD+G244-LM組;與低糖組比較:*P<0.05;與高糖組比較:&P<0.05;與高糖+TPTD組比較:#P<0.05
該研究表明高糖抑制成骨細胞分化,同時抑制Wnt/β-catenin通路相關(guān)基因Wnt3a、β-catenin、Tcf1、OPG、COLⅠ mRNA表達;TPTD可促進高糖環(huán)境下成骨細胞分化,提高上述各基因mRNA表達。
有研究[8]通過檢測糖尿病模型中細胞焦亡相關(guān)因子的表達,表明高血糖可通過細胞焦亡途徑抑制成骨細胞的增殖和分化;同時研究ME3T3-E1細胞顯示,高血糖可通過Caspase-1/GSDMD/IL-1β途徑抑制成骨細胞增殖分化。Wu et al[9]在糖尿病小鼠模型中發(fā)現(xiàn),高血糖小鼠體內(nèi)成骨分化相關(guān)基因ALP和Runx2蛋白的表達明顯降低,成骨分化受到抑制。研究[10]表明,高糖抑制MC3T3-E1細胞向成骨分化,抑制成骨標志物Runx2、COL Ⅰ表達。但目前高糖抑制成骨細胞分化的具體分子機制尚在研究。該實驗通過高糖培養(yǎng)基與低糖培養(yǎng)基分別培養(yǎng)成骨細胞前體MC3T3-E1細胞,觀察在高糖水平下成骨細胞增殖活性及分化礦化水平是否受到影響,結(jié)果顯示,高糖水平下各組細胞增殖活性不具有統(tǒng)計學差異,但高糖會降低成骨細胞分化及礦化結(jié)節(jié)形成水平。Wnt/β-catenin通路在成骨微環(huán)境中起重要作用[11],Wnt3a是Wnt/β-catenin通路的重要組成部分,通過調(diào)控β-catenin的表達量參與多項成骨分化相關(guān)研究。Deshmukh et al[12]研究表明,Wnt3a可通過調(diào)控其下游β-catenin因子影響Wnt3a/β-catenin通路下游靶基因,參與間充質(zhì)細胞向成骨細胞和軟骨細胞分化的平衡。Feng et al[13]研究發(fā)現(xiàn),胰島素生長因子-1(IGF-1)可通過Wnt/β-catenin途徑,經(jīng)Wnt3a、β-catenin、cyclinD1、Runx2、OPN等因子促進骨髓間充質(zhì)干細胞增殖及骨質(zhì)發(fā)生分化。那么,Wnt3a是否可以通過干預β-catenin表達量在高糖環(huán)境下對成骨細胞發(fā)揮作用尚未可知。該實驗通過加入Wnt3a抑制劑,探究了其是否參與了高糖環(huán)境下成骨細胞分化作用,結(jié)果顯示抑制Wnt3a表達后,β-catenin及其下游Tcf1表達量隨之降低,成骨分化相關(guān)基因OPG及COLⅠ表達亦受到抑制,說明Wnt3a/β-catenin通路參與了高糖環(huán)境下成骨細胞分化過程。
研究[14]表明,PTH(1-84)可以通過與Wnt配體共用一個受體β-catenin信號發(fā)揮作用。小鼠體內(nèi)PTH(1-84)受體過表達,會導致Wnt/β-catenin通路下游基因表達增加,促進成骨細胞增殖,減少其凋亡[15];但TPTD作為治療骨質(zhì)疏松癥的PTH(1-34)的重組骨代謝藥物,能否通過Wnt/β-catenin通路參與MC3T3-E1細胞成骨分化過程尚未有明確報道。該實驗通過在高糖環(huán)境下加入藥物TPTD及Wnt3a抑制劑進行干預,觀察MC3T3-E1細胞成骨分化及細胞骨架情況。ALP染色及蛋白活性定量、茜素紅s染色和免疫熒光實驗結(jié)果顯示,高糖+TPTD組細胞成骨分化水平及細胞骨架清晰度優(yōu)于高糖組及高糖+TPTD+Wnt3a抑制劑組;Real-time PCR結(jié)果顯示高糖+TPTD組細胞Wnt3a、β-catenin、Tcf1、OPG、COLⅠ 各基因mRNA表達量高于高糖組和高糖+TPTD+Wnt3a抑制劑組,提示TPTD可通過Wnt3a/β-catenin通路調(diào)控成骨細胞分化。
綜上所述,該研究表明,高糖降低成骨細胞分化水平及細胞骨架清晰程度,抑制Wnt3a及其下游β-catenin、Tcf1、OPG及COLⅠ表達;TPTD可通過調(diào)控Wnt3a/β-catenin信號通路促進高糖環(huán)境下MC3T3-E1細胞成骨分化,提高細胞骨架清晰程度,提高上述通路相關(guān)基因表達。該研究為臨床上TPTD成為DOP潛在治療藥物提供了理論基礎,并說明Wnt3a/β-catenin信號通路有潛力成為治療DOP的新靶點。