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    懸浮法及酶消化法分離培養(yǎng)脂肪干細(xì)胞

    2021-11-13 09:59:20趙雅麗李瑞方熊麗嬌曾治平
    贛南醫(yī)學(xué)院學(xué)報 2021年10期
    關(guān)鍵詞:換液膠原酶脂肪組織

    趙雅麗,李瑞方,熊麗嬌,曾治平

    (1.贛南醫(yī)學(xué)院2019級碩士研究生;2.贛南醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院全科醫(yī)學(xué)科;3.國家老年疾病臨床醫(yī)學(xué)研究中心贛南分中心,江西 贛州 341000)

    脂肪干細(xì)胞(Adipose-derived stem cells,AD- SCs)是從脂肪組織中分離得到的一種具有異質(zhì)性的間充質(zhì)干細(xì)胞,它具有多種屬性標(biāo)記,可分化為多種類型的細(xì)胞,如脂肪細(xì)胞、肌細(xì)胞、軟骨和骨細(xì)胞等[1-2]。ADSCs與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(Bone mesenchymal stem cells,BMSCs)相比,更容易獲得,并且在采集時具有相對較低的供區(qū)發(fā)病率。單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄表明ADSCs對比BMSCs來說是一種更可控的干細(xì)胞來源,在調(diào)節(jié)炎癥方面更具優(yōu)勢[3],且在促進體內(nèi)外造血方面ADSCs也明顯優(yōu)于BMSCs[4],ADSCs方便分離的特性和強大的體外增殖能力,也使得ADSCs在再生醫(yī)療領(lǐng)域中非常受歡迎[5-6]。本文就ADSCs的分離、培養(yǎng)與鑒定進行研究。現(xiàn)報告如下。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料 6周齡的雄性大鼠(由贛南醫(yī)學(xué)院科研動物中心提供),操作前后符合《關(guān)于善待實驗動物的指導(dǎo)性意見》[7]標(biāo)準(zhǔn)。優(yōu)質(zhì)胎牛血清(四季青無噬菌體內(nèi)毒素),DMEM低糖培養(yǎng)基(Gibco),Trypsin-EDTA(0.25%phenol red),0.2%Ⅰ型膠原酶(Collagenase),磷酸鹽緩沖液(PBS,自配),青霉素?鏈霉素(索萊寶),完全培養(yǎng)基(DMEM低糖完全培養(yǎng)基?初級)、抗壞血酸、β-甘油磷酸鈉、地塞米松、胰島素、吲哚美辛、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤、茜素紅、油紅O等。BBS-SDC醫(yī)用潔凈工作臺、Thermo CO2培養(yǎng)箱、DK-8D型電熱恒溫水箱、TDZ5-WS臺式低速離心機、BCD-601WDPR低溫冰箱、流式細(xì)胞儀、倒置顯微鏡等(由贛南醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院科研中心提供)。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 ADSCs提取

    1.2.1.1 膠原酶消化提取法 (1)取6周齡雄性大鼠,將大鼠脫頸處死,在無菌條件下取大鼠腹股溝處脂肪組織,用加入雙抗的磷酸鹽緩沖鹽水(PBS)充分漂洗3~4遍,放入裝有PBS的培養(yǎng)皿中,剔除肉眼可見的血管及筋膜組織。(2)將其剪碎,大小最好約1 mm3左右,再用無菌的PBS反復(fù)沖洗,盡可能除去紅細(xì)胞。(3)將其裝入50 mL的試劑瓶中,并加入等量的0.2%Ⅰ型膠原酶,于37℃的恒溫水浴箱中消化50 min,期間間斷搖晃試劑瓶使其消化均勻。(4)加入兩倍體積含有PBS的低糖DMEM培養(yǎng)液,輕輕吹打離散細(xì)胞團,將形成的單細(xì)胞懸液裝入15 mL離心管中1690 r·min-1,離心10 min。(5)除去上層的脂肪和上清液,收集所得到的細(xì)胞沉淀物,加入DMEM培養(yǎng)液吹打細(xì)胞沉淀,并將吹打后的混懸液置入37℃,5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2.1.2 懸浮組織塊提取法 (1)第一步同上述膠原酶提取法。(2)將脂肪組織剪成約綠豆大小,用PBS沖洗2~3遍。(3)接種到6 cm的平皿中,每皿放置6~8塊已剪好的脂肪組織,加入6~8 mL的DMEM培養(yǎng)液使組織塊懸浮。(4)輕輕晃勻后置于37℃,5%的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。(5)5~6 d后首次換液,當(dāng)細(xì)胞達(dá)90%融合時用胰酶進行1∶3傳代,記為原代P1。

    1.2.2 ADSCs傳代 兩種方法傳代方法一致,將提取到的原代ADSCs培養(yǎng)24 h后首次換液,去掉殘存的細(xì)胞碎片及紅細(xì)胞,48 h后再次換液,之后每48~72 h換液1次,獲得純化的ADSCs,總計培養(yǎng)8~10 d后。觀察原代ADSCs密度,一般融合生長達(dá)到90%左右,可進行傳代,用0.25%胰蛋白酶常規(guī)消化后,進行傳代培養(yǎng)。一般傳代3代進行細(xì)胞鑒定,至5~6代之后可將細(xì)胞進行提取,置入液氮冷凍箱中保存。

    2 結(jié)果

    2.1 ADSCs的形態(tài)學(xué)觀察 膠原酶消化法培養(yǎng)原代ADSCs 24 h后就有少量細(xì)胞貼壁,細(xì)胞呈梭形、三角形或多邊形,多為單細(xì)胞核,首次換液后細(xì)胞生長迅速。7 d后可見細(xì)胞逐漸變圓,三角形逐漸消失,細(xì)胞大多成長梭形。懸浮法48 h后,可見少量形態(tài)以長梭形、圓形為主的細(xì)胞。7 d后可見大量長梭形細(xì)胞。12 d時,細(xì)胞融合達(dá)90%,可見大量類成纖維樣細(xì)胞呈漩渦狀生長,初步判斷所獲得的細(xì)胞為ADSCs(圖1、圖2、圖3、圖4)。

    圖1 膠原酶法培養(yǎng)第3天的ADSCs(400×)

    圖2 懸浮法傳代培養(yǎng)第3天的ADSCs(400×)

    圖3 膠原酶消化法培養(yǎng)第7天的ADSCs(400×)

    圖4 懸浮法傳代培養(yǎng)第7天的ADSCs(400×)

    2.2 細(xì)胞生長曲線 膠原酶法獲得的細(xì)胞在接種的1~3 d緩慢增長,4~7 d進入快速增長期,之后細(xì)胞增長進入平臺期,整體生長曲線成“S”形。懸浮法所得細(xì)胞在第3 d進入生長暴增期,第7 d進入生長平臺期,生長曲線也大體呈“S”形(圖5)。

    圖5 酶消化法與懸浮法的ADSCs生長曲線圖

    2.3 干細(xì)胞的誘導(dǎo)分化能力

    2.3.1 干細(xì)胞成骨分化能力 分別取酶消化法及懸浮法培養(yǎng)的第3代ADSCs在成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)液(完全培養(yǎng)基+50μg·mL-1L-抗壞血酸+10 mmol·L-1β-甘油磷酸鈉+0.1μmol·L-1地塞米松)培養(yǎng),每2 d換液1次。ADSCs成骨誘導(dǎo)7 d左右,懸浮法及酶消化法均可見細(xì)胞體積逐漸增大,呈重疊生長,且形態(tài)慢慢變?yōu)槎噙呅?。誘導(dǎo)3周左右,吸出培養(yǎng)基,用PBS清洗3次,4℃下用70%乙醇固定1 h,室溫下用2%的茜素紅染色10 min,倒置顯微鏡下觀察,兩種方法所誘導(dǎo)的茜素紅染色無明顯差異(圖6)。

    圖6 兩種培養(yǎng)法SDSCs成骨分化誘導(dǎo)能力(茜素紅染色,400×)

    2.3.2 干細(xì)胞成脂分化能力 取酶消化法及懸浮法培養(yǎng)的第3代ADSCs在成脂誘導(dǎo)培養(yǎng)液(完全培養(yǎng)基+200μmol·L-1吲哚美辛+0.5 mmol·L-13-異丁基-1-甲基黃嘌呤+1μmol·L-1地塞米松+10μg·mL-1胰島素)培養(yǎng),每2 d換液1次。成脂誘導(dǎo)7 d左右,細(xì)胞體積增大,逐漸變圓,細(xì)胞核周圍可見少量小脂滴,并隨著時間的推移不斷融合。培養(yǎng)3周后,吸出培養(yǎng)基,用PBS液沖洗3次,室溫下加入4%多聚甲醛溶液固定20 min,再用PBS沖洗3次,加入油紅O染液,室溫避光染色30 min,PBS沖洗3次,倒置顯微鏡下觀察。懸浮法及酶消化法的油紅O染色無明顯差異(圖7)。

    圖7 兩種培養(yǎng)法SDSCs成脂分化誘導(dǎo)能力(油紅O染色,400×)

    3 討論

    ADSCs是間充質(zhì)干細(xì)胞(Mesenchymal stem cells,MSCs)的一個亞群,可以比較便利的從脂肪組織中獲取,并具有許多與MSCs相同的特性及功能。ADSCs能在體外擴增,并快速繁殖,具有向多種細(xì)胞系分化的能力,例如分化為脂肪、骨、軟骨和肌源性等細(xì)胞。此外,ADSCs還可分化為心肌、平滑肌、內(nèi)皮、上皮、肝和神經(jīng)源性等細(xì)胞[8-9]。隨著醫(yī)學(xué)的發(fā)展,細(xì)胞治療的興起,ADSCs將在美容、康復(fù)等領(lǐng)域擁有巨大的潛能。ADSCs有很多提取方法,劉琴等[10]對其分離提取方法進行總結(jié),主要有酶消化法、組織塊貼壁法、酶消化法結(jié)合組織塊貼壁法、懸浮培養(yǎng)法及機械分離方法(渦旋離心法、吸附柱法、超聲處理法)等。本文使用了酶消化法及懸浮組織塊培養(yǎng)法作對比,比較了兩種方法的優(yōu)缺勢,得出結(jié)論:兩種方法均成功獲取大鼠的ADSCs。但與酶消化法相比,懸浮組織塊法具有一定的優(yōu)勢:①操作更為簡單,酶消化法需要更為精細(xì)處理所分離的脂肪組織,而懸浮組織塊法只需將其處理成綠豆大小即可。②價格較為低廉,懸浮法無需膠原蛋白酶進一步處理,而改用胰蛋白酶,此舉大大降低了實驗成本。③此法可克服膠原酶消化法過度消化的問題。④此法可提升脂肪組織利用率。⑤懸浮組織塊法接種簡單,只需輕輕晃動培養(yǎng)皿即可成功接種。但是在采用懸浮組織塊法分離培離ADSCs時有兩點注意的事項:①一個約6 cm的培養(yǎng)皿需要加入5~6 mL的培養(yǎng)液讓脂肪組織塊充分懸浮起來。②成功培養(yǎng)出ADSCs的關(guān)鍵是每皿中放適量的脂肪組織塊,如一個6 cm培養(yǎng)皿接種6~8塊4~5 mm3大小的組織塊即可,接種過多或過少實驗均不易成功??偟膩碚f懸浮組織塊法對比酶消化法操作更簡便,價格更低廉,更具有可行性,但懸浮組織塊法更易遭受污染,需較嚴(yán)格把控組織塊接種量、培養(yǎng)液的使用及更換。本次實驗對比了酶消化法及懸浮組織塊法的優(yōu)缺勢,得出結(jié)論:對于獲取大鼠的ADSCs來說,我們可優(yōu)先考慮懸浮組織塊培養(yǎng)法。

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