植物乳桿菌抑菌蛋白的分離鑒定及抑菌特性研究

李小寧，李 軍，尹楊燕，李常挺，馬春霞，陶 立，龔 俞,鐘舒紅，白慧麗，彭 昊，廖玉英

(1.廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所，廣西獸醫(yī)生物技術(shù)重點實驗室，南寧 530001；2.廣西大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院，南寧 530004；3.貴州省畜禽遺傳資源管理站，貴陽 550001)

植物乳桿菌是一種多功能乳酸菌，作為乳酸菌的代表，在自然界分布廣泛，因其具有良好的抗菌性能而成為無抗養(yǎng)殖領(lǐng)域的研究重點，是一類具有開發(fā)前景的新型綠色抗菌制劑[1]。

現(xiàn)有研究表明，植物乳桿菌的抗菌特性主要依賴于其產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物，分離到的抑菌物質(zhì)主要包括有機酸[2-3]、脂肪酸[4]、抑菌蛋白或小分子抗菌肽[5-7]。抑菌蛋白或小分子抗菌肽是植物乳桿菌產(chǎn)生的重要代謝產(chǎn)物，研究證實植物乳桿菌的發(fā)酵上清經(jīng)蛋白酶處理后，其原本的抑菌能力將會大打折扣[8]。目前針對植物乳桿菌抑菌蛋白的研究主要集中在對其進(jìn)行分離、鑒定及其抑菌機理的探討。詹暉等[9]對小鼠進(jìn)行沙門氏菌攻毒，發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌細(xì)菌素對沙門氏菌在增殖過程中的細(xì)胞膜有破壞作用。韓金志等[10]從植物乳桿菌中分離出一種新型細(xì)菌素，經(jīng)抑菌試驗證實其對大腸桿菌、鼠傷寒沙門氏菌、金黃色葡萄等食源性致病菌具有不同程度的抑菌活性。細(xì)菌素可破壞病原菌的細(xì)胞膜或細(xì)胞壁，使其內(nèi)容物外泄而達(dá)到抑菌作用；也可以菌體的核酸為作用靶點，阻礙病原菌的增殖分裂從而發(fā)揮抗菌作用。Miao等[11]研究發(fā)現(xiàn)干酪乳桿菌的細(xì)菌素 F1 可通過作用于金黃色葡萄球菌的DNA和破壞細(xì)胞膜兩種方式抑制金黃色葡萄球菌的增殖。Khalaf等[12]從乳酸菌中分離出的細(xì)菌素PLNC8 αβ可通過破壞病原菌的生物膜從而發(fā)揮抗菌作用。

與其他非蛋白類抑菌物質(zhì)相比，抑菌蛋白或小分子抗菌肽抑菌活性強、抑菌譜廣且抑菌蛋白編碼基因易克隆表達(dá)，可為實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)發(fā)揮更大的應(yīng)用價值，篩選新型廣譜而有效的抑菌蛋白或小分子抗菌肽可為開發(fā)新型替抗產(chǎn)品提供新思路新選擇。目前針對植物乳桿菌的抑菌效果研究多集中在有機酸的協(xié)同作用，而對于抗菌肽或抑菌蛋白的協(xié)同作用卻鮮有報道。本研究通過低溫離心和超濾法提取植物乳桿菌代謝產(chǎn)物中的胞外蛋白，采用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜(LC-MS/MS)法進(jìn)一步分析鑒定抑菌蛋白成分，并對抑菌機制進(jìn)行解析，以期為全面解析植物乳桿菌的抑菌機制和進(jìn)一步研發(fā)替代抗生素的新一代綠色安全抑菌蛋白制劑提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株與培養(yǎng)基 試驗用菌種植物乳桿菌GX20200417-1，分離自廣西市售發(fā)酵酸菜，由廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所細(xì)菌室提供；指示菌大腸桿菌ATCC 25922、金黃色葡萄球菌ATCC 6583、沙門氏菌SM022均由廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所收藏保存。MRS肉湯培養(yǎng)基購自北京陸橋技術(shù)股份有限公司。

1.1.2 主要試劑及儀器 RIPA裂解液(Solarbio公司)；乙腈(ACN)、甲酸(FA)、碳酸氫銨、二硫蘇糖醇(DTT)、碘乙酰胺(IAA)(Sigma-Aldrich公司)；考馬斯亮藍(lán)染色劑(碧云天生物技術(shù)有限公司)。超凈工作臺(Thermo Scientific公司)；低溫高速離心機(Eppendorf公司)；Western電泳儀(Bio-Rad公司)；毛細(xì)管高效液相色譜儀和電噴霧-組合型離子阱Orbitrap 質(zhì)譜儀(Thermo Fisher Scientific公司)。

1.2 方法

1.2.1 菌種活化及生長性能測定 將-80 ℃保存的菌種溶解，灼燒接種環(huán)至冷卻后，蘸取少量菌液，輕輕劃線接種于指定的平板培養(yǎng)基，37 ℃培養(yǎng)24 h后，挑取單個菌落，接種于MRS液體培養(yǎng)基，37 ℃、150 r/min恒溫?fù)u床震蕩培養(yǎng)，分別在0、4、8、12、24、36和48 h吸取發(fā)酵液，測定其D600 nm值。

1.2.2 植物乳桿菌發(fā)酵上清液的制備 將活化傳代后的植物乳桿菌接種于15 mL MRS液體培養(yǎng)基，37 ℃、150 r/min恒溫?fù)u床震蕩培養(yǎng)24 h后，4 ℃、12 000 r/min離心10 min，取上清經(jīng)0.22 μm無菌濾膜過濾，并收集濾液。

1.2.3 牛津杯法檢測抑菌活性 分別吸取200 μL 1×108CFU/mL的指示菌懸液并均勻涂布于固體培養(yǎng)板上，輕輕放置牛津杯，在杯中加入200 μL發(fā)酵液/發(fā)酵上清液/胞外蛋白，37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h，每種處理做3個平行，測定抑菌圈直徑。

1.2.4 不同培養(yǎng)時間植物乳桿菌發(fā)酵上清液對大腸桿菌抑菌活性的測定 將活化的植物乳桿菌接種于15 mL MRS液體培養(yǎng)基，37 ℃、150 r/min恒溫?fù)u床震蕩培養(yǎng)，分別在培養(yǎng)0、4、8、12、24、36和48 h時吸取200 μL發(fā)酵液，按照1.2.2的方法收集發(fā)酵上清液，按照1.2.3的方法測定其對于大腸桿菌的抑菌活性。

1.2.5 胞外蛋白的制備 將1.2.2收集到的發(fā)酵上清液加入到 3 ku 超濾膜的 15 mL超濾管中，4 ℃、6 500 r/min離心 40 min,收集濃縮液，并將濃縮液稀釋于MRS培養(yǎng)基中，使其蛋白溶液總量與初始發(fā)酵液體積一致。

1.2.6 SDS-PAGE分離胞外蛋白 取適量胞外蛋白樣品，與Loading Buffer(5×)混合，將樣品和Marker依次加入12%分離凝膠的孔中，100 V運行 10 min。然后120 V運行60 min，剝離膠放入考馬斯亮藍(lán)染色液中，室溫染色 1 h。加入脫色液，置于 80 r/min 脫色搖床上，每 20 min 更換一次脫色液至完全脫凈。完成脫色后，用雙蒸水浸泡，參照蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)將所提純的蛋白從凝膠中分離出來。

1.2.7 抑菌蛋白理化特性研究

1.2.7.1 溫度對抑菌蛋白抑菌活性的影響 將抑菌蛋白分別在20、40、60、80、100和121 ℃下水浴30 min，以室溫的抑菌蛋白液為對照組，每組3個重復(fù)，采用牛津杯法測定不同處理后的樣品對大腸桿菌抑菌活性的影響。

1.2.7.2 pH對抑菌蛋白抑菌活性的影響 將抑菌蛋白分別用Tris-HCl 和MES-NaOH 緩沖液調(diào)節(jié)pH至2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、11.0和12.0，靜置2 h，以未處理的抑菌蛋白液為對照組，每組3個重復(fù)，采用牛津杯法測定不同處理后的樣品對大腸桿菌抑菌活性的影響。

無菌蒸餾水分別用Tris-HCl 和MES-NaOH緩沖液調(diào)節(jié)pH至2.0、3.0、4.0、10.0、11.0和12.0,采用牛津杯法測定不同pH緩沖液對大腸桿菌抑菌活性的影響，以排除過酸或過堿條件本身對抑菌效果的影響。

1.2.7.3 蛋白酶對抑菌蛋白抑菌活性的影響 分別用胰蛋白酶與蛋白酶K處理抑菌蛋白，37 ℃水浴30 min，以未處理的抑菌蛋白液為對照組，每組3個重復(fù)，采用牛津杯法測定不同處理后的樣品對大腸桿菌抑菌活性的影響。

1.2.8 胰蛋白酶酶解 ①膠粒脫色：將目的條帶切成膠粒，分裝進(jìn)1.5 mL EP管中，使用 50% ACN-50% 50 mmol/L NH4HCO3溶液脫色。②膠粒脫水：加入 100% ACN 100 μL，放置 30 min，待膠粒呈白色團(tuán)狀，棄去ACN，室溫放置干燥。③還原烷基化：加入適量10 mmol/L DTT 于 56 ℃ 水浴中還原 1 h，吸出棄去。而后加入適量55 mmol/L IAA，暗處室溫反應(yīng)1 h，吸出棄去，按照①②步驟脫色脫水。④酶切：取10 μL 5 ng/μL 酶于EP管中，4 ℃冰箱孵育 40 min，取出后每管補加 5～10 μL 50 mmol/L NH4HCO3溶液，密封于 37 ℃ 水浴中酶切 16 h。⑤肽段提?。杭犹崛∫?5% TFA-50% ACN-45%水)100 μL/管，37 ℃水浴 1 h，超聲 5 min，離心 5 min，重復(fù)1次，真空離心干燥。

1.2.9 LC-MS/MS檢測 經(jīng)胰蛋白酶酶解后的肽段在質(zhì)譜儀中離子化后，通過檢測器分析，可得到各肽段的質(zhì)荷比(m/z)，即一級質(zhì)譜圖；部分肽段再次被破碎和分析，產(chǎn)生二級質(zhì)譜圖，采用質(zhì)譜檢索軟件選擇Uniport蛋白數(shù)據(jù)庫，對獲得的全部質(zhì)譜數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。色譜條件：流動相A：0.1%甲酸，2% ACN；流動相B：0.1%甲酸，80% ACN；流速：600 nL/min；每個組分分析時間：66 min。

1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

試驗數(shù)據(jù)采用SPSS 26.0軟件進(jìn)行單因素方差分析，采用LSD法對抑菌活性進(jìn)行多重比較，采用Duncan’s法對理化特性各組數(shù)據(jù)進(jìn)行多重比較，結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示，P<0.05表示差異顯著。

2 結(jié) 果

2.1 植物乳桿菌GX20200417-1生長曲線

由圖1可知，植物乳桿菌GX20200417-1在4 h后D600 nm值迅速上升，進(jìn)入對數(shù)期，24 h后趨于穩(wěn)定，進(jìn)入平臺期。

圖1 植物乳桿菌GX20200417-1生長曲線Fig.1 Growth curve of Lactobacillus plantarum GX20200417-1

2.2 植物乳桿菌抑菌活性測定

植物乳桿菌GX20200417-1對供試指示菌的抑菌活性見圖2。由圖2可知，植物乳桿菌GX20200417-1對沙門氏菌、大腸桿菌、金黃色葡萄球菌均具有較好的抑菌效果，其中對大腸桿菌的抑菌圈直徑大于沙門氏菌和金黃色葡萄球菌，抑菌圈直徑為13.33 mm,說明植物乳桿菌GX20200417-1對大腸桿菌的抑菌效果優(yōu)于沙門氏菌和金黃色葡萄球菌。

圖2 植物乳桿菌GX20200417-1體外抑菌活性測定Fig.2 Determination of antibacterial activity of Lactobacillus plantarum GX20200417-1 in vitro

2.3 植物乳桿菌發(fā)酵上清液對大腸桿菌的抑制活性測定

由圖3可知，發(fā)酵液及發(fā)酵上清液的抑菌曲線基本相似且一致；在0～4 h內(nèi)沒有抑菌能力，4 h后抑菌能力逐漸增強，并在24 h時達(dá)到最大，此時發(fā)酵液及發(fā)酵上清液產(chǎn)生的抑菌圈直徑分別為13.33和12.21 mm，隨著培養(yǎng)時間的延長，抑菌能力并無顯著變化。MRS培養(yǎng)基產(chǎn)生的抑菌圈直徑為0 mm,對比圖1與圖3可發(fā)現(xiàn)，在4～24 h范圍內(nèi)，抑菌圈直徑與D600 nm值增長趨勢一致，且在24 時達(dá)到穩(wěn)定。

圖3 植物乳桿菌GX20200417-1發(fā)酵液及發(fā)酵上清液抑菌曲線Fig.3 Inhibitory curves of Lactobacillus plantarum GX20200417-1 fermentation broth and fermentation supernatant

2.4 胞外蛋白的制備及抑菌活性測定

將提取的胞外蛋白按比例稀釋于等體積發(fā)酵液的MRS培養(yǎng)基中，以保證單位體積的胞外蛋白全部來自于等體積下的菌液或等體積的發(fā)酵上清液。由圖4可知，稀釋后的胞外蛋白與等體積的發(fā)酵液(1×108CFU/mL)及發(fā)酵上清液可產(chǎn)生相近直徑的抑菌圈，說明植物乳桿菌GX20200417-1胞外蛋白對于大腸桿菌亦具有較好的抑菌活性，進(jìn)一步說明植物乳桿菌代謝產(chǎn)物中的抑菌物質(zhì)主要為抑菌蛋白成分，通過SDS-PAGE對提取的胞外蛋白進(jìn)行分離，分離到胞外蛋白分子質(zhì)量在5～150 ku之間(圖5)。

圖4 植物乳桿菌GX20200417-1發(fā)酵液/發(fā)酵上清/胞外蛋白/培養(yǎng)基對大腸桿菌的抑菌效果Fig.4 Inhibitory effect of Lactobacillus plantarum GX20200417-1 fermentation broth，fermentation supernatant，extracelluar protein and medium on Escherichia coli

M,蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)；1，胞外蛋白；2，培養(yǎng)基M,Protein Marker；1，Extracellular protein；2，Medium圖5 胞外蛋白SDS-PAGEFig.5 SDS-PAGE of extracellular protein

2.5 抑菌蛋白理化特性

與對照組相比，胞外蛋白經(jīng)20、40、60和80 ℃水浴處理后，抑菌活性均無顯著變化(P>0.05)，但其在100和121 ℃處理后，抑菌活性明顯下降，與對照組及其他溫度處理組差異顯著(P<0.05)(圖6)。不同pH緩沖液處理抑菌蛋白后，抑菌蛋白在pH為6.0～8.0的環(huán)境下，抑菌活性較好，與對照組相比，在過酸或過堿條件下抑菌活性均受到抑制(P<0.05)(圖7)。為驗證pH緩沖液本身是否對大腸桿菌產(chǎn)生抑菌影響，在pH分別為2.0～4.0和10.0～12.0的條件下對大腸桿菌做抑菌處理，結(jié)果顯示，pH為2.0～4.0和10.0～12.0的無菌緩沖液均未對大腸桿菌產(chǎn)生抑菌影響(圖8)。與對照組相比，用蛋白酶K及胰蛋白酶處理抑菌蛋白后，抑菌蛋白抑菌活性顯著下降(P<0.05)(圖9)。

與對照組相比，*，差異顯著(P<0.05)；無*，差異不顯著(P>0.05)。下同Compared with control group,*,Significant difference (P<0.05);No*,No significant difference (P>0.05).The same as below圖6 溫度對抑菌蛋白抑菌活性的影響Fig.6 Effect of temperature on antibacterial activity of antibacterial protein

圖7 pH對抑菌蛋白抑菌活性的影響Fig.7 Effect of pH on antibacterial activity of antibacterial protein

圖8 不同pH緩沖液對大腸桿菌抑菌活性的影響Fig.8 Antibacterial activity of different pH buffer on Escherichia coli

圖9 抑菌蛋白對蛋白酶的敏感性Fig.9 Sensitivity of antibacterial protein to protease

2.6 抑菌蛋白的抑菌特性研究

為進(jìn)一步研究抑菌蛋白的成分，用液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜分析儀進(jìn)行分析，得到胞外蛋白總離子圖譜(圖10)，質(zhì)譜采集的數(shù)據(jù)，經(jīng)過軟件MaxQuant(1.6.2.10)數(shù)據(jù)庫檢索，共檢測出5種可信度較高且與抑菌作用相關(guān)的蛋白質(zhì)，依次為片球菌素 pediocin PA-1、輔助蛋白、溶菌素、聚酮合酶和LysM peptidoglycan-binding domain-containing protein(表1)。Uniport 蛋白數(shù)據(jù)庫功能預(yù)測顯示：pediocin PA-1為廣譜性的細(xì)菌素，溶菌素具有溶菌酶活性，二者主要通過破壞細(xì)菌細(xì)胞壁與細(xì)胞膜，從而達(dá)到抑菌效果。輔助蛋白主要參與細(xì)菌素的合成過程，聚酮合酶參與抗生素的合成。LysM peptidoglycan-binding domain-containing protein在蛋白鑒定結(jié)果中顯示可信度最高，但在檢索數(shù)據(jù)庫中未顯示相關(guān)功能。

圖10 植物乳桿菌GX20200417-1胞外蛋白總離子圖譜Fig.10 Total ion map of extracellular protein of Lactobacillus plantarum GX20200417-1

表1 植物乳桿菌GX20200417-1抑菌蛋白分析

3 討 論

植物乳桿菌的主要益生特性之一是其廣譜的抑菌性，抑菌特性主要依賴于其產(chǎn)生的復(fù)雜代謝產(chǎn)物，包括有機酸、脂肪酸、抑菌蛋白或小分子抗菌肽等。國內(nèi)外學(xué)者對抑菌蛋白的分離純化做了相關(guān)研究，分離純化方法主要有層析法、蒸發(fā)濃縮法、有機溶劑法、超濾法等[13]。本研究采用低溫離心和超濾法分離植物乳桿菌代謝產(chǎn)物中的抑菌蛋白，并通過抑菌活性測定發(fā)現(xiàn)抑菌蛋白對大腸桿菌具有良好的抑菌效果，徐棟等[14]從植物乳桿菌中分離出的細(xì)菌素LZ222,以及翟佳琳等[15]分離出的抑菌蛋白對大腸桿菌同樣具有抑菌活性，與之不同的是Todorov等[16]分離出的細(xì)菌素ST26MS和ST28MS對大腸桿菌并無抑菌效果。本研究通過溫度、pH、酶處理等方法研究植物乳桿菌產(chǎn)生的抑菌蛋白的理化特性，發(fā)現(xiàn)抑菌蛋白具有較好的熱穩(wěn)定性，經(jīng)121 ℃處理后抑菌活性并未完全喪失；抑菌蛋白經(jīng)不同pH緩沖液處理后均能保持抑菌活性，且在pH為6.0～8.0時抑菌活性較強，本研究利用極酸極堿的無菌緩沖液對大腸桿菌做抑菌處理，證明緩沖液并未對大腸桿菌產(chǎn)生抑菌影響，這與在酸性條件下抑菌蛋白依然保持較高抑菌活性的結(jié)果相違背[17]，與在堿性環(huán)境下抑菌活性減弱或喪失的結(jié)果保持一致[18-19]，說明過酸過堿環(huán)境可能使抑菌蛋白的構(gòu)象發(fā)生改變，對其活性產(chǎn)生影響。抑菌蛋白經(jīng)胰蛋白酶、蛋白酶K處理后抑菌活性明顯減弱，可能是抑菌蛋白發(fā)生部分降解，這一結(jié)果與徐志嬌等[20]分離出的抑菌蛋白及Seval等[21]分離出的KT11的抑菌活性相似。

為進(jìn)一步研究植物乳桿菌產(chǎn)生的抑菌蛋白的抑菌特性，通過LC-MS/MS分析鑒定出5種可信度較高且與抑菌作用相關(guān)的蛋白質(zhì)，依次是片球菌素 pediocin PA-1、輔助蛋白、溶菌素、聚酮合酶和LysM peptidoglycan-binding domain-containing protein。

pediocin PA-1是由51個氨基酸組成的細(xì)菌素，屬于植物乳桿菌產(chǎn)生的ClassⅡa型細(xì)菌素，其殺菌機制主要是在細(xì)胞膜上形成孔洞，使細(xì)胞內(nèi)離子外泄，引起質(zhì)子驅(qū)動勢的耗散，最終引發(fā)病原菌死亡[22]。Alvarez等[23]證實細(xì)菌素以病原體的細(xì)胞膜為攻擊靶點，形成孔洞，導(dǎo)致內(nèi)容物外泄，從而對大腸桿菌發(fā)揮抑菌作用。趙瑞香等[24]發(fā)現(xiàn)細(xì)菌素作用大腸桿菌后細(xì)胞膜通透性增大，胞內(nèi)K+和ATP大量外泄，細(xì)胞物質(zhì)及能量代謝失衡，最終引發(fā)大腸桿菌死亡。已證實化學(xué)合成的pediocin PA-1可替代天然細(xì)菌素完成其抗菌功能。輔助蛋白是由174個氨基酸形成的小分子蛋白，主要功能是參與細(xì)菌素的生物合成，輔助蛋白具有高度的同源性，推測其具有輔助細(xì)菌素轉(zhuǎn)運的功能。

Lysin是由434個氨基酸形成的蛋白質(zhì)，具有溶菌酶活性，通過水解細(xì)菌細(xì)胞壁的肽聚糖發(fā)揮其抗菌作用，殺菌活性高且耐藥性強，被認(rèn)為是替抗產(chǎn)品的潛在候選蛋白，Li等[25]發(fā)現(xiàn)高度嵌和的lysin對金黃色葡萄球菌在體內(nèi)外均發(fā)揮抑菌活性。Chen等[26]報道了一種獨特的lysin嵌合蛋白，該嵌合蛋白對多藥耐藥鮑曼不動桿菌的抑菌活性提高十萬倍左右。有關(guān)植物乳桿菌lysin的研究罕見報道，從植物乳桿菌GX20200417-1鑒定出的lysin可作為分離純化的重要方向。

聚酮合酶廣泛存在于植物、細(xì)菌和真菌中，是一類與次級代謝有著密切關(guān)系的酶類，催化合成結(jié)構(gòu)多樣的聚酮化合物，具有良好的抗菌作用[27]。根據(jù)Uniport蛋白數(shù)據(jù)庫分析，植物乳桿菌代謝產(chǎn)物中的聚酮合酶能催化抗生素的生物合成，其對植物乳桿菌的抑菌效果發(fā)揮間接作用。

LysM peptidoglycan-binding domain-containing protein是由187個氨基酸形成的小分子蛋白，質(zhì)譜結(jié)果經(jīng)Uinport數(shù)據(jù)庫比對，蛋白可信度最高。LysM 結(jié)構(gòu)域存在于許多細(xì)菌的肽聚糖水解酶中，主要作用機制是識別含有N-乙酰氨基葡萄糖(GlcNAc)殘基的肽聚糖,已有研究者在植物乳桿菌中鑒定出一種與免疫相關(guān)的葡聚糖水解酶即N-乙酰氨基葡糖苷酶(Acm2)[28]，葡聚糖水解酶C端含有3個重復(fù)的LysM 結(jié)構(gòu)域[29]，研究證明LysM結(jié)構(gòu)域通過與肽聚糖的結(jié)合識別病原菌，并通過某些未知的途徑調(diào)控抗菌肽的表達(dá)，從而起到有效的抑菌作用[30]。

以上僅是分析鑒定出5種可信度較高的抑菌蛋白，并未對抑菌蛋白進(jìn)一步分離得到單一物質(zhì)，若對單一物質(zhì)進(jìn)行抑菌機理的深入研究，可為替抗產(chǎn)品的開發(fā)提供全新思路。

4 結(jié) 論

植物乳桿菌GX20200417-1抑菌譜廣，能有效抑制多種病原菌的增殖。本研究采用超濾法獲得其抑菌蛋白混合物，抑菌活性強，具有較好的耐熱、耐酸堿性，在pH 6.0～8.0時抑菌活性最佳，對蛋白酶敏感。利用LC-MS/MS分析鑒定出5種可信度較高且與抑菌作用相關(guān)的蛋白質(zhì)，蛋白功能分析顯示，這些抑菌蛋白可通過破壞細(xì)菌細(xì)胞膜及細(xì)胞壁直接或間接發(fā)揮抑菌作用。本研究對抑菌蛋白的分離及抑菌機制的解析可為新型抗菌制劑的開發(fā)提供參考。