徐 偉,張 雪,王植朔,謝紅瑤,吳 凡,邵百琪
(哈爾濱商業(yè)大學食品工程學院,黑龍江哈爾濱 150028)
內生真菌(Endophytic fungi)定殖于健康的生物組織內部[1],是構成菌物生態(tài)系統(tǒng)的天然組分,目前,具有抑菌、抗癌等活性的大量次級代謝產物從內生真菌中分離出來[2?5],且研究表明,在內生真菌與宿主保持著互惠共生關系的長久進化過程中,其具有與宿主相同或相近的代謝途徑,從而產生與宿主相同或相近的次級代謝產物[6],故內生真菌可成為潛在的替代藥源,也將成為開發(fā)生物活性物質的資源寶庫[7],并且內生真菌之間通過相互作用共同促進宿主的生長發(fā)育,也可與大型真菌的協(xié)同作用促進宿主產生更多的代謝產物。
牛肝菌(Boletaceae)是真菌界(Fungi),擔子菌亞門(Basidiomycotina),層菌綱(Hymenomycetes),傘菌目(Agaricates)的大型真菌[8],我國已知牛肝菌科有28 屬,397 種及變種[9],主要產地在云南。其子實體含有大量人體必需氨基酸、礦物質、以及多種生物活性成分[10?11],具有降血脂、抗氧化、護肝、抗腫瘤、降血糖、清熱解煩等功能[12?16]。牛肝菌是一個復雜的生命體,其整個生命周期都伴隨著內生真菌,據報道,大部分牛肝菌是優(yōu)良的外生菌根真菌,其生長對寄主要求嚴格,絕大多數(shù)種類仍不能通過人工栽培形成子實體[17?18]。目前,對于牛肝菌的研究主要集中在化學成分、生物活性等方面[19?20],而對于牛肝菌內生真菌的報道較少。丁小維等[21]采用組織分離法從牛肝菌子實體中分離出2 株內生真菌,通過ITS 分子鑒定分別為毛霉屬(Mucorsp.)和黃瘤孢菌(Hypomyces chrysospermus),2 株內生真菌的發(fā)酵液均對枯草芽孢桿菌和金黃色葡萄球菌表現(xiàn)出了較強的抑菌活性。岳萬松等[22]采用組織分離法從4 種牛肝菌子實體中分離出5 株內生真菌,經ITS 分子鑒定分別為毛栓菌(Trametes hitsuta)、假絲酵母屬(Candidasp.)、被孢霉屬(Mortierellasp.)、散囊菌屬(Eurotiumsp.)、金色毛殼菌(Chaetomium aureum),經過rDNA ITS 二級結構輔助分析后,得出牛肝菌內生真菌具有多樣性特征的結論。
在野生牛肝菌子實體獲得母種菌絲的分離過程中,明確與其內生真菌的關系,是獲得原種、栽培種的基礎,也是獲得新的真菌資源途徑之一,故探究野生牛肝菌內生真菌的生長規(guī)律及內生真菌之間的拮抗關系,可為深入研究野生牛肝菌與內生真菌之間的關系進行初步探究。組織分離法是分離內生真菌的重要方法之一,本研究通過組織分離法從3 種新鮮野生牛肝菌中分離獲得4 株內生真菌,結合菌株的形態(tài)特征和rDNA ITS 序列分析,對菌株進行鑒定,構建出系統(tǒng)發(fā)育樹,并對幾種內生真菌生物學特性進行研究,可為牛肝菌生長過程及采摘后的生物防腐提供優(yōu)良的生防菌株,同時為開發(fā)新資源化合物提供菌種資源[23?25],對牛肝菌的開發(fā)利用及人工栽培等具有重要意義。
鮮野生牛肝菌子實體:黃皮疣柄牛肝菌(Leccinum crocipodium(Letellier)watl.)、小美牛肝菌(Boletus speciosusFrost)、雙色牛肝菌(Boletus bicolorPeck)
分別采摘于云南省楚雄彝族自治區(qū)祿豐縣和南華縣,無菌袋、冰袋封裝,空運24 h 內分離;GK2043(膠回收試劑盒)、GK1071(DNA 提取試劑盒)、引物ITS1 和ITS4 上海捷瑞生物工程有限公司合成;固體培養(yǎng)基CPDA:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,KH2PO43 g,MgSO4·7H2O 1.5 g,VB11 mg,蛋白胨0.5 g,瓊脂20 g,水1 L,pH 自然(液態(tài)培養(yǎng)基去掉瓊脂);固體培養(yǎng)基Pachlewski:葡萄糖20 g,酒石酸銨0.5 g,KH2PO41 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,VB10.1 mg,瓊脂20 g,1 mL/L 微量元素混合液(H3BO38.45 mg,MnSO45 mg,F(xiàn)eSO46 mg,CuSO40.625 mg,ZnCl22.77 mg,(NH4)2MoO40.27 mg),去離子水1 L、固體培養(yǎng)基MMN:NaCl 0.025 g,葡萄糖10 g,KH2PO40.5 g,麥芽浸粉3.0 g,VB10.1 mg,CaCl20.05 g,(NH4)2HPO40.25 g,瓊脂20 g,F(xiàn)eCl30.012 g,MgSO4·7H2O 0.15 g;75%乙醇 實驗室自制;
JY300C 電泳儀、JY02G 凝膠成像系統(tǒng) 北京君意電泳設備有限公司;Beckman-JT-25R 高速冷凍離心機 美國貝克曼庫爾特有限公司;ABI3730 測序儀 北京東迅天地醫(yī)療儀器有限公司。
1.2.1 野生牛肝菌內生真菌分離與純化 將新鮮野生牛肝菌子實體用自來水沖洗數(shù)次,去除表面雜質,無菌水沖洗4 遍,75%乙醇漂洗2 min,再用無菌水沖洗5 次,無菌紗布擦干子實體表面。采用組織分離法進行以下操作,用無菌解剖刀將牛肝菌子實體縱切開后,將內部的組織切割成0.5 cm2左右的小塊,接種于CPDA 培養(yǎng)基中,25 ℃恒溫避光培養(yǎng)5 d。待小塊組織周圍有內生真菌菌絲長出后,挑取少許菌絲,采用點植法純化培養(yǎng),轉接4 次。共獲得23 株純菌株,并移接至斜面試管4 ℃保存。
1.2.2 野生牛肝菌內生真菌形態(tài)學鑒定 將23 株真菌分別點植固體平板培養(yǎng),挑選出形態(tài)、顏色有明顯差異的菌落4 株,分別接種到CPDA 固體平板上,25 ℃避光培養(yǎng)5 d,觀察菌落形態(tài),顯微鏡觀察菌絲及分生孢子顏色、形態(tài),以十字交叉法記錄菌落直徑,且移接至斜面試管,待培養(yǎng)長出菌絲體后,4 ℃保存。
1.2.3 基于rDNA ITS 序列分析的內生真菌分子鑒定 采用GK1071 提取試劑盒,對4 株純化菌株進行DNA 提取。使用真菌ITS 鑒定通用引物:ITS1:5’-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3’和ITS4:5’-TCC TCCGCTTATTGATATGC-3’對DNA 的ITS 片段進行PCR 擴增。擴增體系為30 μL 反應體系,包括:10×Taq Buffer 3 μL,dNTP 1 μL,Taq 酶1 μL,上游引物(10 μmol/L)和下游引物(10 μmol/L)各1 μL,DNA 模板2 μL,ddH2O 補足至30 μL。反應條件:預變性95 ℃,5 min,95 ℃,15 s,95 ℃,15 s,95 ℃,45 s,35 個循環(huán),72 ℃,5 min 保存。PCR 擴增產物采用1%瓊脂糖凝膠電泳體系檢測,采用凝膠成像系統(tǒng)觀察結果。
PCR 擴增產物用膠回收試劑盒GK2043 回收,送到上海捷瑞生物工程有限公司進行測序。將4 株內生真菌所測序列在GenBank 中進行BLAST 對比,選擇同源性高于95%的序列,運用MEGA-X 軟件進行多重比較,通過NJ 法構建系統(tǒng)發(fā)育樹,并以bootstrap 對發(fā)育樹進行自舉法檢驗1000 次,從而確定菌株的親緣關系及分類地位。
1.2.4 液態(tài)發(fā)酵及干基生物量的測定 接種1 cm2菌絲塊于裝液量為80 mL 的250 mL 三角瓶中,在25 ℃,搖床轉速160 r/min 培養(yǎng),分別稱量2、4、6、8、10 d 的生物量干重,每組設置3 個重復,將發(fā)酵液在5000 r/min 離心10 min,收集菌絲體移至干燥皿中,置于70 ℃烘箱中,每隔1 h 取出稱量,直到重量不再改變,即為生物量干重。
1.2.5 野生牛肝菌內生真菌的拮抗實驗 為探究牛肝菌自身內生真菌之間的拮抗作用,參照劉青等[26]方法利用平板對峙法進行拮抗實驗,將純種菌種接種到新的CPDA 培養(yǎng)基上,接種后的平板置于25 ℃條件下避光培養(yǎng),培養(yǎng)至5 d,期間觀察菌落形態(tài),十字交叉法測量菌落生長直徑,以第5 d 時菌落直徑計算抑菌率。對照組設置為單獨接種腐敗菌(BBFO-10 尖孢鐮刀菌為腐敗菌),每組對峙設置3 組重復,抑菌率(%)=(對照組病原菌的菌落直徑-對峙組病原菌的菌落直徑)/對照組病原菌的菌落直徑×100。
實驗中所有數(shù)據均進行3 次平行實驗,數(shù)據以平均值±標準表示。利用Excel 2007 和 Origin 2018對生物學特性實驗進行數(shù)據處理,差異顯著水平為P<0.05。
從云南省2 個地區(qū)采摘的3 個種的野生牛肝菌子實體,共分離出可培養(yǎng)的內生真菌23 株,通過菌落形態(tài)初步判斷多數(shù)為木霉屬,從中篩選出具有菌落形態(tài)、顏色、氣味等差異大的4 株菌種,接種于CPDA 培養(yǎng)基上,在25 ℃下培養(yǎng)5 d,平板生長的菌落形態(tài)、光學顯微鏡觀察的菌絲、孢子形態(tài),利用Motic Images Plus 2.0 軟件進行顯微形態(tài)(10×100)拍攝,如圖1 所示,特征描述見表1。
表1 野生牛肝菌4 種內生真菌形態(tài)觀察結果的描述Table 1 Description of morphological observation results of 4 species of endophytic fungi in wild boletus
圖1 4 種主要內生真菌的菌落、菌絲、孢子形態(tài)結果Fig.1 Morphological diagram of colony, hyphae and spores of wild bolete endophytic fungi
進一步進行分子生物學鑒定,以引物ITS1 和ITS4 對內生真菌的DNA 模板進行PCR 擴增,獲得4 條長度均在410~610 bp 之間的特異性片段,4 株內生真菌的ITS 擴增產物電泳結果,如圖2 所示。
圖2 4 株野生牛肝菌內生真菌的ITS-PCR 擴增電泳圖Fig.2 Electrophoresis pattern of ITS-PCR amplification of 4 strains of endophytic fungi of wild bolete
利用ITS 通用引物(ITS1、ITS4)對4 株內生真菌進行序列擴增得到4 條基因序列,序列長度分別是LCTG-12 為580 bp;LCCK-6 為410 bp;BSHC-18 為610 bp;BBFO-10 為600 bp。將以上4 條序列分別在NCBI 庫中進行在線BLAST 比對,每種菌下載4~5 條同源性高于95%的序列,以測序得到的基因序列為基礎,同公共數(shù)據庫下載的相似序列合并,采用MEGA-X 軟件,按照neighbor-joining method(N-J 法),經過自舉法1000 次進行檢驗構建系統(tǒng)發(fā)育樹,以此對菌株進行種水平的分類鑒別。4 株菌在NCBI 中BLAST 比對結果顯示:在100 條序列比對結果中,LCTG-12 與76 株木霉屬序列(Trichodermasp.)的序列同源性為99%以上,說明該菌為木霉屬;LCCK-6 與55 株念珠菌屬(Candida)的序列同源性為90%以上說明該菌為念珠菌屬;BSHC-18與50 株菌寄生屬(Hypomycessp.)的序列同源性為90%以上說明該菌為菌寄生屬;BBFO-10 與94 株(Fusarium oxysprum)的序列同源性為99%以上。
系統(tǒng)發(fā)育樹樹枝的長短表示各菌株之間的遺傳距離,同一支說明親緣關系很近,以系統(tǒng)發(fā)育方法可以對關系較為密切的菌株序列進行較好的判別。結合形態(tài)學鑒定及BLAST 對比及系統(tǒng)發(fā)育樹結果:LCTG-12 與NCBI 數(shù)據庫中的Trichoderma gamsii聚類在同一支上,自檢支持率100%,鑒定該菌為蓋姆斯木霉;LCCK-6 與Candida kruisii聚類在同一支上,自檢支持率為100%,鑒定該菌為克魯伊假絲酵母;BSHC-18 與Hypomyces chrysospermus聚類在同一支上,自檢支持率為100%,鑒定該菌為黃瘤孢菌;BBFO-10 與Fusarium oxysprum聚類于同一株上,自檢支持率達100%,鑒定該菌為尖孢鐮刀菌(圖3)。
圖3 NJ 法構建4 株內生真菌的ITS 序列系統(tǒng)發(fā)育樹圖(Bookstrap≥50%)Fig.3 Construction of ITS sequence phylogenetic tree diagrams of 4 endophytic fungi by NJ method(Bookstrap≥50%)
2.4.1 3 種培養(yǎng)基對內生真菌生長速度的影響 為掌握4 株內生真菌(LCTG-12、LCCK-6、BSHC-18、BBFO-10)的生物學特性,選擇CPDA、Pachlewski、MMN 為供試培養(yǎng)基,研究3 種培養(yǎng)基對菌絲生長速度的影響,25 ℃培養(yǎng),在9 cm 的平板上采用十字交叉法測量菌落直徑,結果如圖4 所示。由圖4 可知,在培養(yǎng)第4 d 時進行菌落直徑測量,CPDA 上的生長速度明顯優(yōu)于其他2 種培養(yǎng)基,內生真菌LCTG-12 培養(yǎng)5 d,LCCK-6 培養(yǎng)6 d,BSHC-18 培養(yǎng)7 d,BBFO-10 培養(yǎng)8 d 可長滿平板,故選擇CPDA 培養(yǎng)基為4 種內生真菌的最適培養(yǎng)基。
圖4 培養(yǎng)基對內生真菌生長的影響Fig.4 The influence of culture medium on the growth of endophytic fungi
2.4.2 液態(tài)發(fā)酵對內生真菌生物量的影響 在上述實驗的基礎上,選擇CPDA 培養(yǎng)基進行4 種內生真菌的液態(tài)搖瓶實驗,在25 ℃,160 r/min 條件下培養(yǎng)0~10 d,收集0、2、4、6、8、10 d 的菌絲,3 次平行實驗統(tǒng)計結果如圖5 所示。由圖5 可知,0~8 d LCTG-12、LCCK-6、BBFO-10 生物量均呈增長趨勢,第8 d時LCTG-12 的生物量為4.13 g/L,LCCK-6 為1.65 g/L,BBFO-10 為3.44 g/L,此時生物量最大,之后不再增長,這可能與培養(yǎng)基中營養(yǎng)物質消耗殆盡有關。但是BSHC-18 的液態(tài)發(fā)酵菌絲量增長緩慢,最高為1.14 g/L,這與黃瘤孢菌(BSHC-18)的孢子繁殖的生物學特性有關,可見它不適于液態(tài)發(fā)酵生長菌絲。
圖5 4 株野生牛肝菌內生真菌的生物量Fig.5 Biomass of 4 wild bolete endophytic fungi
2.4.3 野生牛肝菌內生真菌的拮抗性 為探究牛肝菌內生真菌之間是否存在拮抗關系,本實驗設計從牛肝菌中分出的3 株內生真菌,進行對峙實驗,在25 ℃條件下培養(yǎng)5 d,蓋姆斯木霉LCTG-12、黃瘤孢菌BSHC-18 和尖孢鐮刀菌BBFO-10 的對照組菌落形態(tài)如圖1-a-1、1-c-1 和1-d-1 所示,拮抗對峙圖如圖6所示。
圖6 牛肝菌內生真菌之間的拮抗對峙圖Fig.6 Picture of antagonism between wild bolete endophytic fungi
由圖6a 可知,蓋姆斯木霉對尖孢鐮刀菌的生長具有拮抗作用,其菌落與鐮刀菌接觸的邊界處,鐮刀菌有明顯向外退縮生長,由于每組對峙設置3 組重復,故其對尖孢鐮刀菌的平均抑制率為53.7%;由圖6b 可知,黃瘤孢菌與尖孢鐮刀菌之間可互相抑制生長,且黃瘤孢菌產黃色孢子的時間明顯延后,彼此的平均抑制率分別為:41.8%、33.6%;由圖6c 可知,蓋姆斯木霉對黃瘤孢菌的生長有明顯的抑制作用,黃瘤孢菌未有產孢現(xiàn)象,其對黃瘤孢菌的平均抑制率為74.7%。
食藥用菌內生真菌是一類尚未充分開發(fā)與利用,并且應用前景廣泛的微生物,為探究野生牛肝菌中內生真菌資源,及分析其內生真菌間是否存在拮抗關系,本文從3 種新鮮野生牛肝菌子實體中分離純化共得到23 株純菌,篩選出4 株具有典型特征的純菌進行形態(tài)觀察和ITS rDNA 現(xiàn)代分子生物學鑒定,鑒定出4 株內生真菌分別為蓋姆斯木霉(Trichoderma gamsii)、克魯伊假絲酵母(Candida kruisii)、黃瘤孢菌(Hypomyces chrysospermus) 及尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysprum),并對幾株內生真菌生物學特性進行研究,得出結論:CPDA 培養(yǎng)基較適合這4 株菌的生長,其中蓋姆斯木霉的生長速度較快,5 d 即可長滿9 cm 的平板,其余3 種菌株長滿板的時間分別為6、7、8 d,并且蓋姆斯木霉對黃瘤孢菌和尖孢鐮刀菌菌絲生長均有拮抗作用,黃瘤孢菌和尖孢鐮刀菌兩者之間也具有拮抗作用。由于實驗采用人工合成培養(yǎng)基的局限性,故本研究所分離的菌株不能完全詮釋野生牛肝菌內生真菌的群系,其中蓋姆斯木霉菌株表現(xiàn)出的拮抗作用,表明其具有一定的生防應用潛力,可為牛肝菌等大型真菌生長過程中會出現(xiàn)的菇體腐爛和根腐病[27?29],提供一定的生防利用價值。內生真菌的次級代謝產物豐富[30?31],進一步研究其內生真菌能夠產生結構新穎、活性廣泛的次級代謝產物,對新型藥用資源開發(fā)具有重要的意義,而牛肝菌內生真菌代謝產物與其是否相同或相近還有待研究。本文也為之后野生牛肝菌人工馴化過程中,研究其內部環(huán)境與內生真菌的關系提供參考。