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    氣相色譜-熱能分析儀法同時(shí)測定食品接觸材料及制品中15種N-亞硝胺在酒精類食品模擬物中的遷移量

    2022-10-22 11:27:28徐敦明黃旖玨董清木楊子禾莊麗麗郭思立吳易峰林偉靖林海霞丁華軍沈露虹涂星朋
    分析測試學(xué)報(bào) 2022年10期
    關(guān)鍵詞:亞硝基亞硝胺試液

    林 睿, 徐敦明, 黃旖玨, 董清木, 賴 鶯, 楊子禾, 楊 澤, 莊麗麗, 郭思立, 吳易峰, 林偉靖, 林海霞, 丁華軍, 沈露虹, 涂星朋

    (廈門海關(guān)技術(shù)中心, 福建 廈門 361026)

    N-亞硝胺具有肝毒性和致癌性, 為強(qiáng)致癌物, 是國際公認(rèn)毒性較大的污染物。吸煙是人群N-亞硝胺暴露的主要途徑, 對于非吸煙人群, 膳食和食品接觸材料遷移則是主要暴露途徑, 其它來源有內(nèi)源性合成如胃中亞硝酸鹽與胺的反應(yīng)等。食品接觸材料中亞硝胺類化合物的遷移不容忽視。以橡膠為例, 絕大多數(shù)的橡膠制品均通過高溫硫化最終成型, 該過程中發(fā)生硫化反應(yīng)主要是硫化劑和硫化促進(jìn)劑。其中, 以仲胺為基礎(chǔ)的硫化促進(jìn)劑和硫磺給予體分解出仲胺, 并與空氣或配合劑中的氮氧化合物(NOx)在酸性條件下生成穩(wěn)定的N-亞硝胺類化合物。與食品接觸的橡膠制品廣泛用于人們的日常生活中, 如:橡膠類食品接觸材料及制品、橡膠奶嘴、安撫奶嘴等。

    我國及歐盟針對食品接觸材料及制品中N-亞硝胺類化合物的限量主要有:HG/T 2946-2011《橡膠奶頭》[1]、GB 28482-2012《嬰幼兒安撫奶嘴安全要求》[2]、GB 4806. 2-2015《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)奶嘴》[3]、EN 12868-2017[4], 規(guī)定奶嘴及安撫奶嘴中N-亞硝胺類化合物釋放量不超過0. 01 mg/kg, N-亞硝胺可生成物釋放量不超過0. 1 mg/kg;國標(biāo)GB 4806. 11[5]《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品接觸用橡膠材料及制品》征求意見稿, 增加了N-亞硝胺和N-亞硝胺可生成物遷移量的限量, 但尚無配套的測定方法。

    目前, 測定N-亞硝胺類化合物的主要方法有氣相色譜-熱能分析法(GC-TEA)[2-3]、氣相色譜-質(zhì)譜法(GC-MS)[6-8]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)[9-12]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(LC-MS/MS)[13]。其中GC-TEA法具有靈敏度高(介于GC-MS法和GC-MS/MS之間)、對N-亞硝胺類化合物選擇性強(qiáng)、基質(zhì)干擾小等優(yōu)點(diǎn), 被歐盟、美國廣泛應(yīng)用于N-亞硝胺類化合物的測定。目前對食品接觸材料中N-亞硝胺類化合物測定主要集中在材質(zhì)及釋放量的研究, 而針對遷移量的研究報(bào)道較少。由于遷移量的測定涉及酒精類食品模擬物, 存在的乙醇將導(dǎo)致N-亞硝胺提取困難, 本文采用GC-TEA法, 選擇10%乙醇、20%乙醇和50%乙醇3種食品模擬物為研究對象, 建立了食品接觸材料及制品中15種N-亞硝胺在酒精類食品模擬物中遷移量的測定方法。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 儀器與試劑

    Agilent 7890A-Ellutia 800 Series TEA(氣相色譜-熱能分析儀), BUCHI Rotavapor R-300旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀, Milli-Q超純水器(美國Millipore公司), EYELA MG-2200氮吹儀(日本東京理化器械株式會社), 電子分析天平(精度0. 01 mg)。

    12種N-亞硝胺混標(biāo):N-二甲基亞硝胺(NDMA)、N-亞硝基二乙胺(NDEA)、N-亞硝基二正丙胺(NDPA)、N-亞硝基二異丁胺(NDiBA)、N-亞硝基二正丁胺(NDBA)、N-亞硝基哌啶(NPIP)、N-亞硝基吡咯烷(NPYR)、N-亞硝基嗎啉(NMOR)、N-亞硝基-N-乙基苯胺(NEPhA)、N-亞硝基-N-甲基苯胺(NMPhA)、N-亞硝基-N, N-(三甲基己基)胺(NDiNA)、N-亞硝基二芐胺(NDBzA)(100μg/mL, 北京迪科馬科技有限公司), N-亞硝基-N-甲基乙胺(NMEA)、N-亞硝基二異丙胺(NDiPA)(≥98%, 上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);N-亞硝基二環(huán)己基胺(NDCHA, 100μg/mL, 曼哈格公司);二氯甲烷、乙醇(色譜純, 上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);其他試劑均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水為經(jīng)Milli-Q凈化系統(tǒng)制備的去離子水。椰殼活性炭固相萃取小柱(上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);多孔聚苯乙烯-二乙烯苯共聚物固相萃取小柱、弱陽離子交換固相萃取小柱、親水親脂平衡固相萃取小柱(北京迪科馬科技有限公司)。

    1.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的制備

    準(zhǔn)確稱取適量的15種N-亞硝胺化合物標(biāo)準(zhǔn)品(精確至0. 01 mg), 用乙醇配制成質(zhì)量濃度約為1 000 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液, 逐級稀釋至0. 025、0. 05、0. 1、0. 2、0. 5 mg/L系列標(biāo)準(zhǔn)工作溶液, 臨用現(xiàn)配。

    1.3 樣品前處理

    1.3.1 遷移試驗(yàn)遷移試驗(yàn)的條件選擇及操作步驟按照GB 4806. 11[5]、GB 31406. 1-2015[14]和GB 5009. 156-2016[15]的規(guī)定。遷移試驗(yàn)容器選擇具塞錐形瓶, 試驗(yàn)完成后, 手動(dòng)用力搖動(dòng)3~5次, 打開錐形瓶, 用鑷子取出樣品, 得到食品模擬物試液。若不能立即實(shí)驗(yàn), 需將食品模擬物試液于4℃冰箱中避光保存。

    1.3.2 N-亞硝胺化合物遷移量試液的制備食品模擬物試液冷卻后, 移取40 mL試液于150 mL帶聚四氟乙烯塞的分液漏斗中, 加入1. 0 mL 5 mol/L的氫氧化鈉溶液, 再向分液漏斗中加入適量水和乙醇(共約60 mL), 搖勻, 使分液漏斗內(nèi)的試液中乙醇含量為20%(體積分?jǐn)?shù))。

    1.3.3 提取與濃縮向“1. 3. 2”所得試液中加入二氯甲烷30 mL, 用手輕微逆時(shí)針搖晃分液漏斗, 蓋上漏斗蓋, 劇烈振蕩15 s, 必要時(shí)放氣。打開斗蓋, 靜置分層, 收集下層溶液, 用旋蒸瓶或K-D濃縮瓶收集, 重復(fù)提取2次, 合并提取液, 搖勻備用。

    將提取液于25℃水浴溫度, 真空度25 000 Pa下旋轉(zhuǎn)、蒸發(fā)、濃縮至3~4 mL, 轉(zhuǎn)入玻璃氮吹管中, 室溫下用緩慢的氮?dú)獯抵?. 8~0. 9 mL, 無水乙醇定容至1. 0 mL, 用0. 22μm針式尼龍過濾器上機(jī)待測。

    1.4 儀器條件

    1.4.1 氣相色譜條件色譜柱:DB-FFAP色譜柱(30 m×0. 32 mm×0. 25μm);進(jìn)樣口溫度:170℃;程序升溫條件:初始溫度60℃, 保留2 min, 以15℃/min升至82℃, 以1℃/min升至88℃, 以15℃/min升至140℃, 保留7 min, 再以15℃/min升至240℃, 保留7 min;載氣:氮?dú)猓兌取?9. 999%);流速:1. 2 mL/min;進(jìn)樣方式:不分流進(jìn)樣;進(jìn)樣體積:2μL。

    1.4.2 熱能分析儀條件接口溫度:250℃;熱解室溫度:500℃;真空度:59. 8~66. 5 Pa;氧氣壓力:13 790 Pa;臭氧水平:244(22. 8 V)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 氣相色譜條件的優(yōu)化

    2.1.1 氣相色譜柱的確定考察了HP-5MS和極性柱(HP-INNOWax、DB-FFAP、Wonda Cap Wax色譜柱等)對目標(biāo)化合物分離的影響。由于N-亞硝胺類物質(zhì)均為極性化合物, 普通的HP-5MS弱極性柱分析時(shí)峰形易拖尾且重現(xiàn)性差。當(dāng)采用HP-INNOWax柱時(shí), 各目標(biāo)化合物均能保持良好峰形, 但NEPhA與NMPhA無法實(shí)現(xiàn)基線分離;Wonda Cap Wax色譜柱會加速NEPhA與NMPhA降解成為乙基苯胺、甲基苯胺和一氧化氮, 導(dǎo)致熱能檢測器無法對這兩種物質(zhì)進(jìn)行測定;采用DB-FFAP色譜柱(30 m×0. 32 mm×0. 25μm)時(shí), 15種N-亞硝胺化合物可實(shí)現(xiàn)良好的基線分離(見圖1)。

    圖1 15種N-亞硝胺化合物的色譜圖(0. 25 mg/L)Fig. 1 Chromatogram of 15 N-nitrosamines(0. 25 mg/L)

    2.1.2 進(jìn)樣口溫度的確定實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)進(jìn)樣口溫度會對NEPhA與NMPhA的降解產(chǎn)生較大影響, 其產(chǎn)物分別為乙基苯胺和甲基苯胺。對比了進(jìn)樣口溫度分別為150、170、190、210℃時(shí)15種N-亞硝胺的色譜圖, 結(jié)果發(fā)現(xiàn), 溫度對NDiNA、NDCHA、NDBzA、NEPhA、NMPhA具有顯著的影響, 其中NDiNA、NDCHA、NDBzA隨著溫度的升高, 響應(yīng)值逐漸增大;NEPhA、NMPhA則隨著溫度的升高, 呈先上升后下降的趨勢, 且以170℃時(shí)的響應(yīng)值最高, 同時(shí)也能保證NDiNA、NDCHA、NDBzA的響應(yīng)值滿足檢測需要;當(dāng)溫度升至210℃時(shí), NEPhA、NMPhA已完全降解。最終將進(jìn)樣口溫度設(shè)為170℃。

    2.2 前處理?xiàng)l件的優(yōu)化

    N-亞硝胺類物質(zhì)為路易斯堿, 將浸泡液調(diào)為堿性能有效降低N-亞硝胺類化合物在模擬液中的溶解度, 并增加其穩(wěn)定性, 提升提取效率。綜合考慮N-亞硝胺類物質(zhì)在不同溶劑中的溶解能力、溶劑與水溶液的相溶性、試劑的毒性等方面, 同時(shí)參考GB 28482-2012和EN 12868-2017的測定方法, 最后確認(rèn)二氯甲烷作為提取溶劑, 既能保證提取效率, 又不會對實(shí)驗(yàn)員和大氣環(huán)境造成太大污染。

    由于陽性樣品不易獲得, 本文通過對空白實(shí)際樣品(天然橡膠片)的遷移試驗(yàn)試液加標(biāo), 對前處理?xiàng)l件進(jìn)行優(yōu)化。浸泡方式為:每60 dm2食品接觸材料及制品接觸1 kg食品模擬物比例浸泡, 各種液態(tài)食品的密度以1 kg/L計(jì)。分別準(zhǔn)確移取空白食品模擬物試液40 mL(10%乙醇、20%乙醇、50%乙醇)于150 mL分液漏斗中, 加入1. 0 mL 5. 0 mol/L的氫氧化鈉溶液, 再加入0. 5 mL 1 mg/L的N-亞硝胺化合物混合標(biāo)準(zhǔn)溶液, 混合均勻, 使食品模擬物中N-亞硝胺的質(zhì)量濃度為12. 5μg/L(相當(dāng)于遷移量為12. 5μg/kg)。

    2.2.1 萃取次數(shù)的優(yōu)化分別以90 mL二氯甲烷提取1次、45 mL二氯甲烷提取2次、30 mL二氯甲烷提取3次, 考察了提取次數(shù)對15種N-亞硝胺類化合物回收率的影響。結(jié)果表明, 當(dāng)提取次數(shù)為1次時(shí), 3種模擬物的回收率普遍較低;當(dāng)提取次數(shù)為2次時(shí), 10%和20%乙醇的回收率提升至70%~80%;提取次數(shù)為3次時(shí), 20%乙醇的回收率均大于90%;10%乙醇, 除NDMA回收率略低外, 其余化合物的回收率均與20%乙醇相近;50%乙醇的回收率為64. 8%~88. 0%。造成上述回收率差異的主要原因?yàn)椋孩貼-亞硝胺易溶于乙醇, 而乙醇會阻礙二氯甲烷對目標(biāo)物的提取。②隨著食品模擬物中乙醇含量的提高, 提取液中乙醇的含量增加。當(dāng)提取液中乙醇含量過少時(shí), 后期濃縮過程易受人為或儀器設(shè)備因素的影響, 造成提取液濃縮過度, 低沸點(diǎn)N-亞硝胺化合物(特別是NDMA)損失;當(dāng)提取液中乙醇含量過多時(shí), 會造成后期旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)及氮吹濃縮的時(shí)間大幅增加, 也會導(dǎo)致低沸點(diǎn)N-亞硝胺的揮發(fā), 回收率下降。為保證N-亞硝胺類化合物提取完全, 本文采用30 mL二氯甲烷提取3次, 并以20%乙醇食品模擬物為研究對象, 對前處理?xiàng)l件進(jìn)行優(yōu)化。

    2.2.2 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)條件的優(yōu)化在真空度為30 000 Pa下, 考察了不同水浴溫度(25、30、40、50、60℃)對15種N-亞硝胺類化合物回收率的影響, 結(jié)果表明:25℃時(shí)的整體回收率與30℃相近, 均大于90. 0%;水浴溫度對NDMA產(chǎn)生較大影響, 當(dāng)水浴溫度大于40℃時(shí), 水浴溫度越高, NDMA的回收率越低。由于二氯甲烷沸點(diǎn)為39. 8℃、易揮發(fā), 溫度越高, 提取液越易爆沸, 進(jìn)而污染儀器設(shè)備, 影響回收率。綜合考慮實(shí)驗(yàn)耗時(shí)、安全性及回收率影響, 選擇水浴溫度為25℃。

    在25℃水浴溫度下, 進(jìn)一步考察了不同真空度(25 000、30 000、6 000 Pa)對15種N-亞硝胺類化合物回收率的影響, 結(jié)果表明:25 000 Pa和30 000 Pa的回收率無顯著差異, 回收率均大于90. 0%, 但25 000 Pa可以進(jìn)一步縮短試驗(yàn)時(shí)間;而用6 000 Pa直接減壓旋蒸至1 mL, 則時(shí)間延長, 且回收率降低(總體回收率為56. 0%~76. 8%)。綜合考慮回收率及時(shí)間, 本文選擇旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)真空度為25 000 Pa。

    2.2.3 振蕩時(shí)間的優(yōu)化考察了不同振蕩時(shí)間(15、30、45、60、120 s)對15種N-亞硝胺類化合物回收率的影響。結(jié)果表明, 劇烈振蕩15 s時(shí), 15種N-亞硝胺類化合物的回收率接近100%, 隨著振蕩時(shí)間延長, 回收率無明顯變化。綜合考慮操作時(shí)間和回收率, 本文將提取時(shí)間設(shè)為15 s。

    2.2.4 氮吹條件的優(yōu)化參照GB 28482-2012, 在室溫下調(diào)節(jié)氮?dú)饬魉? 確保濃縮表面形成的凹陷不超過2~3 mm(防止液體飛濺), 考察了不同氮吹濃縮體積(近干、0. 4~0. 6 mL、0. 8~0. 9 mL)對回收率的影響(圖2)。結(jié)果表明:當(dāng)?shù)抵两苫?. 4~0. 6 mL時(shí), 會造成低沸點(diǎn)N-亞硝胺類化合物的回收率降低, 特別是NDMA;氮吹至0. 8~0. 9 mL時(shí), 15種N-亞硝胺類化合物的回收率為95. 2%~101%。因此, 本文將氮吹濃縮條件定為室溫氮吹至0. 8~0. 9 mL。

    圖2 氮吹濃縮體積對回收率的影響Fig. 2 Influence of nitrogen blowing concentration volume on recovery

    2.2.5 提取液中乙醇含量的優(yōu)化由于50%乙醇食品模擬物的提取液中乙醇含量高, 導(dǎo)致濃縮時(shí)間長、回收率偏低, 因此需降低乙醇含量以確保N-亞硝胺回收率。通常降低提取液中乙醇含量的方法有直接蒸餾法、反滲透膜技術(shù)、稀釋法。

    50%乙醇的沸點(diǎn)約82℃, 采用直接蒸餾法的蒸餾時(shí)間較長, 會導(dǎo)致低沸點(diǎn)的N-亞硝胺揮發(fā), 造成損失;利用反滲透膜法需要大型的設(shè)備, 不適合日常檢測。由于前期已經(jīng)對20%乙醇模擬物進(jìn)行了研究, 發(fā)現(xiàn)具有濃縮時(shí)間適中、回收率高、重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn)。因此, 本文用水將50%乙醇稀釋至20%乙醇后, 考察對N-亞硝胺回收率的影響。結(jié)果表明:經(jīng)稀釋后50%乙醇提取液的濃縮時(shí)間縮短至原來的1/4, 且15種N-亞硝胺類化合物的回收率均大于90. 0%。

    由于本文涉及多種食品模擬物, 為了確保方法統(tǒng)一, 本文將N-亞硝胺類化合物遷移量試液的制備確定為:食品模擬物試液冷卻后, 移取40 mL于150 mL帶聚四氟乙烯塞的分液漏斗中, 加入1. 0 mL 5 mol/L氫氧化鈉溶液, 再向分液漏斗中加入適量水和乙醇(合計(jì)約60 mL), 搖勻, 使分液漏斗內(nèi)試液中乙醇的體積分?jǐn)?shù)為20%。

    2.3 固相萃取法與液液萃取法的比較

    目前, 固相萃取法常用于水樣中N-亞硝胺類化合物的測定, 但存在NDMA回收率偏低的缺點(diǎn)。本文考察了椰殼活性炭固相萃取小柱、多孔聚苯乙烯-二乙烯苯共聚物固相萃取小柱、弱陽離子交換固相萃取小柱、親水親脂平衡固相萃取小柱對水及50%乙醇模擬物中15種N-亞硝胺類化合物回收率的影響。結(jié)果表明:上述4類固相萃取柱對水中的15種N-亞硝胺類化合物保留較好, 回收率為71. 2%~102%, 但對50%乙醇中的N-亞硝胺類化合物保留差, 回收率為4. 02%~93. 6%。造成上述結(jié)果的原因是:上述四種固相萃取柱主要通過反相作用力吸附化合物, 當(dāng)上樣溶液乙醇含量增大時(shí), 洗脫能力增強(qiáng), 化合物保留能力降低, 造成回收率偏低。

    通過比較, 上文優(yōu)化的液液萃取法的回收率遠(yuǎn)高于固相萃取法, 因此, 本文將液液萃取法確定為酒精類食品模擬物中N-亞硝胺類化合物的提取方法。

    2.4 線性關(guān)系、檢出限與定量下限

    對“1. 2”系列標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行分析, 以峰面積(y)為縱坐標(biāo), 對應(yīng)的質(zhì)量濃度(x, mg/L)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果表明, 15種N-亞硝胺均在0. 025~0. 5 mg/L范圍內(nèi)線性良好, 相關(guān)系數(shù)(r2)為0. 998 4~0. 999 9。本文以響應(yīng)最低的物質(zhì)為基準(zhǔn), 確定方法的檢出限(LOD, S/N≥3)為0. 200μg/kg, 定量下限(LOQ, S/N≥10)為0. 625μg/kg。方法的靈敏度滿足GB 4806. 11-修訂版中對N-亞硝胺遷移量的限量要求(SML=0. 01 mg/kg)。

    2.5 準(zhǔn)確度與精密度

    選取天然橡膠片空白樣品, 添加不同濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液, 制成含量分別為0. 625、1. 25、6. 25 μg/kg的加標(biāo)樣品, 每個(gè)樣品按前處理方法提取并平行測定6次, 計(jì)算得到15種N-亞硝胺類化合物的加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(見表1)。結(jié)果表明, 15種N-亞硝胺類化合物的平均回收率為85. 7%~106%, 相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)小于10%, 方法的準(zhǔn)確度與精密度完全滿足分析要求。

    表1 天然橡膠片中15種N-亞硝胺類化合物的平均加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)Table 1 Spiked recoveries and relative standard deviations of 15 N-nitrosamines in natural rubber sheet(n=6)

    2.6 實(shí)際樣品的檢測

    選擇天然乳膠片、TRP湯勺、TPU片等共13份樣品, 按照“1. 3. 1”對實(shí)際樣品進(jìn)行遷移實(shí)驗(yàn), 得到模擬物試液后, 按本方法進(jìn)行檢測, 結(jié)果顯示樣品均為陰性。

    3 結(jié) 論

    本文采用液液萃取作為前處理方法, 結(jié)合氣相色譜-熱能分析儀同時(shí)測定食品接觸材料及制品中15種N-亞硝胺在酒精類食品模擬物中的遷移量, 解決了N-亞硝胺類化合物在酒精類食品模擬物提取難的技術(shù)難題, 并應(yīng)用該方法對實(shí)際樣品進(jìn)行測定。該方法操作簡便、定量準(zhǔn)確、回收率高、靈敏度高、重現(xiàn)性好, 彌補(bǔ)了GB 4806. 11-修訂版檢測方法的空白, 滿足實(shí)際檢測需求。

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