劉光輝,楊田野,洪雅軍,王 航,潘銘東,孟 春,徐朝陽(yáng)
視網(wǎng)膜新生血管性疾病是臨床常見(jiàn)的眼病,如糖尿病視網(wǎng)膜病變(diabetic retinopathy,DR)、早產(chǎn)兒視網(wǎng)膜病變(retinopathy of prematurity,ROP)、年齡相關(guān)性黃斑病變(age-related macular degeneration,ARMD)等,其病理過(guò)程中均涉及由視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細(xì)胞(endothelial cells,ECs)和視網(wǎng)膜微血管周細(xì)胞(retinal microvascular pericytes,RMPs)共同參與的血管新生(angiogenesis)。構(gòu)建體外血管新生模型是探索血管新生的生理病理過(guò)程、研究新生血管性疾病重要的工具。截至目前,已有不少學(xué)者建立了體外三維血管模型[1-2],但是大都僅以單一的血管ECs為基礎(chǔ),未能充分模擬ECs和RMPs相互配合的血管新生過(guò)程。本研究擬采用ECs和RMPs在內(nèi)的全微血管成分細(xì)胞構(gòu)建大鼠視網(wǎng)膜血管體外三維培養(yǎng)模型,以便為視網(wǎng)膜新生血管性疾病的機(jī)制研究提供一個(gè)有力的工具。
1.1材料
1.1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物3周齡健康清潔級(jí)雄性初斷乳SD大鼠20只,體質(zhì)量40±5g,購(gòu)買自上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司[許可證號(hào)SCXK(滬)2007-0005]。飼養(yǎng)環(huán)境溫度為21℃~25℃,相對(duì)濕度為50%~55%。普通顆粒飼料喂養(yǎng),自由飲水,12h/12h明暗交替光照。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的使用遵循國(guó)家科學(xué)技術(shù)委員會(huì)1988年頒布的《實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理?xiàng)l例》,并經(jīng)過(guò)福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。
1.1.2主要試劑及儀器內(nèi)皮細(xì)胞專用培養(yǎng)基(endothelial cell medium,ECM,美國(guó)Scien Cell公司);DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、青霉素-鏈霉素雙抗(10kU/mL青霉素+10mg/mL鏈霉素,美國(guó)HyClone公司);細(xì)胞示蹤劑(美國(guó)Molecular Probes公司);Ⅰ型膠原酶(美國(guó)Sigma公司);人工基質(zhì)膠Matrigel(美國(guó)BD公司);血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子A(vascular endothelial growth factor A, VEGF-A)抗體(武漢愛(ài)博泰克生物);24孔板及培養(yǎng)皿(美國(guó)Corning公司);倒置熒光顯微鏡(日本Nikon公司);CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國(guó)NUARE公司)。
1.2方法
1.2.1ECs分離培養(yǎng)按參考文獻(xiàn)[3]描述方法分離、純化、培養(yǎng)、鑒定大鼠視網(wǎng)膜微血管ECs。大鼠經(jīng)乙醚麻醉后用頸椎脫臼法處死,摘取眼球轉(zhuǎn)移至75%乙醇中浸泡1min,用預(yù)冷的PBS(含有1%青霉素-鏈霉素雙抗)洗3遍。分離剝出視網(wǎng)膜,剪成1mm3大小的組織塊。先用含有質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.25%胰蛋白酶消化10min,然后再用含有質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.2% Ⅰ型膠原酶消化20min。用ECM培養(yǎng)基重懸組織接種于培養(yǎng)瓶中,接種在明膠包被的培養(yǎng)瓶中,每3d換液1次。選用第3~7代經(jīng)鑒定驗(yàn)證的ECs開(kāi)展后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.2RMPs分離培養(yǎng)按照我們之前研發(fā)的方法分離、純化、培養(yǎng)、鑒定大鼠RMPs[4]。如前述,將1mm3大小的視網(wǎng)膜組織塊先用含有質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.25%胰蛋白酶消化10min,然后再用含有質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.2% Ⅰ型膠原酶消化15min。用含有體積分?jǐn)?shù)20% FBS的DMEM-L培養(yǎng)基重懸組織接種于培養(yǎng)瓶中,每3d換液1次。選用第3~7代經(jīng)鑒定后的RMPs開(kāi)展后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.3三維共培養(yǎng)將Matrigel、移液管和24孔培養(yǎng)板放置4℃冰箱,預(yù)冷過(guò)夜。按照說(shuō)明書稀釋細(xì)胞示蹤劑,分別用紅色和綠色細(xì)胞示蹤劑孵育ECs和RMPs 24h。將Matrigel用ECM培養(yǎng)基按照1∶1進(jìn)行稀釋,24孔板每個(gè)孔加入400μL稀釋后的Matrigel膠,置入細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育30min以上,待Matrigel膠凝固后備用。將標(biāo)記后的細(xì)胞用PBS洗滌3次,消化成細(xì)胞懸液,將細(xì)胞濃度調(diào)至2×105cell/mL。將ECs和RMPs按9∶1進(jìn)行混合,每孔加入400μL細(xì)胞懸液,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)。倒置顯微鏡下動(dòng)態(tài)觀察。
1.2.4酶聯(lián)免疫法檢測(cè)在ECs/RMPs共培養(yǎng)體系培養(yǎng)12、24、48h后,收集細(xì)胞培養(yǎng)的上清,按照酶聯(lián)免疫檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書操作,檢測(cè)上清液中VEGF-A的表達(dá)水平。
統(tǒng)計(jì)學(xué)分析:采用統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件SPSS 21.0進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,采用單因素重復(fù)測(cè)量方差分析進(jìn)行檢驗(yàn),兩兩比較采用Bonferroni法。P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1ECs/RMPs三維培養(yǎng)生長(zhǎng)情況混合接種培養(yǎng)12h時(shí),可以觀察到RMPs能被ECs招募,聚集成為大小不等的細(xì)胞團(tuán)塊,并有部分ECs增殖與RMPs共同形成簡(jiǎn)單的條索樣結(jié)構(gòu)。24h時(shí),ECs/RMPs共同形成具有復(fù)雜結(jié)構(gòu)的血管樣條索網(wǎng)。觀察時(shí),條索網(wǎng)各部分處于不同的焦平面,提示為三維立體網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。之后,血管樣條索網(wǎng)逐漸出現(xiàn)崩解。48h時(shí),網(wǎng)狀三維結(jié)構(gòu)已經(jīng)出現(xiàn)明顯崩解,僅保持少量不完整的簡(jiǎn)單的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。至72h時(shí),血管樣條索網(wǎng)完全崩解,僅殘留少量小的離散的細(xì)胞團(tuán),見(jiàn)圖1。
圖1 ECs/RMPs三維共培養(yǎng) A:ECs/RMPs以9∶1比例接種于三維共培養(yǎng)系統(tǒng),ECs以紅色細(xì)胞示蹤劑標(biāo)記,RMPs以綠色細(xì)胞示蹤劑標(biāo)記;B、C:12h時(shí),ECs(黃色箭頭)能招募RMPs(白色箭頭)成為細(xì)胞團(tuán),并有部分形成簡(jiǎn)單的條索樣結(jié)構(gòu);D:24h時(shí),ECs/RMPs能形成廣泛復(fù)雜的具有腔隙的三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),三維結(jié)構(gòu)以ECs(黃色箭頭)為主,RMPs(白色箭頭)鑲嵌其中;E:48h時(shí),三維結(jié)構(gòu)出現(xiàn)明顯崩解,僅保持少量不完整的簡(jiǎn)單網(wǎng)狀結(jié)構(gòu);F:72h時(shí),三維結(jié)構(gòu)完全崩解,僅殘留少量小的離散的細(xì)胞團(tuán)。
2.2三維培養(yǎng)時(shí)VEGF-A的表達(dá)水平在血管網(wǎng)逐漸發(fā)育完善過(guò)程中,VEGF-A表達(dá)量上升。血管網(wǎng)出現(xiàn)崩解時(shí),VEGF-A表達(dá)量下降。檢查顯示,培養(yǎng)12、24、48h時(shí)的上清液中VEGF-A表達(dá)量分別為1.757±0.249、3.216±0.510、0.700±0.257μg/L,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=82.802,P<0.01)。培養(yǎng)24h時(shí)的上清液中VEGF-A表達(dá)量較12h表達(dá)量顯著增高,48h時(shí)的上清液中VEGF-A表達(dá)量較12、24h表達(dá)量均顯著降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)圖2。
圖2 三維培養(yǎng)不同時(shí)間點(diǎn)上清液中VEGF-A的表達(dá)水平 aP<0.05 vs 48h;cP<0.05 vs 12h。
血管新生指在原有小靜脈或其他毛細(xì)血管的基礎(chǔ)上,ECs以芽生或非芽生的形式并在周細(xì)胞的配合下生成新生血管的過(guò)程,其一般包括基質(zhì)降解、ECs移行、ECs增殖、ECs管道化分支形成血管環(huán)和新的基底膜形成等步驟[5-6]。血管新生是血管從少到多的生物學(xué)過(guò)程,常見(jiàn)于人體各種組織器官的生理或病理活動(dòng)中,如視網(wǎng)膜、角膜等。
視網(wǎng)膜是人體微血管密度最高的組織之一,常因缺血、缺氧或其他因素誘發(fā)血管新生,導(dǎo)致視網(wǎng)膜新生血管性疾病,如DR、ROP、ARMD等。視網(wǎng)膜新生血管性疾病是眼科臨床的致盲性疾病,相關(guān)研究是目前眼科研究的熱點(diǎn)方向之一。在體內(nèi)研究中,動(dòng)物模型存在直接觀察不便等不利因素,研究觀察難度大。而體外三維培養(yǎng)既能夠模擬ECs出芽、移行、增殖、分化等體內(nèi)血管生成具體過(guò)程[7],又具有易于觀察的優(yōu)勢(shì),更具有研究?jī)r(jià)值。因此,構(gòu)建簡(jiǎn)便、可靠、穩(wěn)定的血管新生體外三維培養(yǎng)模型對(duì)于開(kāi)展視網(wǎng)膜新生血管性疾病的基礎(chǔ)研究工作具有重要的意義。
體外血管新生三維模型構(gòu)建起始于1980年代。在1980年,F(xiàn)olkman等[8]首次觀察到ECs在體外培養(yǎng)系統(tǒng)中能夠形成血管樣條索的趨勢(shì)。Martins等[9]證實(shí)三維培養(yǎng)中的ECs生長(zhǎng)與體內(nèi)血管生成更為類似。其在硬度適中的膠原類基質(zhì)中可以分化形成靜態(tài)管狀[10]。鼠尾膠、血漿凝塊、纖維蛋白、水凝膠、Matrigel等均可以用于ECs三維培養(yǎng)的基質(zhì)[11-12]。其中Matrigel是一種從EHS小鼠腫瘤中提取的細(xì)胞外基質(zhì)混合物,含有層黏連蛋白、Ⅳ型膠原、巢蛋白、肝素糖蛋白、生長(zhǎng)因子和基質(zhì)金屬蛋白酶等多種成分[13]。其在低溫狀態(tài)下呈液態(tài);在37℃條件下,能聚合形成具有生物學(xué)活性的三維基質(zhì),模擬體內(nèi)細(xì)胞基底膜的結(jié)構(gòu)、組成、物理特性和功能。由于Matrigel成分與哺乳動(dòng)物細(xì)胞基底膜成分類似,故常為體外三維培養(yǎng)研究所選用。
在種子細(xì)胞來(lái)源方面,學(xué)者們已經(jīng)開(kāi)發(fā)了多種來(lái)源的ECs用于血管新生體外三維模型的培養(yǎng),如源自人、嚙齒類動(dòng)物、牛、犬等;所取ECs的血管如臍靜脈、頸靜脈、主動(dòng)脈等處大血管及真皮等處微血管[2]。其中,人臍靜脈ECs因?yàn)閬?lái)源廣泛、分離簡(jiǎn)單而被廣泛應(yīng)用。此外,內(nèi)皮祖細(xì)胞見(jiàn)諸于培養(yǎng)報(bào)道[14]。然而需知,不同組織血管來(lái)源的ECs的生物學(xué)行為存在差異,在血管生成的潛能、血管張力和免疫耐受等方面表現(xiàn)不同[15],需要合理、審慎地選擇培養(yǎng)種子細(xì)胞以適用不同研究目的需要。同時(shí),血管新生所形成的成熟新生血管除了ECs這一主體細(xì)胞之外,還有一種重要的細(xì)胞成分——周細(xì)胞。周細(xì)胞是正常微血管管壁的構(gòu)成細(xì)胞,在體內(nèi)血管新生時(shí)具有血管基質(zhì)降解、控制ECs增殖、調(diào)控新生血管生長(zhǎng)的功能[16]。在血管新生體外三維培養(yǎng)模型構(gòu)建時(shí),我們需要考慮周細(xì)胞對(duì)血管新生復(fù)雜而多樣的作用,合理、完善的血管新生體外三維培養(yǎng)模型應(yīng)該包含以上兩種細(xì)胞,而這正是既往研究所欠缺的——其往往僅采用單一的ECs作為種子細(xì)胞。在本次研究中,我們首次基于實(shí)驗(yàn)室最常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物大鼠的視網(wǎng)膜微血管ECs作為主要種子細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),以適用視網(wǎng)膜新生血管性疾病模型的需要。并加入了適量的RMPs進(jìn)行聯(lián)合培養(yǎng),種子細(xì)胞較既往研究更為全面。本次研究結(jié)果顯示ECs在培養(yǎng)的過(guò)程中能招募RMPs,彼此共同形成血管樣條索結(jié)構(gòu)。這一現(xiàn)象與體內(nèi)血管新生時(shí)ECs招募RMPs形成新生血管的生物學(xué)行為類似[5-6],提示這種三維培養(yǎng)方式或?qū)⒛芨浞值啬M體內(nèi)視網(wǎng)膜血管新生的真實(shí)生理或病理過(guò)程。
在培養(yǎng)方法方面,學(xué)者們既往提出了多種不同的方案,如動(dòng)脈環(huán)培養(yǎng)法、表面培養(yǎng)法、夾心培養(yǎng)法、混和培養(yǎng)法、微載體培養(yǎng)法等,各種方法具有各自的優(yōu)缺點(diǎn)[1],需要根據(jù)研究目的選擇適用的方法。其中表面培養(yǎng)法指將種子細(xì)胞添加在凝固的基質(zhì)凝膠表面進(jìn)行培養(yǎng)的方法,能夠較好模擬體內(nèi)微血管成分細(xì)胞降解基質(zhì)、相互招募形成新生血管的過(guò)程,具有形成管狀、網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)快的特點(diǎn)。本次研究選用表面培養(yǎng)法進(jìn)行了培養(yǎng),研究發(fā)現(xiàn)孵育后12h即可以形成簡(jiǎn)單的血管樣條索,與既往單純采用ECs作為種子細(xì)胞的約48h才能檢測(cè)到管腔樣結(jié)構(gòu)的研究[17]要快,能夠滿足快速實(shí)驗(yàn)的需要。
如何判定模型的有效性是血管新生體外三維培養(yǎng)模型一個(gè)關(guān)鍵的所在。從生理學(xué)角度而言,理想的血管新生體外三維模型應(yīng)能詮釋體內(nèi)有代表性的血管新生過(guò)程:原有微血管充血,ECs、周細(xì)胞激活;基底膜降解;ECs移行,穿過(guò)基底膜,向刺激原運(yùn)動(dòng);ECs和周細(xì)胞遷移、分裂、增生;形成新的毛細(xì)血管腔,由周細(xì)胞圍繞;新的基底膜形成,層黏連蛋白發(fā)育;毛細(xì)血管袢及網(wǎng)形成[5-6]。Folkman在體外首次觀察到血管新生時(shí),發(fā)現(xiàn)ECs形成的毛細(xì)血管樣結(jié)構(gòu)中存在腔隙[8],這種現(xiàn)象能被光鏡所觀察。后續(xù)血管新生體外三維培養(yǎng)研究報(bào)道參考了該報(bào)道,均以毛細(xì)血管樣結(jié)構(gòu)中是否存在腔隙來(lái)判定培養(yǎng)模型的有效性。在本次研究中,我們觀察到12h時(shí),ECs能招募RMPs成為細(xì)胞團(tuán),并形成簡(jiǎn)單的條索樣結(jié)構(gòu)。之后進(jìn)程明顯加速,在24h時(shí)能形成廣泛復(fù)雜的具有腔隙的三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。三維結(jié)構(gòu)以ECs為主,RMPs鑲嵌其中,這種細(xì)胞構(gòu)架與體內(nèi)視網(wǎng)膜微血管結(jié)構(gòu)類似。這表明本研究基于全微血管細(xì)胞成分(ECs和RMPs)所構(gòu)建的血管新生體外三維培養(yǎng)模型具有充分的有效性。
同時(shí),我們也觀察到本次研究中三維網(wǎng)狀血管樣條索持續(xù)的時(shí)間較短,在孵育的第24h達(dá)到頂峰狀態(tài),之后開(kāi)始出現(xiàn)崩解,48h時(shí)只保持少量不完整的簡(jiǎn)單的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),72h后僅殘留少量小的離散的細(xì)胞團(tuán)。這一現(xiàn)象除與培養(yǎng)基內(nèi)供細(xì)胞生存、增殖使用的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)有限相關(guān)外,還可能與VEGF等促血管生成的細(xì)胞因子含量下降相關(guān)[18]。VEGF是一種分泌型蛋白,可由ECs分泌,是血管新生過(guò)程中重要的細(xì)胞因子[19]。本研究觀察到,隨著ECs/RMPs三維血管樣條索網(wǎng)的發(fā)生,VEGF-A的表達(dá)量升高。網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)退化時(shí),VEGF-A的表達(dá)量下降。這一結(jié)果表明VEGF-A在三維培養(yǎng)模型構(gòu)建中參與了血管樣條索網(wǎng)的生成過(guò)程。但是血管新生是受多重因素共同影響的復(fù)雜過(guò)程,如何維持三維血管樣條索網(wǎng)的存在時(shí)間有待進(jìn)一步研究。
本研究成功基于微血管全成分細(xì)胞ECs和RMPs構(gòu)建了大鼠視網(wǎng)膜血管新生體外三維培養(yǎng)模型,可以作為視網(wǎng)膜新生血管相關(guān)性疾病體外研究的工具。