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    輔助能量物質(zhì)與谷胱甘肽協(xié)同作用促進(jìn)環(huán)磷酸腺苷發(fā)酵生產(chǎn)

    2021-10-24 03:18:28李志剛張朝輝盧南巡張中華常景玲
    食品工業(yè)科技 2021年20期
    關(guān)鍵詞:檸檬酸鈉丙酮酸菌體

    李志剛,張朝輝,譚 海,盧南巡,張中華,常景玲,

    (1.現(xiàn)代生物育種河南省協(xié)同創(chuàng)新中心,河南新鄉(xiāng) 453003;2.河南科技學(xué)院生命科技學(xué)院,河南新鄉(xiāng) 453003)

    環(huán)磷酸腺苷(cAMP)是生命體中的第二信使,對細(xì)胞的糖、蛋白質(zhì)以及核苷酸等物質(zhì)代謝具有重要的調(diào)節(jié)作用[1?2]。作為藥物具有提高心肌細(xì)胞收縮力以及提高機(jī)體抗病毒、免疫力的作用,主要用于心血管疾病的治療;作為飼料添加劑廣泛用于畜禽產(chǎn)品的生產(chǎn)中,具有重要的應(yīng)用價(jià)值[3]。

    在微生物細(xì)胞中,cAMP以ATP為底物直接環(huán)化形成,強(qiáng)化能量代謝和ATP合成有利于產(chǎn)物的快速持續(xù)積累。以檸檬酸鹽為代表的輔助能量物質(zhì),一方面能夠直接作為碳源為細(xì)胞提供能量,一方面調(diào)節(jié)糖酵解與三羧酸循環(huán)間的碳流分配,有利于核苷酸的形成,廣泛用于各類高耗能產(chǎn)物的發(fā)酵生產(chǎn)中[4?7]。Wang等[8]利用Candida utilis. CCTCC 209298發(fā)酵生產(chǎn)腺苷蛋氨酸時(shí)添加檸檬酸鈉,細(xì)胞能量代謝得到強(qiáng)化,與對照相比,產(chǎn)物濃度提高了27.5%。Chen等[9]利用檸檬酸鈉抑制糖酵解途徑,使更多碳流分配到磷酸戊糖途徑顯著提高了cAMP產(chǎn)量和生產(chǎn)效率。Xia等[10]通過Strptomyces albulusPD-1發(fā)酵合成聚賴氨酸時(shí)添加檸檬酸,顯著提高了產(chǎn)物濃度。但是,在上述報(bào)道中,檸檬酸鹽添加導(dǎo)致發(fā)酵后期產(chǎn)物合成停滯或發(fā)酵周期不同程度縮短的現(xiàn)象。本實(shí)驗(yàn)室前期開發(fā)了利用檸檬酸鈉促進(jìn)cAMP合成的發(fā)酵工藝,發(fā)酵后期也存在產(chǎn)物合成停滯的現(xiàn)象[11]。

    活性氧(ROS)是由于電子呼吸鏈運(yùn)行時(shí)出現(xiàn)電子泄漏而產(chǎn)生的,幾乎所有好氧型微生物細(xì)胞內(nèi)都會(huì)產(chǎn)生[12]。由于細(xì)胞具有一定的抗氧化能力,少量ROS產(chǎn)生不會(huì)影響細(xì)胞正常代謝活動(dòng)。但是,細(xì)胞內(nèi)能量代謝水平提高,電子呼吸鏈泄漏電子的量也會(huì)增加,導(dǎo)致更多ROS產(chǎn)生。如果細(xì)胞長時(shí)間處于高濃度ROS條件下,細(xì)胞膜、酶蛋白以及遺傳物質(zhì)就會(huì)造成損傷,影響細(xì)胞活性、生長以及產(chǎn)物的合成[13?14]。

    添加輔助能量物質(zhì)導(dǎo)致cAMP發(fā)酵后期產(chǎn)物合成停滯,限制了產(chǎn)物的合成以及產(chǎn)量的進(jìn)一步提高。針對這一問題,本文對分別添加檸檬酸鈉和丙酮酸鈉的cAMP發(fā)酵過程的發(fā)酵動(dòng)力學(xué)、菌體活性、能量代謝以及活性氧等的變化規(guī)律進(jìn)行研究,闡明導(dǎo)致產(chǎn)物合成停滯的原因,并提出了耦合添加輔助能量物質(zhì)和谷胱甘肽的發(fā)酵工藝,為進(jìn)一步促進(jìn)產(chǎn)物積累以及提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    節(jié)桿菌Arthrobactersp. CCTCC2013431 本實(shí)驗(yàn)室篩選并保藏的;NADH、NAD+、AMP、ATP、cAMP、TAB(硫代巴比妥酸)、氯化碘硝基四氮唑(分析純)、NADH/NAD+與NADPH/NADP+測定試劑盒 北京索萊寶科技有限公司;乙腈、甲醇、三乙胺、磷酸 分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;AlamarBlue細(xì)菌活性檢測試劑盒、DHE-ROS活性氧檢測試劑盒 上海貝博生物科技公司;其他試劑均為分析純。

    BIOTECH-7BG發(fā)酵罐 上海保興生物設(shè)備有限公司;752N紫外分光光度計(jì) 上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;F-280型熒光分光光度計(jì) 天津港東科技股份有限公司;VC150超聲波破碎儀 美國Sonics & Materials公司;Aglient 1260 Infinity液相色譜儀 美國安捷倫科技有限公司;Multiskan GO全波長讀數(shù)儀 賽默飛世爾科技(中國)有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 培養(yǎng)基配制 發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖50,K2HPO410,KH2PO410,尿素10,生物素0.005,CoCl20.01,蛋白胨5,次黃嘌呤2,調(diào)pH至7.2,121 ℃高溫滅菌20 min。

    1.2.2 培養(yǎng)方法 發(fā)酵罐培養(yǎng)方法參考文獻(xiàn)[11]。發(fā)酵罐裝載5 L發(fā)酵培養(yǎng)基,接種量10%,培養(yǎng)溫度30 ℃,初始pH7.4,當(dāng)pH降至6.8時(shí)維持不變。在發(fā)酵0、12、19、26、36、43、50、60、67和72 h進(jìn)行取樣,用于發(fā)酵動(dòng)力學(xué)參數(shù)、關(guān)鍵酶活性、輔因子以及活性氧水平等的測定。檸檬酸鈉、丙酮酸鈉和谷胱甘肽添加方式:發(fā)酵0 h添加到發(fā)酵液中,添加量分別為3、3和2 g/L,即添加后發(fā)酵液中濃度分別達(dá)到3、3和2 g/L。對照批次為不添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉和谷胱甘肽的發(fā)酵批次。

    1.2.3 指標(biāo)測定

    1.2.3.1 菌體濃度測定 采用光密度法測定,發(fā)酵液稀釋適當(dāng)倍數(shù)測定600 nm波長下吸光度,測定值乘以稀釋倍數(shù)即為菌體濃度OD600;菌體干重(DCW)通過關(guān)系式0.46×OD600計(jì)算得出[15]。

    1.2.3.2 cAMP濃度測定 使用高效液相色譜進(jìn)行測定[16],發(fā)酵液9000 r/min離心10 min,上清液經(jīng)0.45 μm水相膜過濾待用。色譜柱為Lichrospher C18柱(300 mm×4.6 mm),進(jìn)樣量2 μL,有機(jī)相為甲醇,水相為磷酸三乙胺緩沖液,水相與有機(jī)相體積比70:30,流速0.8 mL/min,柱溫30 ℃,波長254 nm。

    1.2.3.3 CO2含量測定 尾氣中CO2含量由尾氣分析儀在線測定。

    1.2.3.4 細(xì)胞活性測定 使用AlamarBlue細(xì)菌活性檢測試劑盒,通過熒光分光光度計(jì)測定熒光強(qiáng)度表示細(xì)胞活性,激發(fā)波長540 nm,發(fā)射波長590 nm,具體操作方法見說明書。

    1.2.3.5 胞內(nèi)輔因子含量測定 根據(jù)cAMP濃度和合成速率的變化規(guī)律,選擇26、36、50和60 h等能夠很好反映細(xì)胞生理狀態(tài)的樣品,對輔因子含量進(jìn)行測定,后面ROS、MDA水平以及呼吸鏈脫氫酶活性的測定同樣選擇這4個(gè)時(shí)間的樣品進(jìn)行測定。取5 mL發(fā)酵液在4 ℃條件下,9000 r/min離心10 min,所得菌體于液氮中處理2 min終止菌體代謝,保存于?70 ℃超低溫冰箱中待用。胞內(nèi)ATP、AMP使用HPLC進(jìn)行測定,菌體洗滌兩次,懸浮于5 mL PBS緩沖液中,冰浴條件下超聲波破碎10 min,破碎液在低溫條件下12000 r/min離心15 min,上清液經(jīng)0.22 μm濾膜過濾后待測。色譜柱為LaChrom C18-AQ柱(250 mm×4.6 mm),有機(jī)相為乙腈,水相為NaH2PO4、Na2HPO4和四丁基溴化銨混合溶液,水相與乙腈體積比為92:8,流量0.5 mL/min,柱溫30 ℃,檢測波長258 nm[16]。胞內(nèi)NADH與NAD+濃度采用試劑盒測定,具體方法見說明書;胞內(nèi)NADPH與NADP+濃度采用試劑盒測定,具體方法見說明書。

    1.2.3.6 呼吸鏈脫氫酶活性 采用氯化碘硝基四氮唑(INT)顯色反應(yīng)測定[17]。

    1.2.3.7 胞內(nèi)ROS、MDA含量測定 ROS通過DHEROS活性氧檢測試劑盒使用熒光分光光度計(jì)測定的熒光強(qiáng)度表示,具體方法見說明書;丙二醛(MDA)含量采用TBA法進(jìn)行測定,MDA與硫代巴比妥酸在高溫酸性條件下反應(yīng)生成紅棕色物質(zhì),測定532和600 nm波長下吸光度,計(jì)算得出,具體方法參照文獻(xiàn)[14,18];蛋白濃度采用考馬斯亮藍(lán)染色法測定[19]。

    1.2.3.8 生長速率和cAMP合成速率的計(jì)算

    式中:RX和RP分別表示相臨取樣點(diǎn)間隔時(shí)間內(nèi)的平均細(xì)胞生長速率和cAMP合成速率,g/(L·h);t1表示起始發(fā)酵時(shí)間,h;t2表示節(jié)點(diǎn)發(fā)酵時(shí)間,h;c(X)和c(P)分別表示細(xì)胞濃度(OD600)和cAMP濃度,g/L;參數(shù)取三次測定值得平均值。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    發(fā)酵罐培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)定時(shí)取樣,測定發(fā)酵指標(biāo)時(shí)每個(gè)樣品測三次。用Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,應(yīng)用Origin 8.5軟件作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 添加輔助能量物質(zhì)對cAMP發(fā)酵性能的影響

    在7 L發(fā)酵罐上進(jìn)行了分別添加檸檬酸鈉和丙酮酸鈉的發(fā)酵實(shí)驗(yàn),分析輔助能量物質(zhì)對cAMP發(fā)酵性能和細(xì)胞代謝的影響,探尋進(jìn)一步促進(jìn)產(chǎn)物合成的方法。如圖1A所示,三個(gè)發(fā)酵批次的菌體終濃度相差不大,但是,與對照相比,添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉批次的菌體濃度在50 h前明顯處于較高水平,50 h后這兩批次的菌體生長停滯,而對照批次仍保持緩慢增長的狀態(tài)。圖1B結(jié)果顯示,三批次的菌體生長速率在24 h均達(dá)到最大值,此時(shí)添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉發(fā)酵批次比對照的分別提高了43.5%和60.2%,之后迅速下降,32 h至發(fā)酵結(jié)束一直低于對照批次,55 h后這兩批次的生長速率變?yōu)樨?fù)值。cAMP測定結(jié)果表明,添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉批次的cAMP濃度在50 h達(dá)到最大值3.68和4.02 g/L,分別比對照提高10.8%和21.1%,50 h后cAMP濃度不再增加,而對照仍保持不斷增加的狀態(tài)(圖1C)。另外,三批次的cAMP合成速率在32 h均達(dá)到最大值,與對照相比,添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉批次的合成速率分別提高了48.2%和61.6%,之后迅速下降,40 h后一直低于對照,55 h后合成速率變?yōu)樨?fù)值(圖1D)。這表明,輔助能量物質(zhì)能夠有效促進(jìn)菌體生長和cAMP合成,使菌體和產(chǎn)物濃度迅速積累,但在發(fā)酵后期細(xì)胞生長變的緩慢,產(chǎn)物合成開始停滯,前期的良好狀態(tài)不能繼續(xù)維持。相關(guān)報(bào)道表明,檸檬酸鹽和丙酮酸鹽[20?21]作為輔助能量物質(zhì)可以強(qiáng)化能量代謝,具有促進(jìn)菌體快速生長,促進(jìn)肌苷、聚賴氨酸及腺苷蛋氨酸等多種發(fā)酵產(chǎn)物積累的作用,但也存在發(fā)酵周期縮短以及后期產(chǎn)物合成停滯的現(xiàn)象[7?10]。因此,闡明輔助能量物質(zhì)導(dǎo)致發(fā)酵后期細(xì)胞生長緩慢、產(chǎn)物合成停滯的原因,對進(jìn)一步促進(jìn)這些產(chǎn)物合成與積累具有重要意義。

    圖1 添加輔助能量物質(zhì)對細(xì)胞生長和cAMP發(fā)酵合成的影響Fig.1 Effects of auxiliary energy substances on cells growth and cAMP fermentation synthesis

    尾氣中CO2含量反映了細(xì)胞呼吸代謝的強(qiáng)度,而利用AlamarBlue檢測試劑盒測得的熒光強(qiáng)度則反映了菌體細(xì)胞的活性。對上述發(fā)酵批次中菌體的呼吸強(qiáng)度和細(xì)胞活性進(jìn)行測定,結(jié)果如圖2所示。三個(gè)批次的CO2含量和細(xì)胞活性均呈現(xiàn)先升后降的變化規(guī)律,對照批次的變化趨勢相對平緩,而添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉發(fā)酵批次的CO2含量和細(xì)胞活性在發(fā)酵前期快速提升,明顯高于對照批次,在發(fā)酵36 h后迅速下降,在50 h后明顯低于對照批次。這表明輔助能量物質(zhì)在前期可以明顯提高細(xì)胞活性,但此狀態(tài)未能長時(shí)間維持,可能是細(xì)胞受到損傷,導(dǎo)致細(xì)胞活性下降,進(jìn)而使菌體生長和產(chǎn)物合成能力弱化。

    圖2 輔助能量物質(zhì)對細(xì)胞活性及呼吸代謝的影響Fig.2 Effects of auxiliary energy substances on cell viability during fermentation period

    2.2 添加輔助能量物質(zhì)對細(xì)胞能量代謝的影響

    對反映細(xì)胞能量代謝水平的胞內(nèi)輔因子含量和電子呼吸鏈活性進(jìn)行了測定,結(jié)果如圖3所示。與對照相比,添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉發(fā)酵批次的NADH/NAD+得到極顯著(P<0.01)提高(60 h前),ATP/AMP在發(fā)酵前期明顯高于對照,但50 h后劇烈下降,明顯低于對照;同時(shí)呼吸鏈脫氫酶活性也表現(xiàn)出與ATP/AMP相同的變化趨勢。檸檬酸鹽和丙酮酸鹽作為輔助能量物質(zhì),能夠提高三羧酸循環(huán)的代謝水平,提高胞內(nèi)NADH/NAD+比例,進(jìn)而促進(jìn)ATP的合成[20,22]。電子呼吸鏈能夠接受NADH的電子,將其氧化形成NAD+,電子經(jīng)呼吸鏈傳遞釋放能量,催化磷酸化反應(yīng)合成ATP,電子呼吸鏈?zhǔn)羌?xì)胞ATP合成的重要途徑[23?24]。因此,可以推測,發(fā)酵前期輔助能量物質(zhì)有效提高了NADH/NAD+,在電子呼吸鏈高效運(yùn)行的情況下大量合成ATP,為菌體生長和產(chǎn)物合成提供了有利條件;但由于呼吸鏈高速運(yùn)行增加了電子的泄漏,產(chǎn)生大量的活性氧自由基,造成細(xì)胞組分損傷和呼吸鏈相關(guān)酶活性的降低,導(dǎo)致發(fā)酵后期ATP/AMP極顯著低于對照(P<0.01),進(jìn)而影響菌體活性和產(chǎn)物合成。

    圖3 添加輔助能量物質(zhì)對細(xì)胞能量代謝的影響Fig.3 Effects of auxiliary energy substances on cell energy metabolism

    2.3 添加輔助能量物質(zhì)對細(xì)胞內(nèi)活性氧和丙二醛水平的影響

    對菌體細(xì)胞內(nèi)的活性氧(ROS)含量及脂質(zhì)過氧化標(biāo)志物丙二醛(MDA)的濃度進(jìn)行測定,結(jié)果如圖4所示。在對照批次中,胞內(nèi)ROS和MDA濃度隨發(fā)酵的進(jìn)行逐漸增加,但提高幅度很小,未對細(xì)胞產(chǎn)生大的損傷,菌體生長和產(chǎn)物合成在72 h的發(fā)酵周期內(nèi)一直進(jìn)行(圖1)。然而,在添加輔助能量物質(zhì)的批次中,胞內(nèi)ROS和MDA濃度隨發(fā)酵的進(jìn)行快速增加,在26~36 h增加幅度尤為明顯,而且在26 h后ROS和MDA濃度與對照相比,有極顯著(P<0.01)的提高。此外,還對胞內(nèi)NADPH/NADP+進(jìn)行了測定,如圖4C所示,添加輔助能量物質(zhì)批次的NADPH/NADP+在發(fā)酵過程中變化幅度很大,26 h明顯高于對照批次,36 h及以后與對照批次相比,有極顯著(P<0.01)的下降,最終比例僅為0.6左右的低水平。NADPH主要為細(xì)胞物質(zhì)合成提供還原力以及維持氧化還原平衡,NADPH/NADP+大幅下降可能是細(xì)胞內(nèi)出現(xiàn)氧化脅迫導(dǎo)致的[25?26]。以上現(xiàn)象表明,發(fā)酵后期,強(qiáng)氧化性的活性氧自由基大量積累[27],導(dǎo)致氧化還原失衡,超出細(xì)胞的承受能力,細(xì)胞膜等遭到損害,細(xì)胞活性降低,最終導(dǎo)致發(fā)酵后期產(chǎn)物合成停滯的現(xiàn)象。

    圖4 輔助能量物質(zhì)激發(fā)氧化脅迫造成細(xì)胞物質(zhì)損傷Fig.4 Addition of auxiliary energy substances triggered oxidative stress causing cell damage

    2.4 谷胱甘肽與輔助能量物質(zhì)耦合添加促進(jìn)cAMP發(fā)酵合成

    谷胱甘肽(GSH)是一種發(fā)酵工業(yè)中常用的抗氧化劑,具有清除氧自由基的作用[28?29]。針對添加輔助能量物質(zhì)導(dǎo)致氧化脅迫的問題,進(jìn)行了谷胱甘肽與輔助能量物質(zhì)耦合添加的發(fā)酵實(shí)驗(yàn),結(jié)果如圖5所示。耦合添加批次的菌體濃度和cAMP產(chǎn)量明顯高于單獨(dú)添加GSH批次,由于GSH的作用,發(fā)酵后期菌體和產(chǎn)物濃度持續(xù)增加,沒有停滯和下降的趨勢。檸檬酸鈉耦合GSH與丙酮酸鈉耦合GSH批次的cAMP產(chǎn)量分別達(dá)到4.05和4.32 g/L,比單獨(dú)添加GSH批次分別提高了15.2%和22.7%,與圖1中對照相比分別提高了21.9%和30.1%。此外,與僅添加GSH批次相比,耦合添加批次的CO2含量和細(xì)胞活性明顯處于較高水平;與相應(yīng)未添加GSH的批次相比,耦合添加批次的細(xì)胞活性也明顯得到提高(圖2)。這表明添加GSH有效解決了由輔助能量物質(zhì)導(dǎo)致的氧化脅迫問題,菌體活性得到明顯提升,產(chǎn)物在發(fā)酵后期能夠持續(xù)合成。

    圖5 谷胱甘肽提高細(xì)胞活性促進(jìn)cAMP發(fā)酵合成Fig.5 Exogenous glutathione enhanced cells viability and cAMP production

    3 結(jié)論

    單獨(dú)添加檸檬酸鈉、丙酮酸鈉批次的產(chǎn)物合成和菌體生長速率在發(fā)酵前期均明顯高于對照,約30 h后快速下降,降至低于對照批次的低水平;菌體活性、ATP/AMP以及電子呼吸鏈活性在發(fā)酵36 h后劇烈下降,下降幅度遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于對照批次。添加輔助能量物質(zhì)導(dǎo)致ROS和丙二醛在發(fā)酵36 h后迅速積累,而NADPH/NADP+卻快速下降,表明輔助能量物質(zhì)導(dǎo)致活性氧大量產(chǎn)生,造成細(xì)胞組分損傷以及細(xì)胞生長和產(chǎn)物合成的停滯。耦合添加輔助能量物質(zhì)和谷胱甘肽的發(fā)酵批次中,發(fā)酵后期細(xì)胞和產(chǎn)物濃度持續(xù)增加,細(xì)胞活性也得到較大提升,cAMP產(chǎn)量得到進(jìn)一步提高。

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