姜曉明,湯 承,岳 華
(西南民族大學畜牧獸醫(yī)學院,成都 610041)
A群牛輪狀病毒(Bovine rotavirus A,BRVA)是導致新生犢牛腹瀉的重要病原[1-2]。病牛主要表現(xiàn)為精神沉郁、食欲減退及水樣腹瀉等癥狀,新生犢牛感染BRVA后發(fā)病率為60%~80%,死亡率高達30%[3]。BRVA呈世界范圍內(nèi)流行,給養(yǎng)牛業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟損失[4]。目前尚未研制出治療BRVA感染的特效藥物,疫苗是防控傳染病最經(jīng)濟有效的手段,目前僅有美國研制的G6型單價BRVA減毒活苗用于臨床[5],也有牛輪狀病毒(BRV) DNA疫苗、病毒樣顆粒疫苗、植物可食用疫苗[6-8]的研究報告,中國尚無商用BRVA疫苗。
VP4蛋白是BRVA的外衣殼刺突蛋白,能誘導機體產(chǎn)生中和抗體,是BRVA的重要保護性抗原之一[9],但VP4蛋白較大,完整表達存在困難且溶解性差[10]。 VP4蛋白在胰蛋白酶的作用下裂解為VP8和VP5亞基[11],VP8亞基上有4個中和表位[12-13]和5個線性B細胞表位,攜帶VP4的主要抗原表位,與VP4蛋白一樣能刺激機體產(chǎn)生中和抗體且免疫應答強度相當[14-16],可見VP8亞基是制備BRVA亞單位疫苗的潛在靶點。本研究利用原核表達系統(tǒng)表達P[1]型BRVA VP8蛋白,并免疫兔評價其免疫原性,以期為研發(fā)BRVA亞單位疫苗奠定基礎。
大腸桿菌TOP10和BL21(DE3)感受態(tài)細胞、pET-30a(+)載體均購自天根生化科技(北京)有限公司;兔抗G6P[1]型BRVA血清、G6P[1]型BRVA病毒液(TCID50:105.76)、G8P[1]型BRVA病毒液(TCID50∶105.39)均由西南民族大學動物醫(yī)學實驗室制備保存。1.8~2.2 kg成年雄性新西蘭大白兔購自成都達碩實驗動物有限公司。
辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗兔IgG購自Abbkine公司;TMB、Ultra- Signal超敏ECL化學發(fā)光底物均購自四正柏(北京)生物科技有限公司;HisCap 6FF鎳離子純化柱購自常州天地人和生物科技有限公司;Imidazole購自BioFroxx公司;BCA蛋白濃度測定試劑盒購自Boster(武漢)公司;DL5000 DNA Marker和PageRuler預染蛋白Marker均購自Thermo Fisher Scientific公司;IPTG購自Sigma公司。
電泳儀和凝膠成像系統(tǒng)均購自天能(上海)科技有限公司;MONTANIDE ISA 201 VG 購自賽比科(上海)特殊化學品有限公司;凝膠半干轉(zhuǎn)印裝置Trars-Blot SD和多功能免染蛋白印跡系統(tǒng)均購自Bio-Rad公司。
參照國內(nèi)流行毒株RVA/Cow-tc/CHN/SDA2/2018/G6P[1](GenBank登錄號:MN937517)VP8基因序列進行優(yōu)化,在不改變?nèi)魏伟被崆闆r下,使其密碼子偏好性接近大腸桿菌。在其5′-端增加酶切位點NdeⅠ,3′-端增加酶切位點XhoⅠ,N-端添加His標簽,將序列送至生工生物工程(上海)股份有限公司合成,將合成的序列與經(jīng)過NdeⅠ和XhoⅠ雙酶切的pET-30a(+)載體連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌TOP10感受態(tài)細胞,挑取單克隆菌落,經(jīng)PCR鑒定正確的陽性克隆送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
參考王珍賢等[17]方法將重組質(zhì)粒pET30a-VP8轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3) 感受態(tài)細胞,涂布于含有30 μg/mL卡那霉素的LB平板,37 ℃培養(yǎng)過夜,挑取單克隆菌落,震蕩培養(yǎng)10 h后,挑取轉(zhuǎn)化后單菌落于含30 μg/mL卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、220 r/min培養(yǎng),當D450 nm值達到0.6時,將菌液分2組,分別添加0.5 mmol/L IPTG誘導表達,一組20 ℃誘導過夜,另一組37 ℃誘導6 h。誘導后離心收集菌體,以PBS 1∶100(W/V)重懸,超聲破碎15 min后離心收集上清與沉淀,進行SDS-PAGE,使用多功能免染蛋白印跡系統(tǒng)拍照,采用Image J軟件分析灰度值。
誘導后菌體使用溶解液(50 mmol/L Tris、300 mmol/L NaCl、0.2 mmol/L PMSF)溶解,超聲破碎15 min后離心收集上清,按照鎳瓊脂糖親和層析蛋白純化方法以5 mL HisCap 6FF鎳離子純化柱進行純化,收集到的組份經(jīng)SDA-PAGE檢測。將純度高的重組蛋白組份使用透析液(50 mmol/L Tris、300 mmol/L NaCl)透析,每隔6 h換一次透析液,共透析4次。透析后的蛋白使用PEG20000包埋濃縮至原蛋白體積的1/2,0.45 μm濾膜過濾,分裝至1.5 mL管中,每管1 mL,于-80 ℃凍存。使用BCA蛋白濃度測定試劑盒測定P[1]型BRVA VP8重組蛋白濃度。
參考王珍賢等[17]方法對P[1]型BRVA VP8重組蛋白進行SDS-PAGE,然后將P[1]型BRVA VP8重組蛋白轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,5%脫脂奶粉封閉過夜,加入1∶ 1 000 稀釋的兔抗G6P[1]型BRVA陽性血清,37 ℃搖床孵育2 h,TBST洗滌3次,加入1∶ 5 000稀釋的HRP標記的羊抗兔IgG作為二抗,37 ℃搖床孵育2 h,TBST洗滌3次,加ECL顯色,多功能免染蛋白印跡系統(tǒng)拍照。 鑒定P[1]型BRVA VP8重組蛋白反應原性。
4只成年健康兔分為2組,每組2只。將P[1]型BRVA VP8重組蛋白稀釋為1 mg/mL,與201佐劑按1∶1(V/V)比例混合,試驗組每只兔頸背部皮下注射0.5 mg重組蛋白,首免第2周加強免疫1次,共免疫2次;對照組注射等體積的PBS。首免前0周和第1次免疫免后第1~5周對試驗兔耳緣靜脈采血并分離血清,用于抗體測定。
使用1 μg/mL P[1]型BRVA VP8重組蛋白包被96孔酶標板100 μL/孔,4 ℃包被過夜,用4% PEG6000于37 ℃封閉1 h,加入1∶64 000稀釋的待檢血清,同時設立陰性孔(未免疫兔血清)與空白對照孔(1% BSA),37 ℃孵育1 h。加入HRP標記的羊抗兔IgG(1∶20 000稀釋),37 ℃孵育1 h。TMB 37 ℃顯色15 min,2 mol/L濃硫酸終止反應,酶標儀測定D450 nm值。以≥Cut Off值(陰性孔D450 nm值×2.1)為陽性,反之為陰性。計算免疫前后各階段每組兔血清抗體D450 nm平均值。
利用ELISA方法檢測抗體水平最高的兔血清,56 ℃水浴30 min后進行病毒血清中和試驗,分別測定兔血清對G6P[1]與G8P[1]毒株的中和效價。用DMEM營養(yǎng)液將待檢血清分別稀釋100和10倍,再用DMEM營養(yǎng)液在96孔板中倍比稀釋(21、22、23、……、210),每個稀釋度設立4個對照孔,同時設立陽性對照孔(100 μL病毒液加100 μL維持液)與陰性對照孔(200 μL維持液)。其余試驗步驟按照病毒中和試驗固定病毒稀釋血清法進行,每天觀察細胞病變(CPE)孔數(shù)至第4天,計算兔血清中和效價。 Reed-Muench氏血清中和效價計算公式如下:
距離比例=(50%-低于50%的病變率)/(高于50%的病變率-低于50%的病變率)
中和效價的反對數(shù)=低于50%的病變率的血清稀釋度的對數(shù)+距離比例×稀釋系數(shù)的對數(shù)
重組質(zhì)粒雙酶切鑒定結(jié)果顯示,在約500與5 000 bp 出現(xiàn)2個條帶(圖1),大小與預期一致,測序結(jié)果顯示目的基因序列正確插入pET-30a(+)。
重組菌經(jīng)IPTG誘導表達的產(chǎn)物經(jīng)SDS-PAGE檢測,在約20 ku處有特異性條帶,重組蛋白為可溶性表達,且重組菌在37 ℃誘導6 h比20 ℃誘導過夜表達量更高(圖2),經(jīng)Image J軟件分析37 ℃誘導6 h條件下目的蛋白占總蛋白的62.08%(表1)。
圖1 重組表達質(zhì)粒pET30a-VP8雙酶切電泳圖Fig.1 Double enzyme digestion electrophoresis of recombinant expression plasmid
M,蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標準;1,IPTG誘導前總蛋白;2,20 ℃上清;3,20 ℃沉淀;4,37 ℃上清;5,37 ℃沉淀M,Protein Marker;1,Total protein before IPTG induction;2,Supernatant at 20 ℃;3,Precipitation at 20 ℃;4,Supernatant at 37 ℃;5,Precipitation at 37 ℃圖2 重組蛋白表達分析Fig.2 Expression analysis of recombinant protein
表1 不同溫度蛋白表達情況
純化的P[1]型BRVA VP8重組蛋白經(jīng)SDS-PAGE顯示呈單一電泳條帶,大小為20 ku,蛋白純度>99%(圖3)。BCA試劑盒測定蛋白濃度為2.74 mg/mL,每升菌液可得到10.96 mg純化重組蛋白。
圖3 純化的P[1]型BRVA VP8重組蛋白SDS-PAGE分析Fig.3 SDS-PAGE analysis of purified P[1] BRVA VP8 recombinant protein
Western blotting 結(jié)果顯示,重組蛋白能與兔抗G6P[1]型BRVA血清抗體結(jié)合,在約20 ku處可見特異反應條帶(圖4),證實P[1]型BRVA VP8重組蛋白具有反應原性。
圖4 P[1]型BRVA VP8重組蛋白 Western blotting 檢測Fig.4 Western blotting detection of P[1] BRVA VP8 recombinant protein
免疫后不同時間試驗兔血清抗體水平檢測結(jié)果顯示,首免1周后抗體開始出現(xiàn)并迅速上升,于第3周達到高峰,至第5周仍維持在較高水平(圖5)。
P[1]型BRVA VP8重組蛋白免疫兔血清對同源和異源BRVA的中和試驗結(jié)果見表2、3。采用Reed-Muench氏法計算免疫兔血清對G6P[1]型和G8P[1]型BRVA的中和效價分別為1∶17 783和1∶64。說明P[1]型BRVA VP8重組蛋白對同源毒株具有良好的中和活性,對異源毒株具有部分交叉中和活性。
圖5 免疫兔血清抗體消長曲線Fig.5 Fluctuation curve of serum antibody in immunized rabbits
表2 血清對G6P[1]型BRVA毒株中和試驗結(jié)果
表3 血清對G8P[1]型BRVA毒株中和試驗結(jié)果
BRVA呈世界范圍內(nèi)流行,該病原導致的高發(fā)病率對養(yǎng)牛業(yè)造成嚴重的經(jīng)濟損失,目前尚無特效藥物可用于治療BRVA引起的疾病,疫苗是預防和控制BRVA最有效的策略。VP4蛋白為BRVA結(jié)構(gòu)蛋白,決定病毒的P型,且可誘導中和抗體的產(chǎn)生[18]。但BRVAVP4基因較長(全長2 359 bp),完整表達存在困難[19]。VP4在胰蛋白酶作用下可裂解成VP8與VP5亞基,Dunn等[15]通過真核表達輪狀病毒(RV) VP4、VP8、VP5蛋白,并將其作為免疫原分別免疫小鼠產(chǎn)生的抗體中和效價分別為1∶640至1∶10 240、1∶1 640至1∶10 240、1∶640至1∶2 560,證實VP8重組蛋白與VP4蛋白一樣能刺激機體產(chǎn)生中和抗體,且免疫效果相當,具有研發(fā)亞單位疫苗的潛力。流行病學調(diào)查顯示,中國牛群中存在多種基因型BRVA,G6P[1]型是優(yōu)勢流行株[20-21],因此本研究合成了G6P[1]型BRVA毒株VP8基因序列,利用原核表達系統(tǒng)表達P[1]型BRVA VP8重組蛋白。
原核表達系統(tǒng)操作簡單、時間短、成本低,且表達量高,是表達外源蛋白的首選方案。但原核表達的蛋白沒有經(jīng)過修飾,不一定具有活性,而BRVA VP4蛋白抗原表位大多為線性,不需要翻譯后修飾[22],且Nasiri等[23]、Kim等[24]均證實BRVA VP8原核重組蛋白免疫雞后可產(chǎn)生抗體。本研究結(jié)果顯示,VP8重組蛋白可誘導機體產(chǎn)生高水平中和抗體,證實原核表達不影響B(tài)RVA VP8蛋白的免疫原性。原核表達系統(tǒng)表達的蛋白主要以包涵體與可溶性2種形式存在,包涵體表達需要復性,復性過程復雜,復性過程中變性劑與去垢劑的使用可能會引起蛋白質(zhì)的改變,在一定程度影響蛋白的免疫原性[25]。本研究采用可溶性表達策略獲得大量P[1]型 BRVA VP8可溶性蛋白,無需復性且易于純化,為BRVA VP8重組蛋白的生產(chǎn)策略提供了參考。
目前商品化BRVA疫苗僅有美國USDA批準的G6型單價減毒疫苗[26],也有BRVA滅活疫苗、DNA疫苗、亞單位疫苗、轉(zhuǎn)基因植物疫苗等的研究報告,常繼濤等[5]制備的BRVA 基因重配二價減毒疫苗免疫牛后可產(chǎn)生高水平的中和抗體,中和抗體效價最高可達1∶20 480。張儉偉等[27]制備BRV CHLY株滅活疫苗免疫昆明小鼠可檢出高水平IgG抗體,證實其具有良好的免疫原性。Wei等[28]利用BRVA GSB01株VP7基因原核表達VP7重組蛋白,制備亞單位疫苗免疫小鼠對初生乳鼠保護率達91.7%。BRVA DNA疫苗、植物轉(zhuǎn)基因疫苗等均具有免疫原性[29-31]。亞單位疫苗免疫與其他疫苗相比不僅能誘導免疫動物產(chǎn)生高水平抗體,還具有安全性較高、成本低、操作簡單等優(yōu)勢,具有良好的市場潛力,為進一步研發(fā)BRVA亞單位疫苗提供參考數(shù)據(jù)。
本研究以pET-30a(+)為載體,以大腸桿菌BL21(DE3)為表達工程菌成功高效表達了P[1]型BRVA VP8蛋白,該蛋白具有良好的免疫原性和反應原性,為進一步研發(fā)BRVA亞單位疫苗提供參考。