熊哲學(xué), 唐明娟, 李凝旭
(華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院附屬梨園醫(yī)院腎內(nèi)科,湖北 武漢 430000)
糖尿病腎臟疾?。╠iabetic kidney disease,DKD),也稱為糖尿病腎病,是由糖尿病引發(fā)的一類重大腎臟并發(fā)癥,長期高糖狀態(tài)對腎臟足細(xì)胞的損傷加速了DKD 的進展,臨床上會以尿蛋白的形式表現(xiàn)出來[1-2]。足細(xì)胞是腎小球濾過屏障不可或缺的一部分,它們是一類高度分化的細(xì)胞群,損傷丟失后無法增殖,自噬作為維持足細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的防御機制,其活躍程度成為了保持足細(xì)胞完整性的關(guān)鍵[3],然而現(xiàn)有研究表明自噬在糖尿病和肥胖癥等營養(yǎng)過剩的能量狀態(tài)下是被抑制的,在饑餓或營養(yǎng)剝奪狀態(tài)下則被激活[4-6],因此DKD 的發(fā)展與腎臟自噬的缺失存在緊密聯(lián)系。達格列凈是一種鈉-葡萄糖協(xié)同轉(zhuǎn)運蛋白2 抑制劑(sodium-glucose cotransporter 2 inhibitors,SGLT2i),最初適用于降低血糖,因其極大的腎臟保護作用而受到廣泛關(guān)注。有學(xué)者推測[7],在SGLT2i的使用過程中,通過加大尿液葡萄糖的排泄,不僅僅降低了血糖,更模擬了一種營養(yǎng)剝奪或能量丟失的機體生理狀態(tài),通過上調(diào)能量感受器沉默信息調(diào)節(jié)因子2相關(guān)酶1(silent information regulator factor 2-related enzyme 1,SIRT1)的表達,刺激了腎臟自噬流量,從而抑制了高糖對足細(xì)胞的持續(xù)損傷,延緩了DKD 的進展。目前對于此方向的研究幾乎是空白的,本實驗的目的是通過對DKD 大鼠的喂養(yǎng)與治療,觀察各組目的蛋白的表達情況,探討達格列凈是否通過上調(diào)SIRT1 的表達來增強腎臟自噬通量,并抑制足細(xì)胞損傷,遏制DKD的進一步發(fā)展。
1.1 實驗試劑及設(shè)備 達格列凈片購自AstraZeneca;鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)購自Sigma;抗SIRT1 抗體、抗微管相關(guān)蛋白 1 輕鏈 3(microtubuleassociated protein 1 light chain 3,LC3)抗體、抗 beclin-1 抗體、抗 NPHS2 抗體、抗 GAPDH 抗體、辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG 抗體及辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗鼠IgG 抗體均購自Proteintech;BCA 檢測試劑盒、SDS 制膠試劑盒及DAPI 染色劑均購自武漢賽維爾生物科技有限公司。全自動生化檢測分析儀(BECKMAN COULTER AU5800);ChemiDoc XRS+成像系統(tǒng)(Bio-Rad);熒光顯微鏡(Nikon Eclipse C1);透射電子顯微鏡(HITACHI)。
1.2 實驗動物及飼料 20只SPF 級雄性SD 大鼠,4~5 周齡,體重75~105 g,訂購于三峽大學(xué)動物實驗中心,許可證號SCXK(鄂)2017-0012。高脂飼料及普通飼料購自武漢市萬千佳興生物科技有限公司。本研究已通過華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院實驗動物倫理委員會審批[倫審字(S822)號]。
2.1 DKD 模型構(gòu)建 20只 4~5 周齡 SD 雄性大鼠被飼養(yǎng)在標(biāo)準(zhǔn)的12 h 光/暗周期的籠子里,可以自由獲取食物和水,恒定室溫為(23±2)℃,相對濕度為(45±10)%,隨機分選出6只大鼠作為對照組,另14只大鼠用作后續(xù)糖尿病模型構(gòu)建。對照組飼以普通飼料,準(zhǔn)備用作造模的大鼠給予高脂飼料喂養(yǎng)4 周,然后連續(xù)3 日空腹腹腔注射鏈STZ(35 mg/kg,溶于pH 4.2 的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液中)[8-9],注射 STZ 前后記錄大鼠體重、進水量、血糖。一周后對大鼠進行血糖檢測,空腹血糖≥16.7 mmol/L 及觀察到顯著“三多一少”癥狀的大鼠確定為糖尿病成功模型動物,14只大鼠中造模成功12只。成模后的糖尿病大鼠繼續(xù)給予高脂高糖飼料,兩周后將其隨機分為糖尿病組及達格列凈組,每組6只,達格列凈組大鼠按照達格列凈 1 mg·kg-1·d-1每日 17 時定時灌胃治療,糖尿病組大鼠用生理鹽水1 mg·kg-1·d-1每日17 時定時灌胃治療。治療4 周后在代謝籠中收集每只大鼠24 h 尿液,之后所有大鼠麻醉,取血、摘除腎臟(稱重),將部分腎組織固定在4%甲醛中進行組織化學(xué)分析,部分腎組織置于2.5%的戊二醛固定液中進行電子顯微鏡檢查。最后將其余腎組織立即冷凍在液氮中,并保存在-80 ℃中,直到進一步分析。
2.2 生化分析指標(biāo) 血液及尿液標(biāo)本于4 ℃、12 000×g離心15 min,取上清液送華中科技大學(xué)附屬梨園醫(yī)院檢驗醫(yī)學(xué)科行全自動分析儀檢測,檢測內(nèi)容包括空腹血糖、空腹胰島素、肌酐、尿總蛋白和尿白蛋白。
2.3 透射電鏡 麻醉處死各組大鼠前準(zhǔn)備好電鏡固定液,取出新鮮腎臟標(biāo)本,用手術(shù)刀片切割至黃豆大小,再將切割好的小塊腎臟轉(zhuǎn)移至裝有新的電鏡固定液的EP 管內(nèi)固定。依次經(jīng)過后固定、漂洗、脫水、包埋、過夜后制成樹脂塊備用。樹脂塊于超薄切片機中行60~80 nm 超薄切片,150 目方華膜銅網(wǎng)撈片,銅網(wǎng)切片放入銅網(wǎng)盒內(nèi)室溫干燥過夜。最后置于透射電子顯微鏡下觀察并采集圖像進行分析。使用Image J 軟件(Madison,WI)分別對每組大鼠中的某一個腎臟截面電鏡圖的隨機7 個腎小球視野進行腎小球結(jié)構(gòu)參數(shù)分析。
2.4 Western blot 首先使用RIPA 裂解液與蛋白酶抑制劑Cocktail 從腎臟皮質(zhì)區(qū)組中提取總蛋白;然后用BCA 蛋白質(zhì)濃度測定試盒定量測定蛋白濃度,在配置好的10 孔SDS-PAGE 凝膠中上樣,之后電泳分離,將目的蛋白轉(zhuǎn)致PVDF 膜;然后用指定的Ⅰ抗(SIRT1、LC3、beclin-1、NPHS2)及內(nèi)參照 GAPDH 抗體4 ℃下孵育過夜,之后將膜與Ⅱ抗(辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔/鼠IgG 抗體)于室溫下孵育,最后用化學(xué)發(fā)光試劑盒顯影,于多功能數(shù)字凝膠成像分析系統(tǒng)暗箱中曝光,觀察免疫反應(yīng)條帶并采集圖像。使用ImageJ 軟件進行各目的蛋白表達的相對豐度分析,每組樣本均進行3次獨立重復(fù)實驗取平均值。
2.5 免疫熒光檢測 將待染組織切片置于65 ℃恒溫箱烤片1 h,依次進行脫蠟、抗原修復(fù)、封閉非特異性抗原表位等步驟。按所需目的抗體孵育特異性Ⅰ抗(LC3、NPHS2)于4 ℃濕盒中靜置過夜。次日取出切片,室溫下復(fù)溫30 min,PBS 洗滌3 次,每次5 min,選取相應(yīng)的免疫熒光Ⅱ抗滴加于腎臟組織上,PBS洗滌3 次,每次5 min。避光條件下,DAPI 染液染細(xì)胞核后用PBS 洗滌3 次,每次5 min。最后使用熒光顯微鏡在相同曝光時間下進行觀察拍照。使用Image J 軟件進行腎小球區(qū)域熒光半定量分析,我們隨機截取了每組大鼠中的某一個腎臟熒光切面圖中50個腎小球區(qū)域進行測量。
采用GraphPad Prism 8.0.2 軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析及圖形制作。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。多組間比較采用單因素方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后,將準(zhǔn)備用于造模糖尿病的大鼠開始行高脂飼料喂養(yǎng)4 周,在第6 周開始注射STZ 造模,造模前后兩周內(nèi)(第5、7 周)3組大鼠的體重、血糖以及進水量變化趨勢如表1 所示,可以觀察到注射STZ 7 周后的糖尿病組大鼠相對于對照組體重減輕、血糖顯著升高及飲水量顯著增多(P<0.05)。
表1 注射STZ前后大鼠血糖、體重和飲水量變化Table 1. Changes of fasting blood glucose,body weight and water drinking before and after STZ injection(Mean±SD)
經(jīng)過4 周治療后,腎重在3組大鼠中無顯著差異;與糖尿病組比較,達格列凈組大鼠的體重和尿量顯著增加(P<0.05);與糖尿病組比較,達格列凈組大鼠腎重/體重比降低(P<0.05),見表2。
表2 各組大鼠體重、腎重、腎重/體重比和尿量比較Table 2. Comparison of body weight(BW),kidney weight(KW),kW/BW ratio and urine volume among groups(Mean±SD. n=6)
如表3 所示,達格列凈組大鼠經(jīng)過治療,血肌酐(serum creatinine,SCr)較糖尿病組增加(P<0.05);24 h 尿總蛋白(total urinary protein,UTP)、24 h 尿白蛋白(urinary albumin,UAlb)、空腹血糖(fasting blood glucose,F(xiàn)BG)、空腹胰島素(fasting insulin,F(xiàn)Ins)和穩(wěn)態(tài)模型胰島素抵抗指數(shù)(homeostasis model assessment-insulin resistance index,HOMA-IR;HOMA-IR=FBG×FIns/22.5[10])較糖尿病組顯著降低(P<0.05)。
表3 各組生化指標(biāo)比較Table 3. Comparison of biochemical indexes among groups(Mean±SD. n=6)
如圖1 所示,透射電鏡下可觀察到糖尿病大鼠腎小球基底膜增厚,足細(xì)胞足突融合、消失。這兩項指標(biāo)通過量化分析后觀察到,相對于糖尿病組,在經(jīng)過治療的達格列凈組中顯著降低(P<0.05),其中達格列凈組足細(xì)胞足突寬度與對照組無顯著差異。
Figure 1. Transmission electron microscope of glomeruli and quantitative analysis of each group(scale bar=2μm). The thickening of the glomerular basement membrane(white arrows)and the fusion and disappearance of podocytes foot processes(black arrows)in diabetic rats can be observed. GBM:glomerular basement membrane;FPs:foot processes. Mean±SD. n=7.*P<0.05,**P<0.01 vs control group;#P<0.05 vs diabetes group.圖1 各組腎小球電鏡及量化分析圖
如圖2所示,達格列凈組大鼠中SIRT1表達量顯著高于另外兩組,而且在糖尿病組表達最低(P<0.05);自噬標(biāo)志物L(fēng)C3-II/LC3-I比值和beclin-1 蛋白表達呈現(xiàn)達格列凈組、對照組、糖尿病組依次降低的趨勢(P<0.05);足細(xì)胞標(biāo)記蛋白NPHS2 在達格列凈組的表達量低于對照組,高于糖尿病組(P<0.05)。
Figure 2. Comparison of SIRT1,beclin-1,NPHS2 and LC3 protein expression in each group. Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs diabetes group.圖2 各組SIRT1、beclin-1、NPHS2和LC3蛋白表達的比較
如圖3 所示,使用抗NPHS2 抗體(紅色)免疫染色以鑒定足細(xì)胞,使用抗LC3 抗體(綠色)免疫染色以鑒定自噬。量化后的達格列凈組中由LC3 標(biāo)記的綠色熒光總量高于糖尿病組(圖3B),考慮到截取的每個腎小球區(qū)域大小不一,可能對統(tǒng)計的熒光總量造成誤差,我們分別將每組截取的50 個腎小球中每個腎小球的熒光量與其區(qū)域面積的比值在圖3C 中展現(xiàn)了出來,達格列凈組腎小球單位區(qū)域上的LC3表達量顯著高于糖尿病組(P<0.05);NPHS2 蛋白顯示的紅色熒光總量對照組中是最高的,達格列凈組也是優(yōu)于糖尿病組的,同樣的方式換算后各組腎小球單位面積的NPHS2表達趨勢仍然與前者相似。
在本研究中,高脂飲食配合低劑量鏈脲佐菌素連續(xù)注射的大鼠模型與人類2 型糖尿病有很大的相似性,而且導(dǎo)致了DKD 的發(fā)生。在表1中可觀察到,注射STZ 的大鼠前后兩周在體重、血糖和飲水量與對照組大鼠產(chǎn)生了差異,表現(xiàn)出“三多一少”糖尿病癥狀。表2中糖尿病組腎重/體重比與對照組產(chǎn)生顯著差異,表明糖尿病組大鼠腎臟出現(xiàn)了肥大;而且表3中對照組和糖尿病組的各項生化指標(biāo)血肌酐、尿總蛋白、尿白蛋白及HOMA-IR 的差異表明模型大鼠出現(xiàn)胰島素抵抗和腎臟病變。
Figure 3. Immunofluorescence staining showed the changes of autophagy and podocyte marker fluorescence intensity in each group(scale bar=50 μm). A:the red fluorescence represents NPHS2,the green fluorescence represents LC3;B:the total amount of immunofluorescence in each group;C:mean fluorescence of glomerular region in each group. Mean±SD. n=50.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs diabetes group.圖3 免疫熒光染色顯示各組大鼠自噬與足細(xì)胞標(biāo)志物熒光強度變化
鈉-葡萄糖協(xié)同轉(zhuǎn)運蛋白2(sodium-glucose cotransporter 2,SGLT2)表達于近曲小管上皮細(xì)胞的管腔表面[2],它主動重吸收小管液中的鈉與葡萄糖,SGLT2 抑制劑最初適用于降低血糖,隨后其明顯的腎臟保護作用成為研究的焦點。在本次實驗中,使用達格列凈對糖尿病大鼠進行為期4 周的治療,治療結(jié)束后,我們觀察到電鏡下的腎小球基底膜厚度與足細(xì)胞足突寬度經(jīng)過量化之后在達格列凈組與糖尿病組之間表現(xiàn)出顯著差異,在超微結(jié)構(gòu)下便顯示出達格列凈對腎臟足細(xì)胞的保護作用。而且通過檢測各組大鼠的血液及尿液生化指標(biāo),觀察到經(jīng)過達格列凈治療的糖尿病大鼠,尿總蛋白、尿白蛋白及胰島素抵抗相較于糖尿病組均有不同程度的減輕,血肌酐的差異表明達格列凈對DKD 早期腎小球的超濾狀態(tài)也有一定的緩解。在表2 腎臟的一般情況中,達格列凈組的腎重/體重比優(yōu)于糖尿病組,說明經(jīng)過治療后的達格列凈組大鼠腎臟肥大也有所減輕。這些結(jié)果與各組之間的超微結(jié)構(gòu)變化趨勢一致。
sirtuins 是一類依賴于煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)的脫乙酰酶,廣泛存在于胚胎和眾多動物組織中,是細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)錄活性的調(diào)節(jié)劑[11]。SIRT1 是sirtuins 家族中表達廣泛、研究廣泛的成員,它對LC3 的去乙?;龠M了核質(zhì)轉(zhuǎn)運和自噬體的形成,因此它與自噬的發(fā)生存在緊密聯(lián)系[12]。SIRT1 作為一種能量感受器,其活性的變化受能量代謝狀態(tài)的影響,在衰老及過量營養(yǎng)供應(yīng)的情況下,NAD+/NADH 比率的降低會導(dǎo)致SIRT1 在腎臟表達下降;在禁食或營養(yǎng)剝奪時,大鼠體內(nèi)顯示出NAD+生物合成酶-煙酰胺磷酸核糖基轉(zhuǎn)移酶的增加,線粒體NAD+隨之增加[13],SIRT1的表達則被上調(diào),進而促進自噬發(fā)生。
自噬是一種保守的分解代謝機制,它將細(xì)胞內(nèi)的各種成分,如蛋白質(zhì)聚集體和受損的細(xì)胞器運送到溶酶體進行降解、清除和循環(huán),以維持體內(nèi)平衡和細(xì)胞的完整性[4]。足細(xì)胞是一類特殊的腎小球上皮細(xì)胞,高度分化且無法增殖,它附著在腎小球基底膜的外側(cè),與內(nèi)皮細(xì)胞和基底膜一起形成腎小球濾過屏障,是腎小球濾過屏障不可或缺的一部分[14]。足細(xì)胞在基礎(chǔ)狀態(tài)下就保持較高的自噬率來維持自身穩(wěn)定,如果它受損,濾過屏障被破壞,臨床上則會表現(xiàn)出蛋白尿的特征[15-16],故自噬對于維持足細(xì)胞的功能意義尤為重要。為了對足細(xì)胞進行檢測,我們應(yīng)用足細(xì)胞特異性標(biāo)記蛋白NPHS2(一種在動物體內(nèi)由Nephrosis2基因編碼的蛋白質(zhì))進行其定量評估,為了確保對自噬準(zhǔn)確和客觀的評估,我們選擇兩種分子來客觀評估足細(xì)胞自噬狀態(tài):自噬基因becn1編碼蛋白beclin-1 與LC3。beclin-1 是最早被檢測的哺乳動物自噬蛋白之一[17],是自噬特異性Ⅲ類磷脂酰肌醇3 激酶復(fù)合物的一部分,形成自噬小體的必需分子,可介導(dǎo)自噬相關(guān)蛋白定位于吞噬泡[18];LC3 前體被半胱氨酸蛋白酶裂解,轉(zhuǎn)化為LC3-I,LC3-I 與新生自噬小體表面的磷脂酰乙醇胺偶聯(lián)形式LC3-II,因此,LC3-II 與自噬小體和自溶酶體具有相對特異性[19-20],故可以通過檢測 LC3-I 到 LC3-II 的轉(zhuǎn)化以及beclin-1蛋白的表達情況來評估自噬水平。
我們通過Western blot 實驗進行相關(guān)蛋白定量檢測,免疫熒光實驗定位觀察及半定量佐證,在Western blot 實驗結(jié)果中觀察到,達格列凈組LC3-II/LC3-I 比值及beclin-1 蛋白的表達高于對照組,對照組高于糖尿病組;NPHS2蛋白表達呈現(xiàn)對照組、達格列凈組、糖尿病組依次降低的趨勢。這說明經(jīng)過治療后的達格列凈組大鼠腎臟自噬通量增強,足細(xì)胞穩(wěn)態(tài)得以維持,損失減少,而糖尿病組則表現(xiàn)出自噬不足,足細(xì)胞穩(wěn)態(tài)破壞,數(shù)量減少。而免疫熒光實驗中我們隨機對各組大鼠腎臟標(biāo)本進行LC3 與NPHS2雙標(biāo),得到了定位及半定量結(jié)果,通過量化分析,觀察到各組的NPHS2、LC3 熒光總量和每個腎小球的單位平均熒光值的統(tǒng)計分析呈現(xiàn)對照組、達格列凈組、糖尿病組依次升高趨勢。這跟Western blot 實驗結(jié)果趨勢一致,而且我們在熒光圖片上可直接觀察到LC3 標(biāo)記的綠色自噬熒光相對集中的表達于NPHS2 標(biāo)記的代表足細(xì)胞的紅色熒光周圍,這說明腎臟自噬通量增強主要的受益者是足細(xì)胞。理論上足細(xì)胞表面并不存在SGLT2,那么達格列凈對足細(xì)胞周圍自噬的誘導(dǎo)作用是否是通過其對全身能量代謝的影響而實現(xiàn)?這正是我們思考的方向。
在Western blot 實驗中SIRT1蛋白的表達在達格列凈組中最高,對照組中次之,糖尿病組中最低。由此可以肯定的是達格列凈組大鼠體內(nèi)的SIRT1 被上調(diào),從能量代謝角度分析,說明達格列凈的使用導(dǎo)致大鼠尿液葡萄糖大量排泄,模擬了饑餓或能量剝奪狀態(tài),促使腎臟細(xì)胞中NAD+增加,上調(diào)SIRT1在腎臟中的表達,進而增強了腎臟自噬,維護了足細(xì)胞穩(wěn)態(tài),最終減輕其損傷;而糖尿病組大鼠體內(nèi)葡萄糖蓄積,表現(xiàn)出營養(yǎng)過剩的特點,故SIRT1 被抑制,腎臟自噬減弱,足細(xì)胞丟失最多;對照組大鼠體內(nèi)無異常能量狀態(tài)波動,則足細(xì)胞保存完好,這符合我們的實驗預(yù)期。
在已經(jīng)發(fā)表過的相關(guān)研究中,目前只有1 篇文獻探討過關(guān)于SGLT2 抑制劑對腎臟足細(xì)胞的影響,Korbut 等[21]證明了恩格列凈能通過促進db/db小鼠的腎小球自噬來減輕腎小球損傷。但遺憾的是并沒有深入對其分子機制進行探討。在本實驗中,我們結(jié)合能量代謝與自噬的調(diào)節(jié)機制,從SIRT1-自噬途徑探究了達格列凈對DKD 大鼠足細(xì)胞的保護作用。從我們的實驗結(jié)果可以總結(jié)出,達格列凈通過上調(diào)SIRT1 的表達,增強了腎臟的自噬通量,減輕了DKD大鼠足細(xì)胞的丟失,減少了蛋白尿,發(fā)揮了腎臟保護作用。
綜上所述,達格列凈可通過增強糖尿病腎病大鼠腎臟細(xì)胞自噬從而抑制足細(xì)胞損傷,其中SIRT1信號通路可能成為其促進自噬的潛在途徑。