李菁,杜少兵 ,楊蕾 ,周慧慧 ,孟祎 ,薛志鵬,王小平 ,2,白吉慶 ,2
(1.陜西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,陜西 咸陽 712046;2.陜西省中藥原料質(zhì)量監(jiān)測技術(shù)服務(wù)中心,陜西 咸陽 712046)
紫丁香SyringaoblateLindl.是木犀科丁香屬多年生灌木或小喬木[1],具有清熱解毒、利濕退黃的功效[2],用于治療急性瀉痢、黃疸型肝炎、火眼、瘡瘍等[3-4]。現(xiàn)代研究表明,紫丁香葉中含有黃酮類、苯丙素類、三萜類、環(huán)烯醚萜類等多種化學(xué)成分[3-8],其中黃酮類化合物具有抗腫瘤、抗氧化、抗病毒、抗微生物、抗炎鎮(zhèn)痛、保肝降血脂等多種藥理活性[9-11]。響應(yīng)面法是一種綜合試驗(yàn)設(shè)計和數(shù)學(xué)建模的優(yōu)化方法,可全面考察各因素之間的交互作用,改善正交試驗(yàn)設(shè)計中精度與預(yù)測性較差等不足[12]。由于黃酮類成分具有多種生物活性,廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、化妝品等行業(yè)[13],開發(fā)應(yīng)用前景較廣,而關(guān)于紫丁香葉總黃酮的研究報道較少,因此,本研究采用響應(yīng)面法優(yōu)化紫丁香葉總黃酮的超聲提取工藝,擬為紫丁香葉總黃酮的高效提取及后續(xù)的開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)。
UV-6100 DOUBLE BEAM紫外-可見分光光度計(上海美譜達(dá)儀器有限公司);KQ-300VDE數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);十萬分之一電子分析天平(瑞士MettlerToledo公司,精度:0.01 mg,量程:81 g/220 g~0.01 g/0.1 mg);DHG-9075A干燥箱(上海恒科有限公司);LG-01高速中藥粉碎機(jī)(溫嶺市林大機(jī)械有限公司)。
紫丁香葉采自陜西省富縣,經(jīng)陜西中醫(yī)藥大學(xué)白吉慶教授鑒定為木犀科丁香屬紫丁香Syringa oblataLindl.的干燥葉(標(biāo)本存放于陜西中醫(yī)藥大學(xué)中藥資源普查樣本儲藏室,標(biāo)本號:20200412LY);蘆丁對照品(純度≥92.5%,批號10080-200707,中國藥品生物制品檢定所);無水乙醇、Al(NO3)3、NaOH、NaNO2(天津市天力化學(xué)試劑有限公司)均為分析純。
2.1.1 對照品溶液的制備 取蘆丁4.60 mg,精密稱定,置于25 mL量瓶中,加適量95%(體積分?jǐn)?shù),下同)的乙醇溶解后定容,即得0.18 mg/mL的對照品溶液。
2.1.2 供試品溶液制備 精密稱定一定量的紫丁香葉粉末(過二號篩),按照料液比(g∶mL)1∶20加入55%(體積分?jǐn)?shù),下同)乙醇,按照超聲波功率為90W、頻率為45 kHz超聲50 min,提取2次,合并2次續(xù)濾液并定容,即得。
2.1.3 檢測波長的選擇 精密吸取供試品溶液、對照品溶液各1 mL,置于25 mL量瓶中,加入5%NaNO2溶液1 mL,混勻,放置6 min,再加入10%Al(NO3)31 mL,混勻,放置6 min,再加入4%NaOH溶液10 mL,用相應(yīng)溶劑定容,混勻,放置15 min。以相應(yīng)試劑作為空白,在波長為400~800 nm范圍進(jìn)行測定,結(jié)果顯示上述2種溶液在505 nm處均有最大吸收,故選擇檢測波長為505 nm。
2.1.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備 分別精密吸取上述對照品溶液 0、1、2、3、4、5 mL,置于 25 mL 量瓶中,按“2.1.3”項(xiàng)方法進(jìn)行顯色,在505 nm處測定吸光度。將蘆丁質(zhì)量濃度(mg/mL)設(shè)為橫坐標(biāo)、吸光度設(shè)為縱坐標(biāo),線性回歸,得回歸方程y=10.784x+0.008(r=0.999 5),表明在0.000~0.092 mg/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系。
2.1.5 精密度試驗(yàn) 精密吸取對照品溶液,按“2.1.3”項(xiàng)方法進(jìn)行顯色,在505 nm處測定,連續(xù)測定6次,結(jié)果測得吸光度的RSD值為0.01%,表明儀器精密度良好。
2.1.6 重復(fù)性試驗(yàn) 精密稱定樣品粉末,按“2.1.2”項(xiàng)方法平行制備6份供試品溶液,按“2.1.3”項(xiàng)方法進(jìn)行顯色,在505 nm處測定吸光度計算總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果顯示總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)為(107.43±1.31)mg/g,RSD值為0.75%,表明方法重復(fù)性良好。
2.1.7 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取同一供試品溶液,按“2.1.3”項(xiàng)方法進(jìn)行顯色,分別于0、1、2、4、6、8、12 h在505 nm處測定吸光度,結(jié)果顯示吸光度的RSD值為2.14%,表明供試品溶液在12 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。
2.1.8 加樣回收率試驗(yàn) 取總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)已知的樣品1 g,精密稱定6份,分別加入對照品0.05 g,按“2.1.2”項(xiàng)方法制備供試品溶液,按“2.1.3”項(xiàng)方法進(jìn)行顯色,在505 nm測定吸光度,計算加樣回收率,結(jié)果顯示平均加樣回收率為(98.07±1.46)%,其RSD為1.49%,見表1,表明方法的加樣回收率符合要求。
表1 總黃酮加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果Table 1 The recovery results of total flavonoids
根據(jù)文獻(xiàn)報道和預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,分別考察料液比、提取時間、乙醇體積分?jǐn)?shù)、超聲溫度、提取次數(shù)對紫丁香葉總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響。
2.2.1 料液比 取樣品粉末1 g,精密稱定,按照料液比為1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60,分別加入體積分?jǐn)?shù)為55%的乙醇溶液,溫度設(shè)定50℃,超聲處理50 min,超聲波功率為90 W、頻率為45 kHz,提取1次,測定吸光度計算總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見圖1??梢?,料液比(g∶mL)為1∶20時,總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)最多;料液比大于1∶40時,總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)無顯著性差異,為節(jié)約溶劑,故選定料液比(g∶mL)為1∶20。
圖1 不同料液比對總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Figure 1 Effect of different material liquid ratio on the mass fraction of total flavonoids(n=3)
2.2.2 乙醇體積分?jǐn)?shù) 取樣品粉末1 g,精密稱定,按照料液比為1∶20,分別加入25%、35%、45%、55%、65%、75%的乙醇,50℃、超聲波功率為90W、頻率為45 kHz超聲提取50 min,提取1次,測定吸光度計算總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見圖2??梢姡掖俭w積分?jǐn)?shù)為55%時總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)最多,故選定乙醇體積分?jǐn)?shù)為55%。
圖2 不同乙醇體積分?jǐn)?shù)對總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Figure 2 Effect of different ethanol volume fraction on the mass fraction of total flavonoids(n=3)
2.2.3 提取時間 取樣品粉末1 g,精密稱定,加入體積分?jǐn)?shù)為55%的乙醇20 mL,50℃分別超聲提取10、20、30、40、50、60 min,測定吸光度計算總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見圖3。可見,提取時間50 min時總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)最多,故選定提取時間為50 min。
圖3 不同超聲時間對總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Figure 3 Effect of different extraction time on the mass fraction of total flavonoids(n=3)
2.2.4 超聲溫度 取樣品粉末1 g,精密稱定,加入體積分?jǐn)?shù)為55%的乙醇溶液20 mL,分別于溫度20、30、40、50、60 ℃進(jìn)行超聲提取50 min,測定吸光度計算總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見圖4??梢姡暅囟葹?0℃時總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)最多,故選定超聲溫度為50℃。
圖4 不同超聲溫度對總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Figure 4 Effect of different ultrasonic temperature on the mass fraction of total flavonoids(n=3)
2.2.5 提取次數(shù) 取樣品粉末1 g,精密稱定,加入體積分?jǐn)?shù)為55%的乙醇溶液20 mL,50℃分別超聲提取1、2、3次,50 min/次,測定吸光度計算總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見圖5??梢姡崛〈螖?shù)為2次時總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)最多,故選定提取次數(shù)為2次。
圖5 不同提取次數(shù)對總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響Figure 5 Effect of different extraction times on the mass fraction of total flavonoids(n=3)
2.3.1 響應(yīng)面法實(shí)驗(yàn)設(shè)計 通過單因素試驗(yàn),初步確定料液比(g∶mL)為1∶20,乙醇體積分?jǐn)?shù)為55%,提取時間50 min,超聲溫度50℃,提取2次較為合適,在單因素試驗(yàn)篩選的基礎(chǔ)上結(jié)合耗能等因素,以料液比(A)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(B)、提取時間(C)為影響因素,總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)為評價指標(biāo),采用Design-Expert 11軟件,根據(jù)Box-Behnken設(shè)計原理,進(jìn)行3因素3水平17個實(shí)驗(yàn)點(diǎn)Box-Behnken設(shè)計-響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn)。因素水平見表2,試驗(yàn)結(jié)果見表3。
表2 響應(yīng)面因素水平表Table 2 Coding table of response surface factor level
表3 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計與試驗(yàn)結(jié)果Table 3 Design and results of response surface test
2.3.2 數(shù)學(xué)模型的建立及分析 使用Design Expert軟件進(jìn)行擬合,得到的回歸方程如下:Y=107.15+3.62A-2.81B-2.14C-2.31AB+0.7075AC-0.3625BC-20.30A2-8.92B2-8.15C2,R2=0.9891,與 1 接近,說明通過二次回歸得到的綜合評分模型與試驗(yàn)擬合較好。方差分析結(jié)果見表4。
表4 回歸模型方差分析結(jié)果Table 4 The results of variance analysis of regression model
由表4可知,模型極顯著(F=70.82,P<0.0001),失擬項(xiàng)不顯著(P=0.1381>0.05),說明此模型有統(tǒng)計學(xué)意義。各因素對紫丁香葉總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響由大到小的順序?yàn)锳>B>C,即料液比>乙醇體積分?jǐn)?shù)>提取時間,其中二次項(xiàng)A2、B2、C2的影響極顯著(P<0.01),可利用此模型來分析和預(yù)測紫丁香葉中的總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)。
2.3.3 響應(yīng)面交互作用分析 用Design Expert 11軟件繪制的各因素交互作用的曲面圖與等高線圖,可直觀地反映各因素間的交互作用對響應(yīng)值的影響程度,響應(yīng)面圖的坡度越陡表示兩個因素之間交互作用越大,等高線圖為橢圓時表示兩因素交互作用顯著[14-17]。由圖6可知,料液比與乙醇體積分?jǐn)?shù)之間的曲線最陡峭、提取時間次之,乙醇體積分?jǐn)?shù)與提取時間的等高線圖最圓,說明料液比與乙醇體積分?jǐn)?shù)之間的交互作用對響應(yīng)值(總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù))的影響最顯著,乙醇體積分?jǐn)?shù)與提取時間之間的交互作用對響應(yīng)值(總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù))的影響最不顯著,與表4中 AB(F=4.89,P=0.062 7)>AC(F=0.457 4,P=0.520 6)>BC(F=0.120 1,P=0.739 1)相對應(yīng)。
圖6 各因素交互作用的曲面圖與等高線圖Figure 6 Surface and contour plots of the interaction of various factors
2.3.4 驗(yàn)證試驗(yàn) 通過Design Expert 11軟件計算得出最優(yōu)提取工藝為:料液比(g∶mL)1∶20.964、乙醇體積分?jǐn)?shù)53.322%、提取時間48.769 min,預(yù)測總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)為107.692 mg/g??紤]到實(shí)際實(shí)驗(yàn)的可操作性,將優(yōu)化條件修正為料液比(g∶mL)1∶20、乙醇體積分?jǐn)?shù)55%、提取時間50 min,紫丁香葉總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)為(106.50±1.21)mg/g(n=3),與預(yù)測值107.69 mg/g接近,表明方法穩(wěn)定可行。
植物中總黃酮的提取方法有回流提取法、熱浸提法、超聲提取法、微波萃取提取法等[18-19],超聲波提取可利用超聲波的空化作用增加溶劑穿透能力,有效破壞組織的細(xì)胞壁,促進(jìn)總黃酮釋放到溶劑中從而提高提取率,提取率相對較高且節(jié)能環(huán)保[20-21]。常用的優(yōu)化提取工藝的方法有響應(yīng)面法、正交試驗(yàn)法、均勻設(shè)計法等,均勻設(shè)計用于水平數(shù)較多且各因素水平數(shù)不等的情況[14],響應(yīng)面法是一種綜合試驗(yàn)設(shè)計和數(shù)學(xué)建模的優(yōu)化方法,可全面考察各因素之間的交互作用,改善正交試驗(yàn)設(shè)計中精度與預(yù)測性較差等不足[12]。因此本研究采用響應(yīng)面法優(yōu)化紫丁香葉總黃酮超聲提取工藝。
單因素試驗(yàn)中,分別考察了料液比、乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取時間、超聲溫度、提取次數(shù)5個因素對于總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響,由于超聲過程中儀器自身發(fā)熱會對超聲溫度產(chǎn)生一定的影響,因此選擇以料液比、乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取時間為影響因素,總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)為評價指標(biāo),進(jìn)一步優(yōu)化紫丁香葉總黃酮提取工藝,得到最佳工藝為:料液比為1∶20(g∶mL)、乙醇體積分?jǐn)?shù)55%、提取時間50 min,驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)與預(yù)測值相接近,說明響應(yīng)面法優(yōu)化超聲提取工藝的結(jié)果準(zhǔn)確可靠,為紫丁香葉總黃酮的資源開發(fā)利用提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。