閆林軒 梅霄陽 章林明 常越辰 馬克濤 李麗 王勤章 李應(yīng)龍,3
1石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)院(新疆石河子832000);2石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院(新疆石河子832000);3成都中醫(yī)藥大學(xué)附屬第五人民醫(yī)院(成都610000)
腎臟缺血再灌注損傷(renal ischemia?reperfu? sion injury,RIRI)是泌尿外科臨床工作中常見的病理過程。RIRI 會造成腎小管上皮細(xì)胞極性喪失及離子進(jìn)出胞膜功能障礙,細(xì)胞與細(xì)胞以及和細(xì)胞基質(zhì)的粘附能力降低,細(xì)胞凋亡程序的啟動,最終導(dǎo)致腎小管上皮細(xì)胞脫落凋亡[1],嚴(yán)重影響腎功能。腎小管上皮細(xì)胞的凋亡是RIRI 的顯著特征,如何在RIRI 中減少腎小管上皮細(xì)胞凋亡具有重要的臨床意義。藥物預(yù)處理已成為其損傷預(yù)防和治療的關(guān)鍵切入點[2]。本課題組前期研究及相關(guān)文獻(xiàn)報道顯示,雌激素可通過抗凋亡、抑制炎癥反應(yīng)、調(diào)節(jié)細(xì)胞免疫平衡及動脈舒縮功能等對RIRI 起到保護作用[3-6]。如何有效提高雌激素作用的靶向性,避免雌激素的特殊性質(zhì)[7]將成為研究的重點。GPER 是近年來發(fā)現(xiàn)的雌激素的一種G 蛋白耦聯(lián)受體[8],這類受體定位于細(xì)胞膜上,可發(fā)揮雌激素的快速非基因組效應(yīng)[9]。有研究[10-12]表明GPER 可通過減輕細(xì)胞凋亡來發(fā)揮對心肌、腦、小腸等I/R損傷后的保護作用。因此,本研究通過建立OVX 大鼠腎臟I/R損傷模型來研究GPER 對RIRI 后腎小管上皮細(xì)胞凋亡的影響,探討其相關(guān)機制,為今后臨床治療RIRI 提供新的視角。
1.1 實驗材料選取SPF 級雌性Sprague?Dawley(SD)大鼠(10 ~12 周齡,220 ~280 g)32 只,從新疆醫(yī)科大學(xué)動物中心獲得(許可證編號SCXK 新2018?0001)。經(jīng)石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)院動物管理和使用委員會(IACUC)批準(zhǔn)(A2046?047?02)。購進(jìn)SD大鼠后適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周,動物房控制溫度在24 ~28 ℃和濕度45% ~55%,給予標(biāo)準(zhǔn)化飼養(yǎng),水和食物均可自由獲得。
1.2 主要試劑與儀器GPER 受體特異性激動劑G1、特異性阻斷劑G15(ApexBio,美國),兔抗Bcl?2、Caspase?3 抗體(Abcam,美國),小鼠抗GAPDH、山羊抗兔/小鼠抗體(北京中杉金橋),全自動生化分析儀(瑞士Roche 公司),低溫高速離心機(德國Eppendorf 公司),DYY?6D 型電泳儀(北京六一生物科技有限公司)。
1.3 方法
1.3.1 雌性去卵巢(OVX)模型和I/R模型的制備將雌性SD 大鼠禁食水后腹腔注射3%戊巴比妥鈉(50 mg/kg)麻醉,切除雙側(cè)卵巢。自術(shù)后14 d,按照隨機數(shù)字表法分為4 組,每組8 只。(1)OVX 組;(2)缺血再灌注損傷(OVX+I/R)組;(3)G1 干預(yù)(OVX+I/R+G1)組;(4)G15 阻斷劑(OVX+I/R+G15+G1)組。經(jīng)腹腔注射給予G1 干預(yù)(120 μg/kg·d),連續(xù)3 d;G15 阻斷劑(300 μg/kg·d),30 min 后給予腹腔注射G1 干預(yù)(120 μg/kg·d),連續(xù)3 d;其余兩組給予等量DMSO[13-14]。再次麻醉后切除右腎,分離左腎動脈并用無創(chuàng)動脈夾夾閉,觀察腎臟顏色逐漸變?yōu)榘导t色,說明缺血成功,45 min 后去除無創(chuàng)動脈夾,恢復(fù)腎臟灌流,再灌注24 h。
1.3.2 血肌酐(SCr)、血尿素氮(BUN)、乳酸脫氫酶(LDH)的檢測再灌注24 h 后,各組大鼠行腹主動脈采全血,低溫高速離心機4 000 r/min 離心10 min,取上清測定SCr、BUN、LDH,評價各組大鼠腎功能。
1.3.3 HE 染色和Paller 評分取左腎常規(guī)石蠟包埋,HE 染色,200 倍光鏡下觀察腎臟組織病理形態(tài)的改變。并由兩名專業(yè)的病理科醫(yī)師對其進(jìn)行Paller 評分[15]。400 倍鏡下,隨機選取腎皮髓交界區(qū)10 個連續(xù)的視野,每高倍鏡視野隨機選取10 個腎小管,按100 個腎小管記分。標(biāo)準(zhǔn):腎小管上皮細(xì)胞形態(tài)改變1 分,刷狀緣損傷1 分,刷狀緣脫落2 分,管型2 分,管腔內(nèi)有脫落壞死的細(xì)胞(未成管型或細(xì)胞碎片)1 分,管徑變形增寬明顯1 分[16]。
1.3.4 免疫組化檢測各組大鼠Bcl?2、Caspase?3 蛋白的表達(dá)制備4 μm 厚石蠟切片,二甲苯、乙醇梯度脫蠟水化,蒸餾水清洗3 次,行抗原修復(fù)后用PBS 漂洗3 次,加入一抗4 ℃孵育過夜,復(fù)溫后加入二抗,DAB 染色,在顯微鏡下觀察。
1.3.5 Western blot 法檢測腎臟組織凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)水平提取腎臟組織總蛋白,BCA 法測定蛋白濃度后于SDS?聚丙烯酰胺凝膠進(jìn)行電泳,濕轉(zhuǎn)至PVDF 膜,室溫封閉2 h。TBST 漂洗后滴加一抗(抗Bcl?2、Caspase?3 和抗GAPDH 抗體均以1∶1 000稀釋),搖床上4 ℃孵育過夜。TBST 洗膜,加入二抗(二抗均以1∶10 000 稀釋)室溫孵育2 h,暗室曝光。測定蛋白條帶灰度值,以GAPDH 蛋白為內(nèi)參,計算凋亡相關(guān)蛋白的相對表達(dá)量。
1.4 統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 21.0 軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析。以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,若服從正態(tài)分布,多組間比較采用單因素方差分析;兩兩比較采用t檢驗;若方差不齊,則采用t′檢驗。P<0.05認(rèn)為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 腎功能檢測結(jié)果與OVX 組相比,OVX+I/R組的SCr、BUN 和LDH 水平顯著升高(P<0.01)。G1 干預(yù)組較OVX+I/R 組明顯降低(P<0.01)。G15阻斷劑組均高于G1 干預(yù)組(P<0.01)。見圖1。
2.2 腎組織HE 染色及Paller 評分HE 染色200倍光鏡下觀察,與OVX 組相比,OVX+I/R 組腎小管顯著擴張其形態(tài)也發(fā)生改變,部分腎小管結(jié)構(gòu)不清,上皮細(xì)胞水腫且核脫落明顯,有管腔阻塞及管型的出現(xiàn),刷狀緣損傷脫落。G1干預(yù)后可見腎小管輕度擴張,細(xì)胞形態(tài)較I/R 組壞死脫落減少。G15阻斷劑組逆轉(zhuǎn)了G1 激動GPER 后的保護作用。Paller 評分顯示與OVX 組相比,OVX+I/R 組腎小管結(jié)構(gòu)損傷嚴(yán)重[(44.38 ± 3.46)vs.(9.63 ± 2.33),P<0.01],G1干預(yù)組比OVX+I/R組腎小管損害明顯減輕[(30.38±3.67)vs.(44.38±3.46),P<0.01],阻斷劑組可部分逆轉(zhuǎn)G1 激活GPER 后的作用[(38.00±3.21)vs.(30.38±3.67),P<0.01]。見圖2。
圖1 各組大鼠SCr(A),BUN(B)和LDH(C)的水平Fig.1 The levels of SCr(A),BUN(B)and LDH(C)in rats from each group
2.3 Bcl?2、Caspase?3 蛋白在大鼠腎臟上的表達(dá)免疫組化結(jié)果顯示Bcl?2 蛋白主要分布于腎小管上皮細(xì)胞胞膜上,胞漿內(nèi)有少量分布,陽性表達(dá)呈棕褐色。Caspase?3 蛋白表達(dá)主要分布于腎小管上皮細(xì)胞胞漿內(nèi),陽性表達(dá)呈棕褐色,與OVX 組相比,OVX+I/R 組Bcl?2 蛋白陽性表達(dá)減少,而Cas?pase?3 蛋白陽性表達(dá)明顯增加;G1 干預(yù)組較OVX+I/R 組Bcl?2 蛋白陽性表達(dá)明顯增加,Caspase?3 蛋白陽性表達(dá)減少;同時阻斷劑能夠逆轉(zhuǎn)這種狀況。見圖3。
2.4 凋亡相關(guān)蛋白Bcl?2、Cleaved Caspase?3 的表達(dá)比較OVX+I/R 組與OVX 組相比Bcl?2 蛋白的表達(dá)量降低(P<0.01),Cleaved Caspase?3 蛋白表達(dá)量則明顯升高(P<0.01)。G1 干預(yù)組較OVX+I/R 組Bcl?2 蛋白的表達(dá)量升高(P<0.01),Cleaved Caspase?3 蛋白表達(dá)量降低(P<0.01)。G15 阻斷劑組可部分逆轉(zhuǎn)G1 的干預(yù)作用(P<0.01)。見圖4。
RIRI 后會導(dǎo)致SCr、BUN 水平升高,甚至可造成急性腎小管壞死而發(fā)生腎小球濾過率急劇下降[17],最終導(dǎo)致腎功能障礙。本研究首先構(gòu)建雌性SD 大鼠去卵巢模型,去卵巢兩周后雌激素水平明顯降低[18],排除內(nèi)源性雌激素對實驗的影響;構(gòu)建I/R 損傷模型來觀察GPER 在腎臟缺血再灌注損傷中產(chǎn)生的作用,結(jié)果發(fā)現(xiàn)OVX+I/R 組大鼠SCr、BUN 及LDH 水平顯著升高,這都提示腎功能有明顯損害。Paller 評分升高,腎小管上皮細(xì)胞凋亡明顯,提示大鼠出現(xiàn)明顯的腎組織損害,與既往研究一致[13,18-19]。G1 激活GPER 后,腎功能及腎組織損害均減輕,Bcl?2 蛋白的表達(dá)量上升,而Caspase?3蛋白表達(dá)量均下降。
圖2 各組大鼠腎組織病理學(xué)改變(HE 染色,×200)和Paller 評分Fig.2 Histopathological changes(HE staining,×200)and Paller score of rats in each group
圖3 免疫組化法檢測各組大鼠腎組織Bcl?2 與Caspase?3 的表達(dá)(DAB,×200)Fig.3 The expression of Bcl?2 and Caspase?3 in kidney tissues of rats in each group was detected by immunohistochemistry(DAB,×200)
圖4 各組大鼠腎組織Bcl?2 與Cleaved Caspase?3 蛋白表達(dá)的比較Fig.4 Comparison of Bcl?2 and Cleaved Caspase?3 protein expression in kidney tissue of rats in each group
RIRI 后細(xì)胞由于炎癥、氧化應(yīng)激、胞內(nèi)鈣的超載、NO 損傷、興奮毒性等諸多因素[20],最終導(dǎo)致腎小管上皮細(xì)胞凋亡,而腎小管上皮細(xì)胞凋亡是急性腎損傷的重要機制之一。本研究結(jié)果顯示,于腎臟缺血再灌注前連續(xù)3 d 給予GPER 激動劑G1干預(yù),與OVX+I/R 組相比能夠明顯降低SCr、BUN及LDH 水平,改善了腎臟功能。腎臟HE 染色及Paller 評分結(jié)果顯示,G1 激活GPER 后腎小管損傷減輕,腎小管上皮細(xì)胞核脫落減少,腎小管管型形成減少,Paller 評分降低,減輕OVX 大鼠腎臟組織損傷。且CHANG 等[13]研究顯示G1 激活GPER 后可減輕OVX 大鼠腎臟I/R 后的損傷,與本研究結(jié)果相一致。這提示GPER 可減少腎臟缺血再灌注損傷后大鼠腎小管上皮細(xì)胞的凋亡。
GPER 的保護機制與凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá)水平密切相關(guān)。RIRI 后腎小管上皮細(xì)胞凋亡是由多種凋亡相關(guān)基因參與的調(diào)控過程。在調(diào)控細(xì)胞凋亡的過程中,Bcl?2 蛋白[21]起重要作用,它是線粒體凋亡通路中的一種抗凋亡蛋白,它可以抑制線粒體釋放細(xì)胞色素C、凋亡誘導(dǎo)因子(AIF),維持BAX/BAK 結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性,阻止二聚化反應(yīng)以及維持細(xì)胞鈣穩(wěn)態(tài)等作用。細(xì)胞凋亡主要有三條途徑:死亡受體途徑、線粒體途徑以及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)途徑[22]。三條凋亡途徑的最后通路都將經(jīng)歷Caspase 級聯(lián)反應(yīng)的發(fā)生以及Caspase?3 蛋白的表達(dá),Caspase?3作為核心關(guān)鍵酶參與細(xì)胞凋亡級聯(lián)反應(yīng),活化的Cleaved Caspase?3 的水解活性作用可直接誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,并能損傷DNA 加速細(xì)胞凋亡[23]。從免疫組化和Western blot 結(jié)果看,與OVX+I/R 組相比,在G1 激動GPER 后能夠明顯增加腎臟組織及腎小管上皮細(xì)胞中Bcl?2 蛋白表達(dá),減少由I/R 損傷引起的Caspase?3 蛋白的表達(dá)。這提示腎臟I/R 損傷可導(dǎo)致腎小管上皮細(xì)胞凋亡,而GPER 可以通過增加Bcl?2 蛋白的表達(dá),抑制Caspase?3 蛋白的表達(dá)來減輕細(xì)胞凋亡,與以往文獻(xiàn)報道結(jié)果類似[24]。結(jié)合上文結(jié)果來看,GPER 發(fā)揮腎臟I/R 損傷的保護作用可能是通過抑制凋亡通路的激活來實現(xiàn)的。
綜上所述,本研究證實了GPER 可以通過抑制腎小管上皮細(xì)胞凋亡減輕RIRI 后的腎損傷,進(jìn)一步驗證了G1 激活GPER 后對RIRI 的保護作用,為臨床治療RIRI 提供了新思路。但GPER 通過調(diào)控何種信號通路來抑制細(xì)胞凋亡尚不明確,其相關(guān)的分子機制還需要課題組進(jìn)一步研究。