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    龍陵紫皮石斛多糖的硒化修飾及其抗氧化活性

    2022-10-29 06:07:22李曉嬌閔詩碧曹凱紅段紹麗楊麗華
    食品研究與開發(fā) 2022年20期
    關鍵詞:冰乙酸紫皮純水

    李曉嬌,閔詩碧,曹凱紅,段紹麗,楊麗華

    (保山學院資源環(huán)境學院,云南 保山 678000)

    紫皮石斛(Dendrobium devonianum Paxt.)又名齒瓣石斛、紫皮蘭[1],具有益胃生津、潤肺止咳、滋陰清熱等功效[2]。云南龍陵是紫皮石斛的主要產(chǎn)地[3],已成功申報注冊了“龍陵紫皮石斛”地理標志、農(nóng)產(chǎn)品地理標志和國家地理標志保護產(chǎn)品[4]。目前,已報道的紫皮石斛化學成分有多糖、生物堿、酚酸類、黃酮類等物質(zhì)[5-6]。其中,石斛多糖在體外抗氧化方面顯示出很大的潛力[7]。硒在治療克山病、大骨節(jié)病,提高視力和防治肝壞死等方面具有特殊功效[8],自然界中存在無機硒和有機硒兩種形式,無機硒有蓄積性毒副作用和致突變毒性,有機硒則有顯著的生物活性、吸收率高和毒性小,因此有機硒是較理想的補硒劑。其中,硒多糖具有抗氧化、抗腫瘤、降血糖、調(diào)節(jié)免疫力等多種生理活性,易吸收、副作用小,兼有硒和多糖[9-10]的生物活性,具有重要的研究意義。從紫皮石斛中提取多糖并進行硒化修飾,探索其生物活性,有望推動滇西地區(qū)紫皮石斛資源價值的充分開發(fā)。因此,本研究通過微波輔助法提取多糖,以亞硒酸鈉為硒化劑,冰醋酸為催化劑對多糖進行硒化,并采用單因素和正交試驗優(yōu)化硒化工藝,同時比較了紫皮石斛多糖及硒多糖的抗氧化活性,為進一步研究紫皮石斛多糖及硒多糖作為藥物和功能性食品的開發(fā)提供一定的理論基礎。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    紫皮石斛:云南省保山市龍陵縣林源石斛開發(fā)有限公司;硒標準品(GNM-M261141-2013):國家有色金屬及電子材料分析測試中心;濃鹽酸:重慶川東化工集團有限公司;濃硝酸:四川西隴科學有限公司;三羥甲基氨基甲烷鹽酸鹽(Tris-HCl):美國阿拉丁工業(yè)公司;無水乙醇、冰醋酸、硫酸亞鐵、水楊酸:天津市風船化學試劑科技有限公司;亞硒酸鈉:山東西亞化學工業(yè)有限公司;沒食子酸、抗壞血酸、間羥聯(lián)苯、鄰苯三酚、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH):國藥集團化學試劑有限公司。以上所用試劑均為分析純。透析袋(MD44-5M,截留分子量:8 000 Da~14 000 Da):美國聯(lián)合碳化有限公司。

    ICAP7400電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀、Nicolet iS5傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared,F(xiàn)TIR)儀:賽默飛世爾科技有限公司;MARS6微波消解儀:美國CEM公司;UV-1800PC型紫外可見分光光度計:上海美譜達儀器有限公司;G80F23CN3L-C2(C6)微波爐:廣東格蘭仕微波生活電器制造有限公司;DZF 602電熱真空干燥箱:上海一恒科學儀器廠。

    1.2 方法

    1.2.1 紫皮石斛多糖的提取

    紫皮石斛鮮條于真空干燥箱內(nèi)60℃干燥72 h,粉碎過100目篩,稱取5.00 g石斛粉末于500 mL燒杯中,按料液比1∶60(g/mL)加入300 mL純水,置于微波爐內(nèi)間歇加熱2 min(350 W,每次加熱30 s),然后60℃恒溫水浴提取2 h。提取液趁熱離心過濾(3 000 r/min,30 min),用溫水洗滌殘渣2次,取上層清液,于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(60℃)中濃縮至原體積的1/3,冷卻至室溫。再加入5倍體積的無水乙醇沉析,抽濾,濾渣用無水乙醇洗滌3次后60℃真空干燥48 h,得到紫皮石斛多糖提取物,命名為 DDP(Dendrobium devonianum Paxt.polysaccharide)。

    1.2.2 紫皮石斛多糖的硒化

    準確稱取DDP粉末0.30g于50mL錐形瓶中,加入15mL 純水溶解,按 1∶1.5(g/mL)加入冰乙酸,1∶1.5(g/g)加入亞硒酸鈉,混合均勻后,于60℃水浴中反應24 h。反應結(jié)束后,將反應液裝于透析袋中,純水流動透析8 h,透析至加入抗壞血酸5 min透析液不呈現(xiàn)紅色為止[11]。透析結(jié)束后,加入6倍無水乙醇于2℃下醇析12 h,真空干燥箱60℃干燥24 h,制備得到硒化紫皮石斛多糖[12-13],命名為 Se-DDP(selenium Dendrobium devonianum Paxt.polysaccharide)。

    1.2.3 單因素試驗

    按照1.2.2的方法,準確稱取DDP 0.30 g于5只50 mL錐形瓶中,加入15 mL純水溶解。固定DDP∶亞硒酸鈉=1∶1.5(g/g),硒化溫度 60 ℃,反應時間為 24 h,DDP∶冰乙酸=1∶1.5(g/mL),分別考察 DDP∶亞硒酸鈉[1∶0.5、1∶1.0、1∶1.5、1∶2.0、1∶2.5(g/g)],反應時間(6、12、24、36、48 h),反應溫度 (40、50、60、70、80、90 ℃),DDP∶冰乙酸[1∶0.5、1∶1.0、1∶1.5、1∶2.0、1∶2.5、1∶3.0、1∶3.5、1∶4.0(g/mL)]對多糖硒化的影響,每組試驗重復 3次。

    1.2.4 正交試驗

    以單因素試驗結(jié)果為基礎,進行鐵皮石斛多糖硒化工藝的正交優(yōu)化試驗。以DDP∶亞硒酸鈉(A)、反應溫度(B)、DDP∶冰乙酸(C)進行L9(34)的正交試驗,試驗因素及水平見表1。

    表1 正交因素水平Table 1 Level of orthogonal factors

    1.2.5 硒含量測定

    1.2.5.1 Se-DDP的硝化

    準確稱取Se-DDP0.10g于干燥的聚四氟乙烯消解罐中,再加入5.0mL濃硝酸于100℃下預消解60 min。待無煙后取出置于通風櫥內(nèi)準確加入15.00 mL濃鹽酸,按照表2中的條件進行消解,待微波消解儀上的溫度降為80℃以下時,將消解罐取出置于通風櫥內(nèi),冷卻至室溫后打開,此時溶液澄清,無沉淀,消解完全。將消解液過濾于50 mL容量瓶中,用少量純水洗滌消解罐3次~4次,洗滌液全部轉(zhuǎn)移入容量瓶中,純水定容至刻度線,振蕩搖勻,靜置即為待測樣溶液,以不加樣品的消解液為空白對照。

    表2 微波消解程序Table 2 Microwave digestion program

    1.2.5.2 電感耦合原子發(fā)射光譜 (inductively coupled plasma atomic emission spectrometer,ICP-AES)法測定條件

    參照程慶龍等[14]的方法稍作修改,ICP-AES測定條件:輸出功率為1 150 W,泵速50 r/min,輔助氣流量0.5 L/min,霧化器氣體流量0.5 L/min,樣品沖洗時間20 s,短波范圍 7 s。

    1.2.5.3 硒標準曲線的繪制

    分別移取 0、0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0、20.0 mL 100 μg/mL的硒標準溶液于 100 mL容量瓶中,用0.02%的稀硝酸稀釋至刻度,搖勻。根據(jù)1.2.5.2的測定條件,用ICP-AES儀于196.026 nm下測定光強度。以硒濃度(X)為橫坐標,光強度(Y)為縱坐標繪制標準曲線,方程為 Y=29.353X+0.981 8,r=0.999 98。

    1.2.5.4 樣品硒含量的測定

    取1.2.5.1中待測樣溶液,按照1.2.5.3中方法測定光強度,依據(jù)硒標準曲線計算待測樣溶液硒濃度。按式(1)計算樣品硒含量。

    式中:C為Se-DDP待測樣溶液的硒濃度,μg/mL;V為Se-DDP待測樣溶液體積,mL;m為Se-DDP的質(zhì)量,g。

    1.2.6 抗氧化活性測定

    1.2.6.1 Se-DDP對DPPH自由基的清除能力測定

    DPPH自由基是一種較穩(wěn)定的以氮為中心的有機自由基,在517 nm處有最大吸收,且醇溶液呈紫色,當有抗氧化劑存在時,其與抗氧化劑進行反應導致顏色變淺,吸光度降低。并且吸光度的變化程度與清除DPPH自由基的程度呈定量關系,因此,可反映出樣品的抗氧化活性[15]。

    分別取 2 mL 濃度為 0.5、1.0、2.0、4.0、8.0 mg/mL Se-DDP樣品溶液(純水配制)于5支比色管中,分別加入2 mL 0.1 mmol/L DPPH溶液(95%乙醇配制),振蕩搖勻后,避光反應30 min,在517 nm波長下測其吸光度,并以純水進行調(diào)零,每個濃度平行3次。并以相同濃度的抗壞血酸溶液和DDP溶液作對照。按式(2)計算DPPH自由基清除率。

    式中:A空白為2 mL純水+2 mL DPPH溶液的吸光度;A樣品為 2 mL Se-DDP(或 VC、DDP)+2 mL DPPH 溶液的吸光度;A對照為 2 mL Se-DDP(或 VC、DDP)+2 mL 95%乙醇溶液的吸光度。

    1.2.6.2 Se-DDP對OH自由基的清除能力測定

    根據(jù)文獻[16-17]方法,分別取2mL濃度為0.5、1.0、2.0、4.0、8.0 mg/mL Se-DDP樣品溶液(純水配制)于5支比色管中,然后先加入2 mL 6 mmol/L的FeSO4溶液,再加入6mmol/LH2O2溶液2mL,混勻后靜置10min,然后加入2 mL新配制的6 mmol/L水楊酸乙醇溶液,在37℃下反應30 min后于510 nm波長處測其吸光度(純水進行調(diào)零)。以抗壞血酸和DDP作為陽性對照組,平行3次,按照式(3)計算對OH自由基的清除率。

    式中:A空白為2.0 mL純水代替樣品溶液的吸光度;A樣品為樣品組、陽性對照組的吸光度;A對照為2.0mL95%乙醇溶液代替6 mmoL/L水楊酸乙醇溶液的吸光度。

    1.2.6.3 Se-DDP對O2-自由基的清除能力測定

    采用鄰苯三酚法[18-19]測定Se-DDP對超氧陰離子自由基的清除能力。分別取2 mL濃度為0.5、1.0、2.0、4.0、8.0 mg/mL Se-DDP樣品溶液(純水配制)于5支比色管中,加入 4.2 mL Tris-HCl溶液(50 mmol/L,pH8.2),于30℃下預熱20 min后,加入3 mL 7 mmol/L鄰苯三酚溶液,反應5 min后迅速加入1 mL 10 mol/L的HCl溶液終止反應。以純水進行儀器調(diào)零,反應液于320 nm處測吸光度??箟难岷虳DP作為陽性對照組,平行3次,按照式(4)計算清除率。

    式中:A空白為2.0 mL純水代替樣品溶液的吸光度;A樣品為樣品組、陽性對照組的吸光度;A對照為2 mL純水代替鄰苯三酚的吸光度。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    采用SSPS22.0對單因素水平進行多重比較、正交試驗設計和正交結(jié)果方差分析;采用Origin 2019進行繪圖;試驗均重復3次。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 Se-DDP的紅外光譜分析

    DDP和Se-DDP的FTIR圖譜見圖1。

    圖1 DDP和Se-DDP的FTIR圖譜Fig.1 FTIR spectrogram of DDP and Se-DDP

    由圖1可知,硒化前后,DDP和Se-DDP的FTIR圖譜有所變化,但變化不大,表明鐵皮石斛多糖在硒化前后結(jié)構(gòu)上沒有較大的改變。其中Se-DDP的FTIR圖譜中,3367.59cm-1為—OH的伸縮振動峰,2925.97cm-1~2 875.34 cm-1為糖類 CH3、CH2、CH 等 C—H 的伸縮振動峰,1 726.46 cm-1和1 646.91 cm-1為C=O的伸縮振動峰,1 371.14 cm-1和1 249.16 cm-1為C—H的變角振動峰,1 024.98 cm-1處是糖殘基 C—O—C、C—O—H和O—Se—O鍵的伸縮振動峰[20],在941.09cm-1和867.33cm-1為吡喃葡萄糖的特征吸收峰[16],在1 054.87、808.03、768.01 cm-1處,Se-DDP 比 DDP 多出的峰為亞硒酸酯的特征吸收峰,因此可判斷:DDP分子上發(fā)生了硒化反應,且硒以亞硒酸酯的形式存在[21]。

    2.2 單因素試驗結(jié)果

    2.2.1 亞硒酸鈉用量對硒含量的影響

    在反應溫度60℃、反應時間24 h、DDP∶冰乙酸為1∶1.5(g/mL)的條件下,不同亞硒酸鈉用量對紫皮石斛多糖硒化修飾的影響如圖2所示。

    圖2 亞硒酸鈉用量對硒含量的影響Fig.2 Effect of sodium selenite on selenium content

    由圖2可知,當 DDP∶亞硒酸鈉在 1∶0.5(g/g)~1∶1.5(g/g)時,隨著亞硒酸鈉用量的增加,Se-DDP 的硒含量也隨之增加;但當 DDP∶亞硒酸鈉在 1∶1.5(g/g)~1∶2.5(g/g)時,Se-DDP 的硒含量則隨著亞硒酸鈉用量的增加呈下降趨勢。這說明硒多糖在1∶1.5(g/g)時,可能硒與多糖的鍵合已達到飽和,再增加亞硒酸鈉的用量可能導致其平衡被破壞,從而導致硒含量下降。因此,DDP∶亞硒酸鈉在 1∶1.5(g/g)為宜。

    2.2.2 反應時間對硒含量的影響

    不同反應時間對紫皮石斛多糖的硒化影響如圖3所示。

    圖3 反應時間對硒含量的影響Fig.3 Effect of time on selenium content

    由圖3可知,在反應溫度為60℃,DDP∶亞硒酸鈉為1∶1.5(g/g),DDP∶冰乙酸為 1.5∶1(g/mL)時,Se-DDP 的硒含量隨反應時間的增加而增加。在開始的6 h~12 h時,硒含量增加不明顯(P>0.05),可能是反應時間太短導致反應不完全;反應時間從12 h~48 h,隨著反應時間的延長,硒含量增加較快;當反應時間大于48 h時,硒含量基本達到飽和(5.18 mg/g),繼續(xù)延長反應時間,硒含量無顯著增加(P>0.05),這與高玉杰等[8]的研究結(jié)果相似。本研究以硒化反應時間為48 h進行正交試驗。

    2.2.3 反應溫度對硒含量的影響

    反應溫度對Se-DDP硒化修飾的影響如圖4所示。

    圖4 反應溫度對硒含量的影響Fig.4 Effect of temperature on selenium content

    由圖4可知,隨著反應溫度的升高,Se-DDP的硒含量先增加后減小,反應溫度為70℃~80℃時,硒含量增加不顯著,基本達到飽和;當反應溫度大于80℃,硒含量開始降低。這可能是由于紫皮石斛多糖在高溫的酸性條件下發(fā)生了降解,影響硒化反應的進行[13]。因此,硒化反應溫度在70℃~80℃為宜。

    2.2.4 冰乙酸用量對硒含量的影響

    冰乙酸的用量對Se-DDP硒化修飾的影響如圖5所示。

    圖5 冰乙酸用量對硒含量的影響Fig.5 Effect of iced acetic acid dosage on selenium content

    由圖5可知,當 DDP∶冰乙酸在 1∶0.5(g/mL)~1∶3.5(g/mL)時,隨著冰乙酸用量的增加,Se-DDP 的硒含量不斷增加,DDP∶冰乙酸為 1∶3.5(g/mL)時,硒含量達到最大值,為7.57 mg/g。但當繼續(xù)增加冰乙酸用量時,Se-DDP的硒含量開始下降,這是因為反應體系的酸度過高,DDP會被降解,不利于硒化反應的進行,而冰乙酸用量過小又起不到最佳的催化作用,因此DDP∶冰乙酸在 1∶3.5(g/mL)為宜。

    2.3 正交試驗結(jié)果

    正交試驗結(jié)果及方差分析如表3、表4所示。

    表3 正交試驗結(jié)果Table 3 Results of orthogonal test

    表4 方差分析結(jié)果Table 4 Results of variance analysis

    由表3中k值可知,DDP的最佳硒化工藝條件為A3B3C3,即 DDP∶亞硒酸鈉為 1∶2.0(g/g),反應溫度為90 ℃,DDP∶冰乙酸為 1∶4.0(g/mL),反應時間為 48 h。在該條件下進行5次重復試驗,得Se-DDP的硒含量的平均值為12.37 mg/g。由表中R值可知,對Se-DDP硒含量的影響大小順序為B>C>A,與表4中的方差分析結(jié)果一致。

    2.4 Se-DDP的抗氧化活性

    2.4.1 DDP、VC、Se-DDP對DPPH自由基的清除能力

    DDP、VC、Se-DDP對DPPH自由基的清除能力見圖6。

    圖6 DDP、VC、Se-DDP對DPPH自由基的清除能力Fig.6 Scavenging ability of DDP,VCand Se-DDP to DPPH·

    由圖6可見,DDP、VC、Se-DDP對DPPH自由基的清除率與樣品的濃度呈正相關。當DDP和Se-DDP濃度小于4 mg/mL時,DDP對DPPH自由基的清除效果比Se-DDP的好,而當濃度大于4 mg/mL時,Se-DDP對DPPH自由基的清除率高于DDP低于VC;當濃度為8 mg/mL時,Se-DDP對DPPH自由基的清除率為91.13%,與 VC無顯著差異(P>0.05)。程爽等[20]發(fā)現(xiàn),冬凌草多糖和冬凌草硒多糖對DPPH自由基的清除能力隨濃度的不斷增加而逐漸增加,且硒多糖明顯高于多糖的DPPH自由基清除能力,與本試驗結(jié)果較為一致。

    2.4.2 DDP、VC、Se-DDP對OH自由基的清除能力

    DDP、VC、Se-DDP對OH自由基的清除能力見圖7。

    圖7 DDP、VC、Se-DDP對OH自由基的清除能力Fig.7 Scavenging ability of DDP,VCand Se-DDP to·OH

    從圖7可知,當濃度小于1 mg/mL時,DDP和Se-DDP對OH自由基的清除能力差異不顯著(P>0.05),且小于VC;當濃度大于1 mg/mL時,Se-DDP清除OH自由基的能力顯著高于 DDP(P<0.05),表明SeO32-的引入對OH自由基有更顯著的清除作用;當濃度為4 mg/mL~8 mg/mL時,Se-DDP清除OH自由基的能力與VC無顯著差異(P>0.05),均高于92%,并與硒化牡丹籽粕多糖對OH自由基的清除能力接近[17]。

    2.4.3 DDP、VC、Se-DDP 對 O2-自由基的清除能力

    DDP、VC、Se-DDP 對 O2-自由基的清除能力見圖8。

    圖8 DDP、VC、Se-DDP對O2-自由基的清除能力Fig.8 Scavenging ability of DDP,VCand Se-DDP to O2-·

    由圖8可知,隨著濃度的增加,DDP和Se-DDP對O2-自由基清除率也隨之增加。當濃度小于4 mg/mL時,DDP對 O2-自由基清除率顯著(P<0.05)高于 Se-DDP,但低于VC;當濃度大于4 mg/mL時,Se-DDP對O2-自由基清除率高于DDP;當濃度為8 mg/mL時,Se-DDP對O2-自由基清除率達到93.97%,略高于VC(92.07%)。由此可見,在一定濃度下,硒化修飾后的Se-DDP具有更好的抗氧化活性。

    3 結(jié)論

    本研究以龍陵紫皮石斛鮮條為原料提取DDP,以亞硒酸鈉為硒化劑、冰醋酸為催化劑,通過單因素和正交試驗優(yōu)化得到Se-DDP的最佳硒化工藝:DDP∶亞硒酸鈉1∶2.0(g/g),反應溫度 90 ℃,DDP∶冰乙酸 1∶4.0(g/mL),反應時間48 h,得Se-DDP的硒含量為12.37 mg/g。由紅外光譜分析發(fā)現(xiàn)Se-DDP在1 054.87、808.03 cm-1和768.01 cm-1處有新的吸收峰,證明硒化產(chǎn)物結(jié)構(gòu)中含有O—Se—O、SeO鍵。Se-DDP的抗氧化試驗結(jié)果表明,Se-DDP的抗氧化能力與濃度呈正相關,當濃度高于4 mg/mL時,Se-DDP對DPPH自由基、OH自由基和O2-自由基的清除能力均強于DDP。當濃度為8 mg/mL時,Se-DDP清除DPPH自由基、OH自由基和O2-自由基的能力與VC相當,高于90%。本研究為紫皮石斛多糖的研究提供了一定的試驗依據(jù)和技術參考。

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