楊曉藝,鹿錦浩,王聰,呂紹芝,林海東,宋希云,裴玉賀
(青島農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院, 山東青島 266109)
NAC轉(zhuǎn)錄因子家族是植物中常見(jiàn)的轉(zhuǎn)錄因子家族[1],是由矮牽牛(PetuniahybridaVilm)的NAM基因、擬南芥(Arabidopsisthaliana)的ATAF1/2基因和CUC1/2基因的首字母縮寫(xiě)命名[2]。保守的NAC結(jié)構(gòu)域存在于NAC蛋白的N端,按保守程度分為A-E 5個(gè)亞結(jié)構(gòu)域,A、C、D高度保守,B、E相對(duì)可變,長(zhǎng)度在150個(gè)氨基酸左右,可以與DNA或蛋白質(zhì)結(jié)合[3]。在NAC蛋白的C端,則存在高度可變的轉(zhuǎn)錄激活域或抑制域,這類(lèi)結(jié)構(gòu)內(nèi)含有大量的脯氨酸、蘇氨酸、絲氨酸等氨基酸,可以控制轉(zhuǎn)錄過(guò)程[4]。
目前,在玉米、小麥和擬南芥等物種中發(fā)現(xiàn)了許多NAC轉(zhuǎn)錄因子,其中玉米中發(fā)現(xiàn)的NAC轉(zhuǎn)錄因子超130種。前人研究發(fā)現(xiàn)NAC類(lèi)轉(zhuǎn)錄因子可以調(diào)控玉米的葉片發(fā)育、花藥開(kāi)裂、逆境生理等,從而影響玉米產(chǎn)量[5-7]。如ZmNAC1可以受外界干旱、ABA等非生物條件誘導(dǎo)提高玉米的抗旱能力[8];ZmNAM調(diào)控玉米根部的生長(zhǎng)發(fā)育[9];ZmSNAC1激活脅迫相關(guān)基因的表達(dá)并引起代謝產(chǎn)物積累,從而提高植物對(duì)非生物脅迫的抗性[10]。玉米作為重要的糧食作物,研究NAC轉(zhuǎn)錄因子對(duì)玉米非生物脅迫的響應(yīng)機(jī)制,為培育高產(chǎn)高抗的玉米品種奠定基礎(chǔ)。
本研究從抗性玉米自交系‘遼3162’中克隆出NAC轉(zhuǎn)錄因子基因NAM-2,通過(guò)對(duì)NAM-2蛋白的理化性質(zhì)、空間結(jié)構(gòu)和親緣關(guān)系的分析,預(yù)測(cè)該基因可能具有的功能。利用NaCl和PEG 6000模擬鹽和干旱脅迫,探索非生物脅迫下該基因的表達(dá)特性,為NAC轉(zhuǎn)錄因子家族的研究提供理論基礎(chǔ)。
取大小均勻、顆粒飽滿(mǎn)的玉米自交系‘遼3162’種子種植在發(fā)芽盒中,培養(yǎng)條件設(shè)置為(25±2) ℃,16 h光照/8 h黑暗,相對(duì)濕度70%,培養(yǎng)至三葉一心時(shí)用濃度為250 mmol/L的NaCl溶液和20% PEG 6000溶液澆灌分別進(jìn)行鹽和干旱脅迫處理,在處理0 h、3 h、6 h、9 h、12 h、24 h后,收集玉米幼嫩的根、莖、葉組織,放置在-80 ℃超低溫冰箱備用。
將超低溫凍存的玉米組織樣品充分研磨成粉末,使用TaKaRa MiniBEST Plant RNA Extraction Kit[寶生物工程(大連)有限公司, 大連]提取樣品的 RNA。用Nanodrop 2000超微量分光光度計(jì)(美國(guó)賽默飛世爾,美國(guó)) 和1% 的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA的濃度、純度和質(zhì)量。用HiScript?II Q RT SuperMix for qPCR (+gDNA wiper)試劑盒(南京諾唯贊生物科技有限公司,南京)進(jìn)行cDNA的合成。
根據(jù)NAM-2基因的核酸序列,用Primer premier 5軟件設(shè)計(jì)用于該基因克隆的特異性引物(表1)。以得到的 cDNA 為模板,TotalNAM-2-F/TotalNAM-2-R為引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,采用1%的瓊脂糖凝膠電泳對(duì)目的條帶進(jìn)行切膠純化回收(南京諾唯贊生物科技有限公司, 南京)。將目的片段與pMD19-T克隆載體連接,轉(zhuǎn)化到大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞DH5α中,通過(guò)PCR對(duì)菌落篩選陽(yáng)性克隆,并進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。
表1 引物信息Table 1 Primer information
通過(guò)檢索獲得玉米NAM-2基因序列,設(shè)計(jì)cDNA快速擴(kuò)增的上下游引物(如表1所示),用ChamQTM Universal SYBR?qPCR Master Mix(南京諾唯贊生物科技有限公司,南京)在熒光定量QuantStudio3 PCR儀(美國(guó)應(yīng)用生物系統(tǒng)公司,美國(guó))上進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增。
利用ProtParam在線(xiàn)工具對(duì)NAM-2蛋白的理化性質(zhì)進(jìn)行分析,使用Protscale對(duì)親疏水性進(jìn)一步分析。利用NetPhos 3.1和NetNGlyc 1.0分析蛋白的磷酸化位點(diǎn)和糖基化位點(diǎn)分析。用SingalP 4.0和TMHMM 2.0軟件進(jìn)行信號(hào)肽和跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)。使用NCBI在線(xiàn)分析工具CD Search分析蛋白的保守結(jié)構(gòu)域。使用PSIPRED、SOPMA、Phyre 2對(duì)蛋白進(jìn)行二級(jí)結(jié)構(gòu)和三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)。通過(guò)在線(xiàn)啟動(dòng)子順式作用元件預(yù)測(cè)工具PlantCARE對(duì)NAM-2基因可能存在的啟動(dòng)子順式作用元件進(jìn)行分析。利用 NCBI 中的 BLASTN,將此蛋白與其他植物NAC轉(zhuǎn)錄因子的蛋白進(jìn)行序列比對(duì),分析其序列的同源性。采用 DNAMAN 6.0 進(jìn)行多序列比對(duì),通過(guò)MEGA 6.0構(gòu)建蛋白的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)。
采用2-ΔΔCt方法[11]計(jì)算NAM-2基因在根、莖、葉中的相對(duì)表達(dá)量和脅迫處理0 h、3 h、6 h、9 h、12 h、24 h后的相對(duì)表達(dá)量。利用 SPSS16.0 軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,處理數(shù)據(jù),分析差異顯著性;使用Excel 2010繪制柱形圖。
根據(jù)基因序列設(shè)計(jì)全長(zhǎng)引物,以cDNA為模板對(duì)NAM-2進(jìn)行PCR擴(kuò)增,從玉米自交系‘遼3162’中擴(kuò)增出一條長(zhǎng)度為1 122 bp的基因序列(圖1),根據(jù)ORF finder可知該基因編碼373個(gè)氨基酸。
M為Marker;1-2為擴(kuò)增產(chǎn)物。M: Marker; 1-2: The amplification products.圖1 NAM-2基因的克隆Fig. 1 Cloning of NAM-2 gene
2.2.1 NAM-2蛋白的理化性質(zhì)分析
用在線(xiàn)工具ProtParam分析NAM-2蛋白理化性質(zhì),結(jié)果(表2)顯示,玉米NAM-2蛋白分子式為C1776H2725N523O532S21,相對(duì)分子質(zhì)量為 40.59 kDa,等電點(diǎn)為 8.70,說(shuō)明玉米NAM-2蛋白是一個(gè)弱堿性蛋白質(zhì)。NAM-2蛋白內(nèi)包含20種常見(jiàn)氨基酸,其中含量最高的氨基酸為丙氨酸(Ala),占總量的13.1%,其次為脯氨酸(Pro)和甘氨酸(Gly),含量分別為8.6%和8.0%,含量最低的為半胱氨酸(Cys)和色氨酸(Trp),兩種氨基酸各占1.3 %。玉米NAM-2蛋白的平均親水值為-0.573,說(shuō)明玉米NAM-2蛋白應(yīng)該屬于親水性蛋白。利用在線(xiàn)軟件Protscale分析NAM-2蛋白的親/疏水性,發(fā)現(xiàn)NAM-2蛋白N端含有疏水頭部,C 端為親水頭部,中間氨基酸多數(shù)表現(xiàn)為親水性,少數(shù)表現(xiàn)為疏水性,其中以A261殘基親水性最強(qiáng),親水值為-2.956,A42殘基疏水性最強(qiáng),親水值為2.056。 整體上看來(lái),峰值分布在-1以下的氨基酸明顯多于1以上的氨基酸,這個(gè)結(jié)果也進(jìn)一步證明玉米NAM-2蛋白為親水性蛋白。
表2 NAM-2蛋白理化性質(zhì)分析Table 2 Analysis of physical and chemical properties of NAM-2 protein
2.2.2 NAM-2蛋白的修飾位點(diǎn)、結(jié)構(gòu)域、信號(hào)肽預(yù)測(cè)及亞細(xì)胞定位
利用在線(xiàn)工具NetPhos3.1分析(圖2A),發(fā)現(xiàn)NAM-2蛋白存在35個(gè)磷酸化位點(diǎn),其中包括23個(gè)絲氨酸位點(diǎn)、7個(gè)蘇氨酸位點(diǎn)和5個(gè)酪氨酸位點(diǎn),可以與磷酸基團(tuán)結(jié)合,傳遞磷酸基團(tuán)。利用在線(xiàn)工具NetNGlyc 1.0進(jìn)行糖基化位點(diǎn)分析(圖2B),發(fā)現(xiàn)NAM-2蛋白存在2個(gè)潛在的糖基化修飾位點(diǎn),分別在A154和A339。使用在線(xiàn)軟件SignalP4.1和TMHMM 2.0對(duì)玉米NAM-2蛋白的信號(hào)肽和跨膜結(jié)構(gòu)域進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果表明,玉米NAM-2蛋白并不存在跨膜結(jié)構(gòu)域,也未發(fā)現(xiàn)有信號(hào)肽,并且不存在剪切位點(diǎn)。因此可推測(cè),玉米NAM-2蛋白為非分泌型蛋白,沒(méi)有進(jìn)行跨膜運(yùn)輸,直接在細(xì)胞內(nèi)起作用。利用在線(xiàn)分析軟件CD Search和InterPro對(duì)NAM-2蛋白進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)和檢索,發(fā)現(xiàn)這段蛋白中含有一個(gè)典型的NAM保守結(jié)構(gòu)域(圖2C),位于蛋白N端,屬于NAC家族轉(zhuǎn)錄因子,參與轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié),調(diào)控胚的形成和器官分離過(guò)程中莖尖分生組織的形成等[12]。利用lncLocator對(duì)NAM-2蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位,結(jié)果表明,玉米NAM-2蛋白最有可能定位在細(xì)胞核中。
A. 磷酸位點(diǎn)預(yù)測(cè); B. 糖基化位點(diǎn)預(yù)測(cè);C. 保守結(jié)構(gòu)域分析A. Prediction of phosphate site; B. Prediction of glycosylation site; C. Conserved domain analysis圖2 NAM-2蛋白磷酸位點(diǎn)、糖基化位點(diǎn)預(yù)測(cè)和保守結(jié)構(gòu)域分析Fig. 2 Phosphate site and glycosylation site prediction, conserved domain analysis of NAM-2 protein
2.2.3 NAM-2蛋白的二、三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)
使用在線(xiàn)軟件PSIPRED和SOPMA對(duì)玉米NAM-2蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,結(jié)果顯示,NAM-2蛋白的氨基酸殘基組成以58.18%的無(wú)規(guī)則卷曲為主,另外還還伴有25.74%的α-螺旋、11.26%的延伸鏈和4.83%的β-折疊。使用同源建模軟件Phyre2對(duì)NAM-2蛋白的3D結(jié)構(gòu)進(jìn)行模擬,結(jié)果顯示相似度最高的模型為c3ulxA,相似度為99.9%,然后利用在線(xiàn)工具SWISS-MODEL對(duì)NAM-2蛋白373個(gè)氨基酸進(jìn)行3D建模,模板覆蓋率為64.81%。
2.2.4 NAM-2蛋白的進(jìn)化分析
利用 NCBI中的BLASTN,搜索玉米(Zeamays)與狗尾草(Setariaviridis)、小米(Setariaitalica)、柳枝稷(Panicumvirgatum)、高粱(Sorghumbicolor)、結(jié)縷草(zoysiajaponica)、紅樹(shù)林草(Aeluropuslagopoides)、粳稻(OryzasativaJaponicaGroup)、短花藥野生稻(Oryzabrachyantha)、花毛竹(Phyllostachysedulis)、慈竹(Bambusaemeiensis)、二穗短柄草(Brachypodiumdistachyon)、野生二粒小麥(Triticumdicoccoides)、普通小麥(Triticumaestivum)等植物的NAM-2基因序列,采用 DNAMAN 6.0進(jìn)行多序列比對(duì),使用MEGA-X構(gòu)建各植物蛋白的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)[13]。結(jié)果表明(圖3),玉米和高粱進(jìn)化關(guān)系最近,而和野生二粒小麥和普通小麥進(jìn)化關(guān)系最遠(yuǎn)。
圖3 玉米NAM-2蛋白的系統(tǒng)進(jìn)化分析Fig. 3 Phylogenetic analysis of maize NAM-2 protein
qRT-PCR分析NAM-2在不同組織中的表達(dá),結(jié)果顯示(圖4),玉米NAM-2基因在根、莖、葉3種玉米幼苗組織中均有表達(dá),但不同部位的表達(dá)量不同,NAM-2在根中的表達(dá)量最低,在葉中的表達(dá)量最高,為根的4.67倍,莖的表達(dá)量次于葉,為根的1.96倍。對(duì)模擬鹽脅迫和干旱脅迫處理后的玉米幼葉進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR,檢測(cè)不同處理時(shí)間NAM-2的表達(dá)量變化情況。結(jié)果顯示(圖5),在鹽脅迫處理3 h出現(xiàn)顯著變化,6 h后NAM-2的表達(dá)量顯著降低;在干旱脅迫處理之后,NAM-2的表達(dá)量在3 h顯著降低,隨后又有所上升,但均顯著低于0 h的表達(dá)量。由此推測(cè),玉米NAM-2基因在抵御干旱和鹽脅迫過(guò)程中起重要作用。
圖4 NAM-2基因在不同組織的表達(dá)量Fig. 4 The expression level of NAM-2 gene in different tissues of maize
圖5 NAM-2基因在不同處理時(shí)間的表達(dá)量Fig. 5 The expression level of NAM-2 gene in different treatment time注:*表示不同時(shí)間處理與0 h 相比在P< 0.05時(shí)差異顯著
為了研究玉米NAC轉(zhuǎn)錄因子對(duì)干旱脅迫和鹽脅迫的響應(yīng),本研究克隆出NAC家族成員NAM-2,生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn)該轉(zhuǎn)錄因子為堿性蛋白、親水性蛋白、非分泌蛋白,這與大豆、水稻、蘋(píng)果中NAC轉(zhuǎn)錄因子的分析結(jié)果一致[14-15]。NAM-2轉(zhuǎn)錄因子N端含有一個(gè)典型的NAM保守結(jié)構(gòu)域,有研究表明此類(lèi)保守結(jié)構(gòu)域可以與DNA結(jié)合[3]。
利用qRT-PCR分析該基因在不同組織中的表達(dá),發(fā)現(xiàn)NAM-2基因的表達(dá)具有組織特異性,在葉中的表達(dá)量最高,在根中最低。前人的研究表明,小麥的TaNAC-B072基因在幼根中表達(dá)量最高[16];油菜的BnNAC5基因在莖中表達(dá)量最高[17];番茄的SlNAC3基因在根、花和果實(shí)中表達(dá)量比其他部位高[18];轉(zhuǎn)基因煙草中的棉花GhSNAC3基因在根部表達(dá)量最高,在莖葉中表達(dá)微量[19]。這意味著不同組織中NAC基因表達(dá)情況也不同,證明NAC轉(zhuǎn)錄因子家族的不同成員可能在不同組織中發(fā)揮作用。
研究發(fā)現(xiàn),鹽和干旱脅迫后,玉米幼苗中NAM-2基因的表達(dá)顯著降低,鹽脅迫處理使NAM-2基因的表達(dá)量降低至初始量的1/5,干旱脅迫處理使NAM-2基因的表達(dá)量降低至初始量的2/5。在以往的研究中,發(fā)現(xiàn)多種NAC基因與植物中的非生物脅迫有關(guān)。例如,干旱脅迫下轉(zhuǎn)基因水稻的TaNAC67基因會(huì)調(diào)節(jié)糖代謝相關(guān)基因的表達(dá),從而提高了植物的耐旱性[20];干旱脅迫也導(dǎo)致水稻ONAC022基因的表達(dá)上調(diào),從而提高了水稻的耐旱性[21];在高鹽、干旱和寒冷脅迫下,小麥中TaNAC2基因的過(guò)表達(dá)可以提高小麥對(duì)這些非生物脅迫的耐受性[22];蒙古冰草的AmNAC100和AmNAC102-2基因,在干旱處理下表達(dá)上調(diào),對(duì)干旱起正調(diào)控作用[23]。因此可以判斷NAC轉(zhuǎn)錄因子在響應(yīng)植物非生物脅迫的過(guò)程中起調(diào)節(jié)作用。
本研究從玉米自交系‘遼3162’中克隆出一個(gè)NAM-2基因并對(duì)其編碼蛋白進(jìn)行分析,探究此基因在鹽脅迫和干旱脅迫條件下的表達(dá)變化。發(fā)現(xiàn)在非生物脅迫下NAM-2基因表達(dá)均下調(diào),參與了玉米對(duì)非生物脅迫的應(yīng)答反應(yīng),其編碼的NAM-2蛋白屬于NAC家族成員。