蔣海斌 張鐵峰 連吉 楊建美 柴金花 張蕾 安敏 王學清
(1 蘭州市第一人民醫(yī)院麻醉科,甘肅 蘭州 730050;2 陜西省腫瘤醫(yī)院麻醉科;3 蘭州市第一人民醫(yī)院疼痛科;4 甘肅省第三人民醫(yī)院麻醉科)
神經(jīng)病理性疼痛(NP)是因中樞神經(jīng)或外周神經(jīng)的損傷導(dǎo)致的病理性疼痛〔1〕,臨床特征以自發(fā)疼痛、痛覺過敏、疼痛異常等為主,疾病類型包括三叉神經(jīng)痛、帶狀皰疹后神經(jīng)痛、坐骨神經(jīng)痛等〔2〕,如今隨著社會的發(fā)展,NP 發(fā)病率逐年上升,且目前還沒有特別有效的治療手段,故尋找安全有效的治療藥物是目前臨床的研究熱點〔3〕。黃芩苷(BA)是傳統(tǒng)的清熱解毒中藥黃芩的主要有效活性成分,可抗氧化、抗炎、抗菌,具有鎮(zhèn)靜及減輕心腦血管損傷的作用,能緩解痛風性關(guān)節(jié)炎患者疼痛癥狀,并可降低炎癥因子釋放,改善神經(jīng)病理性疼痛模型大鼠機械性痛覺超敏癥狀〔4~6〕,但其藥理機制目前尚不清楚。研究發(fā)現(xiàn),小膠質(zhì)細胞活化導(dǎo)致的脊髓背角神經(jīng)炎癥是神經(jīng)病理性疼痛的主要病理基礎(chǔ)〔7〕,環(huán)磷酸腺苷活化交換蛋白(Epac)1 可調(diào)控絲裂原活化的細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(MEK)磷酸化參與介導(dǎo)炎癥過程,下調(diào)Epac 信號可抑制炎癥反應(yīng),緩解炎癥后痛覺過敏〔8,9〕,因而推測BA 可能通過調(diào)控Epac1-MEK 通路影響炎癥反應(yīng),進而影響脊神經(jīng)結(jié)扎(SNL)模型大鼠疼痛癥狀,基于此,本研究通過建立SNL 模型大鼠,基于Epac1-MEK 通路探討B(tài)A 對SNL 模型大鼠的保護機制。
1.1 材料
1.1.1 實驗動物 SD 大鼠購自北京華阜康生物科技股份有限公司,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(京)2018-0011,清潔級,體重180~220 g。在清潔級的動物房中適應(yīng)飼養(yǎng),動物房噪音小于85 db,大鼠飲食、飲水不加限制,通風換氣:10~20 次/h,光照:12 h/12 h 明暗交替循環(huán),溫度:22~25℃,濕度:55%~65%。
1.1.2 試劑與儀器 BA〔高效液相色譜法(HPLC)≥98%,規(guī)格:20 mg,上海源葉生物科技有限公司,批號:B20570〕;加巴噴丁(GAB,江蘇恒瑞醫(yī)藥股份有限公司,批號:20180612);腫瘤壞死因子(TNF)-α 酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒(批號:ab100785)、白細胞介素(IL)-6 ELISA 試劑盒(批號:ab100772)、兔源甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)一抗(批號:ab181602)、兔源Epac1 一抗(批號:ab21236 )、兔源MEK 一 抗(批號:ab178876)、兔源磷酸化MEK(p-MEK)一抗(批號:ab96379)、羊抗兔二抗(批號:ab150077)均購自美國Abcam 公司;BCA 試劑盒(批號:P0011)、蛋白裂解液(批號:P0013B)均購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;多道電生理記錄儀(型號:MP160)購自美國BIOPAC 公司;Von Frey 探針(型號:BIO-EVF3)購自深圳市瑞沃德生命科技有限公司;智能熱板儀(型號:ZH-YLS-6B)購自上海珂淮儀器有限公司;凝膠成像系統(tǒng)(型號:IBright CL 1500)購自美國Thermo Fisher Scientific 公司;蛋白電泳儀(型號:1659001)、酶標儀(型號:Elx800)、轉(zhuǎn)膜儀(型號:Trans-Blot Turbo)購自美國Bio-Rad 公司等。
1.2 方法
1.2.1 大鼠模型制備及分組給藥 參照文獻〔10〕制備SNL 大鼠模型:腹腔注射40 mg/kg 的2.5%戊巴比妥鈉麻醉大鼠,將其以俯臥位固定在操作臺上,找到大鼠背部L5 棘突后水平縱行切開皮膚,鈍性分離、暴露右側(cè)L5 橫突后將其咬除,暴露L5 脊神經(jīng),以5-0 號絲線結(jié)扎,止血、消毒后逐層縫合傷口。當大鼠術(shù)側(cè)爪出現(xiàn)內(nèi)收,后足輕度外翻和跛行,但并未癱瘓時,表明SNL 模型大鼠建立成功,共建模68只,成功60 只,隨機分為5 組:模型組、BA 低(15 mg/kg)劑量組、BA 中(30 mg/kg)劑量組、BA高(60 mg/kg)劑量組、GAB 組(100 mg/kg),另選取12 只大鼠僅暴露L5 脊神經(jīng)但不結(jié)扎,其余相同操作,設(shè)為假手術(shù)組。
以0.9%NaCl 溶液溶解BA、GAB,具體方法參考文獻〔11〕,分別配制為濃度1.5、3.0、6.0 mg/ml 的BA 溶液,濃度10 mg/ml 的GAB〔12〕溶液,建模成功后,BA 低劑量組、BA 中劑量組、BA 高劑量組及GAB 組大鼠每天灌胃干預(yù)1 次,劑量為10 ml/kg,模型組和對照組每天以10 ml/kg 劑量的0.9%NaCl溶液灌胃干預(yù)1 次,均持續(xù)干預(yù)14 d。
1.2.2 機械性疼痛刺激試驗 第14 天給藥干預(yù)結(jié)束后24 h,使用Von Frey 探針進行機械性疼痛刺激試驗,將大鼠自飼養(yǎng)籠中取出,適應(yīng)一段時間后處于安靜狀態(tài)時,自最小克數(shù)的Von Frey 探針開始刺激大鼠結(jié)扎脊神經(jīng)側(cè)足底6 s,力度以能使腳爪輕度彎曲為準,當大鼠縮爪或添足時(刺激過程中或撤除刺激后出現(xiàn)均可),表示其有疼痛癥狀,記錄此時Von Frey 探針的克數(shù),即表示大鼠的縮爪閾值,可反映大鼠的機械性痛覺過敏程度,重復(fù)測試3 次,取平均值。
1.2.3 熱敏試驗 機械性疼痛刺激試驗結(jié)束后,使用智能熱板儀進行熱敏試驗,將各組大鼠置于熱板上適應(yīng)一段時間,待其安靜后,打開熱板,設(shè)定并維持溫度在(44±1)℃,當大鼠舔舐結(jié)扎脊神經(jīng)側(cè)足或后肢撤回時,表示其有疼痛癥狀,記錄此時所用時間,即表示大鼠的熱敏潛伏期,可反映大鼠的熱痛覺過敏程度,重復(fù)測試3 次,取平均值(本實驗為最大程度降低皮膚損害大鼠在熱板上最大時間不超過60 s)。
1.2.4 神經(jīng)傳導(dǎo)速率試驗 熱敏試驗結(jié)束后,以1.2.1 中麻醉方法麻醉大鼠,然后以俯臥位將其固定在操作板上,于結(jié)扎脊神經(jīng)側(cè)閉孔附近神經(jīng)區(qū)、同側(cè)頸神經(jīng)踝關(guān)節(jié)區(qū)各插入一個指示電極,分別作為近端刺激點和遠端刺激點,再將一個參比電極插入近端刺激點附近約1 cm 處,以單矩形脈沖刺激0.2 ms,電壓:1.5 V,使用多導(dǎo)生理記錄儀記錄動作電位并計算神經(jīng)傳導(dǎo)速度(m/s)=兩個刺激點之間距離(L)/近端刺激點和遠端刺激點之間的動作電位延遲時間差(T),重復(fù)測試3 次,取平均值。
1.2.5 大鼠血清中IL-6、TNF-α 水平測定 神經(jīng)傳導(dǎo)速率試驗結(jié)束后,各組大鼠以注射器自尾靜脈采血,靜置,離心,小心吸出上清液(血清),以試劑盒通過ELISA 測定其中IL-6、TNF-α 水平。
1.2.6 各組大鼠脊髓組織Epac1-MEK 通路相關(guān)蛋白表達的檢測 尾靜脈取血后將大鼠斷頭處死,解剖,取出腰椎中脊髓組織,剪為小碎塊后置于含有蛋白裂解液的玻璃管中,勻漿,離心,以試劑盒通過BCA 法測定上清中的總蛋白濃度,具體操作步驟按照說明書指導(dǎo)進行,分別取含相同質(zhì)量總蛋白的各組蛋白樣品液上樣,十二烷基硫酸鈉(SDS)-聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE),濕轉(zhuǎn),以5%的脫脂奶粉室溫封閉聚偏氟乙烯(PVDF)膜上蛋白,將GAPDH、Epac1、MEK 及p-MEK 蛋白條帶截取下,分別置于孵育盒中孵育一抗,洗膜后孵育二抗,洗膜后通過增強化學發(fā)光法顯色,以凝膠成像儀拍攝條帶,并以Image Lab 軟件分析圖像,定量各蛋白灰度值后,統(tǒng)計分析得出其相對表達量。
1.3 統(tǒng)計學分析 采用SPSS24.0 軟件進行單因素方差分析、LSD-t檢驗。
2.1 各組大鼠縮爪閾值 與假手術(shù)組比較,模型組縮爪閾值顯著降低(P<0.05);與模型組比較,BA 低劑量組、BA 中劑量組、BA 高劑量組及GAB 組大鼠縮爪閾值增高且BA 各組之間呈劑量依賴性(P<0.05);BA 高劑量組與GAB 組比較無顯著差異(P>0.05),見表1。
2.2 各組熱敏刺激測定結(jié)果 與假手術(shù)組比較,模型組熱敏潛伏期顯著降低(P<0.05);與模型組比較,BA 低劑量組、BA 中劑量組、BA 高劑量組及GAB 組熱敏潛伏期增高且BA 各組之間呈劑量依賴性(P<0.05);BA 高劑量組與GAB 組比較無顯著差異(P>0.05),見表1。
2.3 各組神經(jīng)傳導(dǎo)速度 與假手術(shù)組比較,模型組神經(jīng)傳導(dǎo)速度顯著降低(P<0.05);與模型組比較,BA 低劑量組、BA 中劑量組、BA 高劑量組及GAB 組大鼠神經(jīng)傳導(dǎo)速度增高且BA 各組之間呈劑量依賴性(P<0.05);BA 高劑量組與GAB 組比較無顯著差異(P>0.05),見表1。
2.4 各組血清中IL-6、TNF-α 水平 與假手術(shù)組比較,模型組血清中IL-6、TNF-α 水平顯著增高(P<0.05);與模型組比較,BA 低劑量組、BA 中劑量組、BA 高劑量組及GAB 組血清中IL-6、TNF-α 水平降低且BA 各組之間呈劑量依賴性(P<0.05);BA 高劑量組與GAB 組比較,無顯著差異(P>0.05),見表1。
2.5 各組脊髓組織Epac1-MEK 通路相關(guān)蛋白表達 與假手術(shù)組比較,模型組脊髓組織Epac1、p-MEK蛋白表達顯著增高(P<0.05),MEK 蛋白表達無顯著差異(P>0.05);與模型組比較,BA 低劑量組、BA中劑量組、BA 高劑量組及GAB 組脊髓組織Epac1、p-MEK 蛋白表達降低且BA 各組之間呈劑量依賴性(P<0.05),MEK 蛋白表達無顯著差異(P>0.05);BA 高劑量組與GAB 組比較無顯著差異(P>0.05),見表1、圖1。
表1 各組縮爪閾值、熱敏潛伏期、神經(jīng)傳導(dǎo)速度、血清IL-6、TNF-α 水平、Epac1-MEK 通路相關(guān)蛋白表達比較(,n=12)
表1 各組縮爪閾值、熱敏潛伏期、神經(jīng)傳導(dǎo)速度、血清IL-6、TNF-α 水平、Epac1-MEK 通路相關(guān)蛋白表達比較(,n=12)
與假手術(shù)組比較:1)P<0.05;與模型組相比:2)P<0.05;與BA 低劑量組相比:3)P<0.05;與BA 中劑量組相比:4)P<0.05
圖1 Western 印跡檢測各組脊髓組織Epac1-MEK 通路相關(guān)蛋白表達
NP 致病因素很多,其中帶狀皰疹、糖尿病導(dǎo)致的神經(jīng)系統(tǒng)病變、感覺神經(jīng)系統(tǒng)受損、截肢手術(shù)等是其中主要的幾種〔13〕,隨著NP 病情進展,患者疼痛加重,輾轉(zhuǎn)難眠,最終可造成抑郁、焦慮等精神障礙疾病,嚴重影響患者正常工作生活,危害其身心健康〔14〕,因此找到NP 的有效治療手段具有重大的臨床和社會意義。SNL 模型能較全面地反映NP 患者痛覺過敏、自發(fā)性疼痛等臨床癥狀,廣泛應(yīng)用于NP的基礎(chǔ)研究中〔15〕,另有研究顯示〔16〕,當機體外周或中樞神經(jīng)受到損傷時,活化的免疫細胞可合成分泌IL-6、TNF-α 等炎癥因子,引發(fā)神經(jīng)炎癥,導(dǎo)致神經(jīng)疼痛。本研究通過建立SNL 模型大鼠進行實驗,結(jié)果顯示,建模大鼠血清IL-6 及TNF-α 水平顯著增高,表明建模大鼠發(fā)生神經(jīng)炎癥反應(yīng),另外大鼠熱敏潛伏期、縮爪閾值、神經(jīng)傳導(dǎo)速度相比正常大鼠也顯著降低,表明大鼠機械性及熱痛覺過敏,出現(xiàn)疼痛癥狀,且神經(jīng)傳導(dǎo)功能顯著損傷,揭示SNL 模型建立成功。
BA 作為傳統(tǒng)中藥黃芩的主要有效成分,據(jù)張仲景《傷寒雜病論》記載,具有清熱解毒,涼血燥濕之功效,可用于組成治療疼痛的組方,并對神經(jīng)病理性疼痛大鼠機械性痛覺超敏癥狀具有改善作用〔6,17〕,但其具體作用機制目前還未完全闡明。有研究認為,神經(jīng)損傷能導(dǎo)致脊髓小膠質(zhì)細胞的異?;罨蛊洚a(chǎn)生大量炎性細胞因子、介質(zhì)及神經(jīng)活性分子,進而促進病理性疼痛的進一步發(fā)展和持續(xù)〔18〕,Epac1可介導(dǎo)MEK 的激活,調(diào)控其磷酸化水平,進而參與炎癥的發(fā)生及發(fā)展〔8,9〕,另外Epac1 信號還可介導(dǎo)持續(xù)性炎性疼痛及慢性疼痛的發(fā)生及進展,下調(diào)該信號可減輕疼痛,緩解手術(shù)后疼痛〔19,20〕,表明Epac1-MEK 通路是調(diào)控SNL 模型大鼠疼痛癥狀的重要信號,但BA 對SNL 大鼠脊髓Epac1-MEK 通路的影響目前并不清楚,本研究實驗結(jié)果表明BA 可下調(diào)Epac1-MEK 信號通路蛋白表達,抑制大鼠神經(jīng)炎癥,緩解其機械性和熱痛覺過敏癥狀,修復(fù)大鼠神經(jīng)傳導(dǎo)功能,高劑量的BA 與陽性對照藥GAB 的療效相似,揭示BA 可抑制Epac1-MEK 信號激活,并改善SNL 大鼠神經(jīng)疼痛癥狀。
綜上所述,BA 可降SNL 模型大鼠脊髓炎性因子水平,抑制神經(jīng)炎癥,減輕其疼痛癥狀,并修復(fù)大鼠受損神經(jīng)傳導(dǎo)功能,最終緩解其臨床癥狀,干擾Epac1-MEK 信號途徑傳導(dǎo)可能是其藥理機制之一,但本研究尚未通過該通路激動劑和抑制劑做回復(fù)實驗,進行對照驗證,證據(jù)還存在一定不足,后續(xù)還會繼續(xù)研究,以便深入探討B(tài)A 治療NP 的藥理機制。