馬麗英,馬新福,馬春蘭
食管癌是常見的消化道惡性腫瘤,已經(jīng)成為全球第七大常見癌癥,中國的發(fā)病率位于全球的第五位[1]。目前食管癌的治療包括手術切除和放療,可顯著改善食管癌患者的預后。然而,由于診斷延遲和轉(zhuǎn)移頻繁等因素,其5年生存率(41.7%)仍然不能令人滿意[2]。因此,探索食管癌的新治療靶點對于早期診斷和改善臨床結局至關重要。miR-15b已被證明是肝癌[3]、子宮頸癌[4]和子宮內(nèi)膜癌[5]的重要調(diào)節(jié)劑。Shao等[6]發(fā)現(xiàn)miR-15b與食管鱗狀細胞癌有關,是其新型生物學標志物[7]。有文獻報道食管癌患者外周血中miR-15b呈低表達,過表達miR-15b可抑制食管癌細胞的活力、遷移和侵襲,并促進食管癌細胞凋亡[8-9],miR-15b可能是食管癌中潛在的生物學標志物。LPAR3與多種癌癥相關[10],已被證明是miR-15b的靶基因。毛莉等[5]發(fā)現(xiàn)miR-15b可通過靶向LPAR3抑制子宮內(nèi)膜癌細胞增殖。目前miR-15b是否通過靶向LPAR3參與食管癌生物學行為的調(diào)控尚不清楚。本文旨在探討miR-15b靶向LPAR3對食管癌細胞增殖、遷移及侵襲的影響,為食管癌的治療提供參考。
1.1 材料人食管上皮細胞HEEpiC、人食管癌細胞Eca109購自上海澤葉公司;TRIzol RNA分離試劑及SYBR Premix Ex Taq試劑盒均購自日本TaKaRa公司;Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑盒購自美國Thermo公司;miR-15b mimic、miR-15b陰性對照(miR-NC)、pcDNA-LPAR3和pcDNA3.1載體以及PCR引物序列由上海GenePharma公司設計合成;Transwell小室(美國Corning公司);RIPA裂解液(P0013B)、BCA試劑盒(P0010)均購自碧云天公司;兔抗LPAR3(ab137497)、Cyclin D1(ab16663)、MMP-2(ab92536)、MMP-9(ab76003)、β-actin(ab8227)、山羊抗兔IgG H&L(HRP)(ab205718),均購自英國Abcam公司。
ABI Prism 7300型熒光定量PCR系統(tǒng)(美國應用生物公司);倒置熒光顯微鏡(IX73,日本Olympus公司);iMark680多功能酶標儀(美國Bio-Rad公司)。
1.2 方法
1.2.1分組及轉(zhuǎn)染 取HEEpiC和Eca109細胞接種于RPMI 1640培養(yǎng)基中,在37 ℃、5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),隔天換液,每2~3天傳代一次,在細胞達到指數(shù)增長期時開始實驗。取對數(shù)期生長的Eca109細胞,按2×106個/孔接種于24孔板,分成5個處理組。(1)對照組:未進行任何轉(zhuǎn)染的Eca109細胞;(2)miR-15b mimic組:將100 nmol/L miR-15b mimic轉(zhuǎn)染至Eca109細胞;(3)miR-NC組:將100 nmol/L miR-15b mimic陰性對照(miR-NC)轉(zhuǎn)染至Eca109細胞;(4)miR-15b mimic+pcDNA3.1組:將miR-15b mimic和pcDNA3.1空載體共轉(zhuǎn)染至Eca109細胞;(5)miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組:將miR-15b mimic和pcDNA-LPAR3共轉(zhuǎn)染至Eca109細胞。轉(zhuǎn)染采用Lipofectamine 2000試劑;轉(zhuǎn)染48 h后收獲細胞以進行以下實驗。另設對數(shù)期生長的HEEpiC細胞為空白組。
1.2.2qRT-PCR檢測細胞中miR-15b和LPAR3 mRNA的表達 使用TRIzol試劑提取總RNA,使用分光光度計測量總RNA的濃度。按照試劑盒說明書將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,進行PCR擴增??偡磻w系20 μL:cDNA(200 ng/μL) 2 μL,SYBR Premix Ex Taq(2×)10 μL,上、下游引物各0.4 μL,ddH2O 7.2 μL。循環(huán)條件:94 ℃ 10 min,94 ℃ 10 s,60 ℃ 20 s,72 ℃ 1 min,40個循環(huán)。用U6或β-actin作為對照,相對miR-15b和LPAR3 mRNA的表達量采用2-ΔΔCt方法計算。引物序列見表1。
1.2.3MTT法檢測細胞增殖活力 轉(zhuǎn)染48 h后,將Eca109細胞以2×103個/孔的濃度接種到96孔板中,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,每孔中加入20 μL MTT(5 mg/mL),于培養(yǎng)箱中孵育4 h,吸去上層清液后加入150 μL DMSO,于490 nm波長處測定各孔的吸光度(OD),并設置空白孔(只加培養(yǎng)基),計算細胞增殖率。細胞增殖率=(實驗組OD值-空白孔OD值)/(對照組OD值-空白孔OD值)×100%。
1.2.4劃痕實驗檢測細胞遷移能力 取轉(zhuǎn)染48 h后的各組Eca109細胞接種于6孔板中,繼續(xù)培養(yǎng)待細胞完全貼壁后,用移液器尖端在每個孔內(nèi)劃一道痕,置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),在倒置顯微鏡下觀察,分別在同一位置的0 h和48 h拍照,觀察劃痕愈合情況,計算劃痕愈合率。劃痕愈合率(%)=(1-48 h劃痕寬度/0 h劃痕寬度)×100%
1.2.5Transwell實驗檢測細胞侵襲能力 將轉(zhuǎn)染48 h后的各組Eca109細胞重懸于無血清培養(yǎng)基中,并將200 μL(約3×104個細胞)細胞懸液置于上室中。將含有10%胎牛血清(600 μL)的RPMI 1640培養(yǎng)基添加到下室中,37 ℃、5%CO2孵育24 h,取出Transwell小室,室溫下用10%中性福爾馬林固定20 min,37 ℃用0.1%結晶紫染色15 min,ddH2O清洗小室下表面,用濕棉簽小心擦除上室底部膜表面的細胞。晾干后在顯微鏡下隨機取5個視野,拍照;取細胞穿膜數(shù),計算平均值表示細胞侵襲能力。
1.2.6Western blot檢測Eca109細胞增殖、遷移、侵襲相關蛋白的表達 使用RIPA裂解液提取細胞中蛋白質(zhì),使用BCA試劑盒對蛋白質(zhì)濃度進行定量。取等量蛋白質(zhì)樣品上樣(30 μg/泳道),10% SDS-PAGE分離蛋白質(zhì),并通過半干轉(zhuǎn)移將其轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。將膜用5%脫脂牛奶封閉,并在4 ℃下與一抗(LPAR3、Cyclin D1、MMP-2、MMP-9、β-actin,1∶1 000)孵育過夜。第二天,將膜與偶聯(lián)辣根過氧化物酶的二抗孵育(1∶2 000)2 h,然后使用化學發(fā)光試劑盒(ECL)進行顯色。以β-actin為內(nèi)參,分析結果。
2.1 Eca109細胞中miR-15b和LPAR3 mRNA水平與空白組相比,對照組和miR-NC組Eca109細胞中miR-15b水平明顯降低,LPAR3 mRNA水平顯著升高(P均<0.05);與對照組相比,miR-15b mimic組細胞miR-15b水平顯著升高,LPAR3 mRNA水平顯著降低(P均<0.05);與miR-15b mimic組相比,miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組細胞LPAR3 mRNA水平明顯升高(P<0.05,表2)。
表2 各組食管癌細胞中miR-15b和LPAR3 mRNA水平
2.2 Eca109細胞的增殖活力對照組和miR-NC組Eca109細胞增殖率差異無統(tǒng)計學意義[(100.00±0)%vs(101.23±5.20)%,P>0.05];與對照組相比,miR-15b mimic組Eca109細胞增殖率顯著降低[(64.57±6.11)%vs(100.00±0)%,P<0.05];與miR-15b mimic組相比,miR-15b mimic+pcDNA3.1組Eca109細胞增殖率差異無統(tǒng)計學意義[(65.14±5.19)%vs(64.57±6.11)%,P>0.05],miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組細胞增殖率明顯升高[(90.62±7.07)%vs(64.57±6.11)%,P<0.05]。
2.3 Eca109細胞的遷移能力劃痕實驗結果顯示,對照組和miR-NC組的劃痕愈合率差異無統(tǒng)計學意義[(63.45±7.20)%vs(61.83±7.16)%,P>0.05];與對照組相比,miR-15b mimic組的劃痕愈合率顯著降低[(36.52±4.29)%vs(63.45±7.20)%,P<0.05];與miR-15b mimic組相比,miR-15b mimic+pcDNA3.1組劃痕愈合率差異無統(tǒng)計學意義[(35.01±4.30)%vs(36.52±4.29)%,P>0.05],miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組的劃痕愈合率顯著升高[(52.05±5.22)%vs(36.52±4.29)%,P<0.05,圖1]。
圖1 劃痕實驗檢測各組Eca109細胞遷移能力:A.對照組;B.miR-NC組;C.miR-15b mimic組;D.miR-15b mimic+pcDNA3.1組;E.miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組
2.4 各組Eca109細胞的侵襲能力Transwell侵襲實驗結果顯示,對照組和miR-NC組Eca109細胞進入Transwell小室下層的數(shù)量差異無統(tǒng)計學意義(155.31±14.23vs158.46±15.71,P>0.05);與對照組相比,miR-15b mimic組Eca109細胞進入Transwell小室下層的數(shù)量顯著降低(101.33±11.45vs155.31±14.23,P<0.05);與miR-15b mimic組相比,miR-15b mimic+pcDNA3.1組Eca109細胞進入Transwell小室下層的數(shù)量差異無統(tǒng)計學意義(100.51±12.34vs101.33±11.45,P>0.05),miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組Eca109細胞進入Transwell小室下層的數(shù)量顯著增加(132.88±13.02vs101.33±11.45,P<0.05,圖2)。
圖2 Transwell小室實驗檢測各組Eca109細胞侵襲能力:A.對照組;B.miR-NC組;C.miR-15b mimic組;D.miR-15b mimic+pcDNA3.1組;E.miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組
2.5 各組Eca109細胞LPAR3以及增殖、遷移與侵襲相關蛋白的表達Western blot結果顯示,對照組和miR-NC組Eca109細胞LPAR3、Cyclin D1、MMP-2、MMP-9蛋白表達差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);與對照組相比,miR-15b mimic組Eca109細胞中LPAR3、Cyclin D1、MMP-2、MMP-9蛋白表達顯著降低(P<0.05);與miR-15b mimic組相比,miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組Eca109細胞上述蛋白表達明顯升高(表3,圖3)。
圖3 各組Eca109細胞LPAR3和Cyclin D1、MMP-2、MMP-9蛋白表達:A.對照組;B.miR-NC組;C.miR-15b mimic組;D.miR-15b mimic+pcDNA3.1組;E.miR-15b mimic+pcDNA-LPAR3組
表3 各組Eca109細胞LPAR3和Cyclin D1、MMP-2、MMP-9蛋白表達
miRNA作為各種腫瘤的潛在治療靶標,越來越受到重視[11-12]。miR-15b是位于染色體3q25上的重要RNA分子[13]。文獻報道,miR-15b可抑制神經(jīng)母細胞瘤[14]、子宮頸癌[4,15]和子宮內(nèi)膜癌[5,16]腫瘤細胞的惡性生物學行為。有研究者發(fā)現(xiàn)從食管癌患者中分離出的外周血單核細胞中miR-15b水平顯著低于健康志愿者;且miR-15b表達與食管癌腫瘤大小、淋巴結轉(zhuǎn)移、TNM分期、纖維膜浸潤和組織學分級顯著相關[8-9]。本實驗通過體外實驗比較人正常食管上皮細胞HEEpiC和人食管癌細胞Eca109中miR-15b的表達,結果顯示Eca109細胞中miR-15b水平顯著低于HEEpiC細胞,與文獻報道一致;而miR-15b過表達可抑制細Cyclin D1、MMP-2和MMP-9的表達,抑制食管癌細胞的增殖活力、遷移和侵襲能力,提示miR-15b可能在食管癌中起抑癌作用。
LPAR3屬于典型的LPA受體,與LPAR1、LPAR2不同,LPAR3在正常組織中較少表達;而在腫瘤組織中表達上調(diào),可影響腫瘤細胞增殖、遷移和侵襲等過程[17-19]。Shi等[10]發(fā)現(xiàn)circRNA LPAR3可激活PI3K/Akt通路,在體、內(nèi)外促進食管鱗狀細胞癌細胞的遷移、侵襲和轉(zhuǎn)移。王亞莉等[17]發(fā)現(xiàn)miR-218-5p可通過靶向下調(diào)LPAR3抑制子宮頸癌細胞增殖、遷移和侵襲。LPAR3已被證明是miR-15b的靶基因[5]。本組發(fā)現(xiàn)與HEEpiC細胞相比,Eca109細胞中miR-15b表達降低的同時伴LPAR3 mRNA水平的升高,通過miR-15b mimic轉(zhuǎn)染上調(diào)miR-15b后,LPAR3 mRNA和蛋白水平降低;為進一步驗證miR-15b過表達是否以LPAR3依賴性方式影響Eca109細胞的生物學行為,本組將miR-15b mimic和pcDNA-LPAR3共轉(zhuǎn)染了Eca109細胞,發(fā)現(xiàn)共轉(zhuǎn)染組與miR-15b mimic組相比,Eca109細胞中LPAR3的表達顯著增加,同時細胞中Cyclin D1、MMP-2和MMP-9蛋白的表達均增加,可顯著減弱miR-15b mimic對細胞增殖、遷移和侵襲的抑制能力。這提示miR-15b可能通過下調(diào)LPAR3,抑制食管癌細胞的增殖、遷移和侵襲。
綜上所述,過表達miR-15b可能通過下調(diào)LPAR3,抑制食管癌細胞的增殖、遷移和侵襲。本實驗從體外細胞水平進行初步分析,由于體內(nèi)外腫瘤微環(huán)境存在差異,尚需進行體內(nèi)動物實驗進一步明確miR-15b對食管癌的影響。