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    紅樺組織培養(yǎng)體系的建立

    2021-07-11 03:34:00付雪寧高洪治申耀榮王永康姜在民
    林業(yè)科學(xué)研究 2021年3期
    關(guān)鍵詞:外植體蔗糖生根

    付雪寧,高洪治,申耀榮,王永康,姜在民,蔡 靖*

    (1. 西北農(nóng)林科技大學(xué)林學(xué)院,陜西 楊凌 712100;2. 甘肅省小隴山林業(yè)實(shí)驗(yàn)局洮坪林場(chǎng),甘肅 隴南 742200;3. 陜西省寶雞市馬頭灘林業(yè)局,陜西 寶雞 721006;4. 西北農(nóng)林科技大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,陜西 楊凌 712100)

    紅樺(Betula albo-sinensisBurk.)是樺木科樺木屬樹種,為我國(guó)特有種,分布于陜西、甘肅、寧夏、青海、云南、四川、湖北、河北、河南、山西等地,垂直分布海拔為1 000~3 400 m。樹高可達(dá)30 m,樹皮為淡紅褐色或紫紅色,呈薄層狀剝落,剝落樹皮為紙質(zhì)[1]。

    紅樺枝干挺拔,顏色亮麗,觀賞價(jià)值高,可用于園林綠化;其獨(dú)特的紙質(zhì)樹皮可用于工藝品制作以及包裝行業(yè),具有較高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值;其木材質(zhì)地堅(jiān)韌,結(jié)構(gòu)細(xì)密,可作優(yōu)良的板材;適應(yīng)能力強(qiáng),亦可用做荒山造林樹種,是我國(guó)北方高海拔地區(qū)重要的先鋒造林樹種,也是高山主要成林樹種[2]。但由于20世紀(jì)70~80年代的大量砍伐,紅樺原始林遭到了嚴(yán)重破壞,采伐后恢復(fù)起來的次生林,林分密度過大、質(zhì)量不高,生產(chǎn)力低,各種生態(tài)和社會(huì)服務(wù)功能沒有得到有效發(fā)揮,且紅樺種子天然萌發(fā)對(duì)光照和晝夜溫差要求較高,種子更新困難[3],因此,建立簡(jiǎn)單高效的紅樺再生體系具有重要意義。

    國(guó)外在樺樹組織培養(yǎng)方面先后建立了紙樺(B.papyriferaMarshall)[4]、日本白樺(B. platyphyllavar.Japonica)[5]、垂枝樺(B.pendulaRoth.)[6]等樺樹的組培再生體系;我國(guó)從20世紀(jì)70年代開始,亦已進(jìn)行了白樺(B. platyphyllaSuk.)[7]、光皮樺(B. luminiferaH.Wink.)[8]、西南樺(B. alnoidesBuch Ham.ex D.Don)[9]、裂葉垂枝樺[10]等樺木組織培養(yǎng)體系研究。

    由于國(guó)內(nèi)對(duì)于紅樺組織培養(yǎng)方面的研究尚無,故本研究通過器官發(fā)生途徑建立高效穩(wěn)定的紅樺組織培養(yǎng)技術(shù)體系,以期為紅樺良種選育、定向培育及遺傳轉(zhuǎn)化等方面的研究提供理論支持,為高海拔地區(qū)荒山紅樺造林提供技術(shù)支持,同時(shí)也可填補(bǔ)紅樺無性繁殖研究方面的空白。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料的獲得及預(yù)處理

    分別于2017年冬季至2018年早春在陜西省寧陜縣火地塘林場(chǎng),采集生長(zhǎng)健壯、無病蟲害的紅樺帶休眠芽枝條,選取飽滿休眠芽,剝?nèi)ネ鈱友亏[,剩余內(nèi)部長(zhǎng)約0.5 cm的芽尖,基部連帶1~2 mm長(zhǎng)的莖段,置于大燒杯中,用紗布封口后,自來水沖洗1~2 h。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 0.1%HgCl2滅菌時(shí)間對(duì)無菌外植體獲得的影響 將休眠芽在超凈工作臺(tái)上先用70%酒精消毒30 s,接著用無菌水沖洗4~5次,再用0.1% HgCl2分別滅菌4、6、8、10、12 min,用無菌水沖洗5~6次,消毒過程中輕微地?fù)u晃滅菌容器。處理完成后接種在不添加任何激素的WPM培養(yǎng)基上。每個(gè)處理接種20瓶,每瓶接種1個(gè)外植體,共重復(fù)3次,接種15 d后統(tǒng)計(jì)外植體污染率和萌發(fā)率。

    1.2.2 激素組合對(duì)休眠芽萌發(fā)的影響 以WPM為基本培養(yǎng)基,同時(shí)添加濃度為0.8、1.0、1.2、1.5、1.8、2.0 mg·L-1的6-BA和0.1、0.2 mg·L-1的NAA及0.01、0.02 mg·L-1的IBA。接種滅菌后的休眠芽,每個(gè)處理接種10瓶,每瓶接種1個(gè)外植體,共重復(fù)3次,培養(yǎng)3~4周后統(tǒng)計(jì)外植體萌發(fā)情況。

    1.2.3 激素組合對(duì)增殖的影響 初代培養(yǎng)得到的不定芽長(zhǎng)到3~5 cm時(shí),剪成長(zhǎng)約1 cm的帶芽莖段進(jìn)行增殖,增殖培養(yǎng)基為WPM基本培養(yǎng)基附加濃度為0.5、1.0、1.5、2.0 mg·L-1的6-BA和0.01、0.02、0.05 mg·L-1的NAA,每個(gè)處理接種15瓶,每瓶接種2個(gè)外植體,共重復(fù)3次,培養(yǎng)40 d后統(tǒng)計(jì)芽苗增殖系數(shù)、增殖苗健康指數(shù)。

    1.2.4 基本培養(yǎng)基類型、IBA及蔗糖濃度對(duì)不定根誘導(dǎo)的影響 選取生長(zhǎng)健壯、葉色濃綠、高約5 cm無根單苗進(jìn)行生根培養(yǎng)。分別以WPM、MS、1/2 MS為基本培養(yǎng)基,添加蔗糖20、25、30、35 g·L-1,附加濃度為0.4、0.5、0.8、1.0 mg·L-1的IBA。每個(gè)處理接種20瓶,每瓶接種1個(gè)外植體,共重復(fù)3次,接種后定期觀察、記錄生根時(shí)間,培養(yǎng)25 d時(shí)統(tǒng)計(jì)生根條數(shù),計(jì)算生根率、生根指數(shù)、根健康指數(shù)。

    1.2.5 煉苗移植 選用生根培養(yǎng)25 d后生長(zhǎng)健壯、葉色鮮綠、根系發(fā)育良好的組培苗進(jìn)行煉苗移植,先將組培苗取出培養(yǎng)室,讓其帶蓋適應(yīng)溫室環(huán)境5 d,第6天開始逐漸開蓋,第8天完全開蓋后再存放5 d。后用清水沖洗干凈組培苗根系附著的培養(yǎng)基,移植于裝有混合基質(zhì)(國(guó)產(chǎn)泥炭:國(guó)產(chǎn)水苔:腐殖質(zhì)體積比為1:4:1)的營(yíng)養(yǎng)缽中。移植后每天噴水4~6次,保持小環(huán)境濕度在90%以上,溫度控制在20~25℃,21 d后統(tǒng)計(jì)成活率及生長(zhǎng)狀況。

    1.2.6 培養(yǎng)條件與數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析 若無特別說明,所有培養(yǎng)基均添加蔗糖30 g·L-1、瓊脂7 g·L-1,pH調(diào)至5.8,高溫(121℃)高壓滅菌20 min,培養(yǎng)溫度為(25 ± 2)℃,光周期16 h/8 h,光照強(qiáng)度36 μmol·m-2·s-1。

    增殖系數(shù) = 增殖芽數(shù)/接種芽數(shù)

    增殖苗健康指數(shù) = 增殖苗生長(zhǎng)狀況值之和/增殖苗總數(shù)(增殖苗生長(zhǎng)狀況劃分為“3”、“2”、“1”3個(gè)級(jí)別,其中,“3”表示芽苗生長(zhǎng)健壯、莖干粗壯、葉片大且鮮綠;“2”表示生長(zhǎng)較健壯、黃葉較少、無玻璃化;“1”表示生長(zhǎng)一般、葉片小而卷曲、存在部分黃葉莖干稍細(xì)弱)。

    根健康指數(shù) = 根系生長(zhǎng)狀況值之和/生根苗總數(shù)(根系生長(zhǎng)狀況劃分為“3”、“2”、“1” 3個(gè)級(jí)別,其中,“3”表示根粗細(xì)適中不易斷裂,長(zhǎng)度適中,有大量須根;“2”表示根較粗壯易斷裂,有少量須根;“1”表示根較細(xì)弱,無須根)。

    生根指數(shù) = 生根率 × 平均根長(zhǎng) × 平均生根數(shù)

    使用SPSS軟件對(duì)所統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析(ANOVA)和顯著性檢驗(yàn),顯著水平為P< 0.05。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 0.1% HgCl2對(duì)無菌外植體獲得的影響

    高污染率、褐化死亡率及低萌發(fā)率極大地限制了植物組織培養(yǎng)體系的建立。由表1可以看出:滅菌劑處理時(shí)間不同,外植體接種后生長(zhǎng)狀態(tài)不同;隨著0.1% HgCl2處理時(shí)間的延長(zhǎng),外植體的污染率呈現(xiàn)逐漸降低的趨勢(shì),但與此同時(shí),由HgCl2自身引起的外植體褐化程度也逐漸加劇,當(dāng)處理時(shí)間為8 min時(shí),除去褐化及污染的影響,外植體萌發(fā)率達(dá)到所有處理中最高值,為60%。因此,綜合上述3個(gè)指標(biāo),篩選出最適宜紅樺外植體消毒滅菌的方法為:先用70%酒精消毒30 s,無菌水沖洗3~4次,然后用0.1% HgCl2消毒8 min,無菌水沖洗5~6次。

    表1 0.1% HgCl2滅菌時(shí)間對(duì)無菌外植體獲得的影響Table 1 Effects of 0.1% HgCl2 sterilization time on the acquisition of sterile explants

    2.2 激素組合對(duì)休眠芽萌發(fā)的影響

    初代培養(yǎng)結(jié)果(表2)表明:不同激素組合對(duì)休眠芽的萌發(fā)以及生長(zhǎng)狀態(tài)影響不同;當(dāng)添加一定濃度的NAA時(shí),隨著6-BA濃度的增加,外植體的萌發(fā)率總體呈先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)NAA濃度為0.1 mg·L-1、6-BA濃度為1.5 mg·L-1時(shí),外植體萌發(fā)率達(dá)到最高,為83.33%,且此時(shí)外植體生長(zhǎng)狀態(tài)最佳,休眠芽在培養(yǎng)1周左右時(shí)開始萌發(fā),葉片全部展開后莖也逐漸開始伸長(zhǎng)生長(zhǎng);而當(dāng)6-BA濃度一定時(shí),NAA濃度升高,外植體萌發(fā)率逐漸下降,外植體生長(zhǎng)狀態(tài)無明顯變化,當(dāng)NAA濃度為0.2 mg·L-1時(shí),所有處理下的外植體均不產(chǎn)生莖,平均萌發(fā)率也較添加0.1 mg·L-1NAA時(shí)下降了10.61%。休眠芽初代培養(yǎng)過程中最主要的問題是只萌發(fā)展葉而不伸長(zhǎng)生長(zhǎng),這樣狀態(tài)的外植體無法用于增殖以及生根培養(yǎng)。初代培養(yǎng)所有試驗(yàn)中,只有B4和B5處理下,外植體產(chǎn)生了莖,但B5誘導(dǎo)產(chǎn)生的莖較細(xì)弱,且葉片出現(xiàn)黃化現(xiàn)象,綜合考慮,紅樺休眠芽初代培養(yǎng)最佳激素配比組合為1.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA。

    表2 植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)初代培養(yǎng)的影響Table 2 Effects of plant growth regulators on primary culture

    2.3 激素組合對(duì)增殖的影響

    將紅樺帶芽莖段接種到含有不同激素配比的增殖培養(yǎng)基中,培養(yǎng)約7 d莖段基部開始分化出芽點(diǎn),周圍產(chǎn)生綠色愈傷組織。培養(yǎng)40 d后的統(tǒng)計(jì)結(jié)果(表3)表明:增殖系數(shù)以及增殖苗健康指數(shù)均隨6-BA濃度的升高呈先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)6-BA濃度為1.5 mg·L-1時(shí),增殖系數(shù)較1.0、2.0 mg·L-1濃度分別高出66.54%、62.37%,健康指數(shù)分別高出64.18%、46.67%,增殖情況最佳;隨著NAA濃度增加,增殖系數(shù)和健康指數(shù)的變化趨勢(shì)也表現(xiàn)為先上升后下降,在濃度為0.02 mg·L-1時(shí),平均增殖系數(shù)為3.73,平均健康指數(shù)為1.75,均達(dá)到3個(gè)濃度處理中最高值。因此,紅樺增殖培養(yǎng)最佳植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑配比為1.5 mg·L-16-BA+ 0.02 mg·L-1NAA,此處理下紅樺增殖系數(shù)達(dá)到4.77,健康指數(shù)達(dá)到2.45。

    表3 植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)增殖培養(yǎng)的影響Table 3 Effects of plant growth regulators on the proliferation culture

    2.4 基本培養(yǎng)基類型、IBA及蔗糖濃度對(duì)不定根誘導(dǎo)的影響

    生根培養(yǎng)約7 d,外植體基部可見嫩根生出,生根培養(yǎng)過程中也伴隨著壯苗效果,組培苗的長(zhǎng)勢(shì)逐漸變好,莖變粗,葉片變大且顏色由淡綠變?yōu)榇渚G。培養(yǎng)25 d不同基本培養(yǎng)基以及不同濃度IBA對(duì)生根的影響見圖1,3種不同基本培養(yǎng)基下的平均生根率(圖1A)高低次序依次為:1/2 MS >W(wǎng)PM > MS,1/2 MS培養(yǎng)下的平均生根率為84.9%,為MS培養(yǎng)的2.6倍;雖然1/2 MS培養(yǎng)下紅樺生根率最高,但其平均生根條數(shù)(圖1B)、根長(zhǎng)(圖1C)、生根指數(shù)(圖1D)均小于WPM培養(yǎng)下生根苗的相應(yīng)指標(biāo),分析根健康指數(shù)(圖1E),WPM培養(yǎng)下根健康指數(shù)平均為1.77,高于另外2種基本培養(yǎng)基,生根苗也更易移植成活,因此,紅樺最佳生根基本培養(yǎng)基為WPM。

    圖1 基本培養(yǎng)基類型及IBA濃度對(duì)紅樺不定根誘導(dǎo)的影響Fig.1 Effects of basic medium type and IBA concentration on the induction of adventitious roots of Betula albo-sinensis

    不同濃度IBA處理的平均生根率高低次序?yàn)椋?.8>1.0>0.5>0.4 mg·L-1,分別為75.8%、74.2%、73.3%、14.67%,可看出IBA濃度與生根率先呈正相關(guān),在0.8 mg·L-1時(shí)生根率達(dá)最高值,而當(dāng)濃度升至1.0 mg·L-1時(shí),生根率則有所下降。綜合考慮生根率及無根單株生根狀態(tài),即生根數(shù)、根長(zhǎng)、健康指數(shù)及生根指數(shù),得出以WPM為基本培養(yǎng)基,附加0.8 mg·L-1IBA時(shí)生根效果最佳,此處理下生根率達(dá)到100%,健康指數(shù)也高達(dá)2.61。

    蔗糖濃度對(duì)生根培養(yǎng)的影響見表4,生根率隨蔗糖濃度的升高而逐漸增加,當(dāng)濃度超過25 g·L-1時(shí),各處理間的差異并不顯著。在濃度為30、35 g·L-1時(shí)均達(dá)到了100%的生根率,但在30 g·L-1蔗糖的處理下,平均生根條數(shù)、根長(zhǎng)、生根指數(shù)、健康指數(shù)均高于35 g·L-1的處理,表明紅樺生根培養(yǎng)添加最適蔗糖濃度應(yīng)為30 g·L-1。

    表4 蔗糖濃度對(duì)生根培養(yǎng)的影響Table 4 Effects of sucrose concentration on rooting culture

    2.5 煉苗移植

    組培瓶苗移植第2天開始原有葉片開始逐漸萎蔫掉落,第7天開始從側(cè)芽處萌發(fā)新葉,第14天左右結(jié)束緩苗,植株長(zhǎng)勢(shì)逐漸恢復(fù),葉片逐漸變大且顏色變翠綠,莖也變粗壯且逐漸木質(zhì)化,21 d統(tǒng)計(jì)移植成活率為83.9%。

    3 討論

    無菌外植體的獲得是植物組織培養(yǎng)無菌體系建立的第一步,選擇合適的消毒滅菌方法對(duì)組織培養(yǎng)研究具有重要意義[11-12]。郭軍戰(zhàn)等[13]通過對(duì)四倍體刺槐的研究,發(fā)現(xiàn)用莖段作外植體時(shí),用0.1%HgCl2滅菌10 min效果最好,而本研究用紅樺休眠芽做外植體,得出用0.1% HgCl2處理8 min時(shí)滅菌效果最佳,當(dāng)滅菌時(shí)間為10 min時(shí),外植體污染率無顯著變化而萌發(fā)率卻顯著降低。這可能是因?yàn)橥庵搀w類型及狀態(tài)有所不同,剝?nèi)パ亏[的休眠芽比莖段更脆弱,長(zhǎng)時(shí)間接觸滅菌劑會(huì)造成外植體損傷而降低萌發(fā)率。不同外植體的適宜消毒滅菌方法不盡相同,滅菌劑的選擇需要根據(jù)外植體的大小與堅(jiān)硬程度等決定,其成分及處理時(shí)間會(huì)對(duì)外植體產(chǎn)生不同的滅菌效果,滅菌時(shí)間過短會(huì)滅菌不徹底,導(dǎo)致外植體出現(xiàn)污染,而滅菌時(shí)間過長(zhǎng)則會(huì)損傷外植體,引起外植體的褐化死亡現(xiàn)象。

    增殖培養(yǎng)的效果好壞是大規(guī)??旆斌w系建立的關(guān)鍵[14],細(xì)胞分裂素與生長(zhǎng)素的合理使用可促進(jìn)芽苗增殖。他人研究發(fā)現(xiàn),適宜白樺、垂枝樺、西南樺增殖培養(yǎng)的植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑配比分別為1.0 mg·L-16-BA+0.05 mg·L-1NAA、0.75 mg·L-16-BA+0.75 mg·L-1KT+0.1 mg·L-1NAA、0.5 mg·L-16-BA+0.01 mg·L-1NAA[15-17]。本研究得出最適宜紅樺增殖的激素配比為1.5 mg·L-16-BA+0.02 mg·L-1NAA??梢姡瑯迥究茦浞N增殖培養(yǎng)所用激素多為6-BA與NAA,且前者常用濃度為0.5~1.5 mg·L-1,后者則為0.01~0.1 mg·L-1,垂枝樺的增殖培養(yǎng)雖然使用了6-BA和KT兩種細(xì)胞分裂素,但其總量仍未超過1.5 mg·L-1。此外,本研究發(fā)現(xiàn),隨著6-BA和NAA濃度的增加,增殖系數(shù)、增殖苗健康指數(shù)均呈先上升后下降的趨勢(shì),兩類激素濃度過高或過低雖在一定程度上可使芽苗數(shù)量增加,但增殖系數(shù)與增殖苗健康指數(shù)均不佳,增殖苗不適用于生根培養(yǎng)。不同樺樹增殖苗質(zhì)量隨著激素濃度變化呈現(xiàn)不同的變化趨勢(shì),細(xì)胞分裂素與生長(zhǎng)素的最佳比例需在具體研究過程中進(jìn)行不斷試驗(yàn)。

    外植體是否生根決定了組培快繁體系建立的成敗[18],影響生根培養(yǎng)的因素主要有基本培養(yǎng)基、激素濃度與配比、蔗糖、瓊脂等附加物的濃度、培養(yǎng)條件等[19]。一般用于生根培養(yǎng)的培養(yǎng)基有1/8 MS、1/4 MS、1/2 MS、MS、WPM等,而生根率一般隨著培養(yǎng)基鹽濃度的降低而升高,但濃度過低則會(huì)無法滿足組培苗生根的營(yíng)養(yǎng)需求[20-21]。本研究發(fā)現(xiàn),紅樺生根培養(yǎng)效果為WPM > 1/2 MS > MS。張麗杰等[22]通過對(duì)歐洲垂枝樺生根的研究也得出了相同的結(jié)論,雖然1/2 MS培養(yǎng)下紅樺生根率與WPM培養(yǎng)下無顯著性差異,但所生根質(zhì)量不高,根粗壯、易斷裂、須根少,而WPM培養(yǎng)下所生根粗細(xì)適中不易斷裂,長(zhǎng)度適中,有大量須根,更適宜于煉苗移植,這可能是因?yàn)閃PM培養(yǎng)下組培苗基部形成的愈傷組織較少,使得所生根與維管束聯(lián)系更緊密,地上部分長(zhǎng)勢(shì)更好,移植成活率高。除去基本培養(yǎng)基,生長(zhǎng)素IBA在多種植物不定根的誘導(dǎo)起到較好的作用[23]。本研究表明,當(dāng)添加IBA濃度小于1.0 mg·L-1時(shí),其濃度與生根效果呈正相關(guān),而當(dāng)濃度達(dá)到1.0 mg·L-1時(shí),生根率、生根指數(shù)、健康指數(shù)均有所下降,最適于生根培養(yǎng)的濃度為0.8 mg·L-1,這與黃永偉等[24]對(duì)文冠果生根因素研究結(jié)果相同,IBA雖然對(duì)不定根的產(chǎn)生有促進(jìn)作用,但濃度過高則會(huì)起到抑制作用。

    一切植物組織都不能在沒有碳水化合物的條件下生長(zhǎng),碳水化合物的作用是作為碳源和滲透壓穩(wěn)定劑,一般植物組織培養(yǎng)在以蔗糖為碳源的培養(yǎng)基中[25-26]。魏爽[27]研究結(jié)果表明,在蔗糖濃度為30 g·L-1時(shí),遼東櫟的根長(zhǎng)勢(shì)較好,而在濃度為20 g·L-1時(shí),根系雖健壯,但苗的長(zhǎng)勢(shì)弱,葉片發(fā)黃。本研究試驗(yàn)了20、25、30、35 g·L-1蔗糖對(duì)紅樺不定根誘導(dǎo)的影響,結(jié)果也表明,當(dāng)添加30 g·L-1蔗糖時(shí),對(duì)生根培養(yǎng)起到有效的促進(jìn)作用;而詹亞光等[28]對(duì)白樺的相關(guān)研究則表明,蔗糖濃度對(duì)白樺組培苗生根率影響不顯著。不同植物的生長(zhǎng)特性導(dǎo)致其生長(zhǎng)所需蔗糖量不同,通過上述研究結(jié)論對(duì)比可知,遼東櫟與紅樺生根過程對(duì)蔗糖的需求量相近,當(dāng)蔗糖濃度過低時(shí),植物無法獲得生長(zhǎng)所需碳源而生長(zhǎng)不良,過高則會(huì)導(dǎo)致培養(yǎng)基滲透壓過高影響外植體的正常生長(zhǎng);而白樺的研究結(jié)論則可能是因?yàn)槠湓囼?yàn)是在添加了0.2 mg·L-1IBA的條件下進(jìn)行的,IBA對(duì)生根的影響程度更大,蔗糖濃度在一個(gè)適宜的范圍內(nèi)并不會(huì)對(duì)生根率造成明顯影響。

    4 結(jié)論

    通過對(duì)紅樺組織培養(yǎng)各個(gè)階段進(jìn)行試驗(yàn),最終建立了完整的紅樺器官發(fā)生途徑再生體系,培養(yǎng)過程見圖2,即以紅樺休眠芽為外植體,先用70%酒精消毒30 s,無菌水沖洗3~4次,然后用0.1%HgCl2消毒8 min,無菌水沖洗5~6次獲得無菌材料,初代培養(yǎng)最適宜激素配比為WPM +1.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA;增殖培養(yǎng)最佳配比為WPM +1.5 mg·L-16-BA+0.02 mg·L-1NAA;生根培養(yǎng)最佳配比為WPM +0.8 mg·L-1IBA,所有培養(yǎng)基配比均附加30 g·L-1蔗糖與7 g·L-1瓊脂;生長(zhǎng)良好組培苗移植于裝有混合基質(zhì)(國(guó)產(chǎn)泥炭∶國(guó)產(chǎn)水苔∶腐殖質(zhì)體積比為1∶4∶1)的營(yíng)養(yǎng)缽中,21 d統(tǒng)計(jì)移植成活率為83.9%。此體系可為紅樺良種選育、定向培育、遺傳轉(zhuǎn)化等研究奠定重要基礎(chǔ)。

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