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    miRNA-135a靶向調(diào)控HOXA10蛋白對乳腺癌細(xì)胞生物學(xué)特性的影響研究

    2021-04-30 02:36:24潘虹余小霞普艷紅袁瑞仙
    河北醫(yī)藥 2021年6期
    關(guān)鍵詞:熒光素酶空白對照乳腺癌

    潘虹 余小霞 普艷紅 袁瑞仙

    乳腺癌是一種常見的女性惡性腫瘤,具有很高的發(fā)病率,在我國,乳腺癌在女性惡性腫瘤中排第三位,嚴(yán)重危害著女性的身體健康[1]。臨床上雖然可通過手術(shù)治療,但是由于乳腺癌本身的發(fā)病原因多樣,涉及到的分子機制復(fù)雜,導(dǎo)致乳腺癌患者的長期生存率以及治療預(yù)后并不理想[2]。相關(guān)研究表明非編碼小分子RNA(microRNA,miRNA)是一類由19~22個核苷酸組成的小分子RNA,其可通過調(diào)節(jié)相關(guān)基因發(fā)揮促癌或者抑癌作用,與腫瘤密切相關(guān),在細(xì)胞增殖、凋亡以及侵襲等過程中至關(guān)重要[3,4]。其中miRNA-135a是定位于 3號染色體的miRNA-135 家族的重要組成成員,相關(guān)研究表明miRNA-135a在腦膠質(zhì)瘤、結(jié)腸癌、乳腺癌等惡性腫瘤中發(fā)揮重要的調(diào)控作用[5,6]。此外,同源框基因 HOXA10是胚胎發(fā)育過程中的重要轉(zhuǎn)錄因子,調(diào)節(jié)癌細(xì)胞的增生與分化。本研究將以MCF-7乳腺癌細(xì)胞作為模型細(xì)胞,探討miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞HOXA10表達的調(diào)控以及該作用對于乳腺癌細(xì)胞生物學(xué)特性的影響。

    1 材料與方法

    1.1 組織標(biāo)本 收集2017年5月至2018年3月于我院就診的58例乳腺癌患者癌組織及距離癌組織>2 cm 處的正常組織,經(jīng)組織病理學(xué)檢測證實為乳腺癌。所有入選患者在術(shù)前均未進行放化療和其他治療,且臨床病理資料完整。58例乳腺癌患者,年齡25~65歲,平均年齡(40.73±12.37)歲;TNM分期:Ⅰ期患者20例,Ⅱ期患者12例,Ⅲ期患者18例,Ⅳ期患者8例;腫瘤直徑<5 cm患者22例,≥5 cm患者36例;組織學(xué)分級:中高分化患者46例,低分化患者12例;共有36例發(fā)生區(qū)域淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移。所有患者同意本研究并簽署知情同意書,且經(jīng)我院倫理委員會審核批準(zhǔn)后收集標(biāo)本。

    1.2 試劑與儀器 乳腺癌細(xì)胞系MCF-7購自上海中科院細(xì)胞庫;miRNA-135a mimic以及miRNA-135a購買于GeenPharma; 胎牛血清購自Biowest公司;四甲基偶氮唑藍 (methyl thiazolyltetrazolium,MTT)購自Sigma公司;結(jié)晶紫,ECL Plus 超敏發(fā)光液,RPMI1640培養(yǎng)基、考馬斯亮藍試劑購自北京索萊寶公司;轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine、TRIzol試劑盒購買于Invitrogen公司;RIPA 裂解液I、HOXA10一抗及β-actin購于一抗購于英國Abcam公司,山羊血清以及辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗購買于北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;BCA蛋白濃度測定試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。多功能酶標(biāo)儀(Thermo Fisher,美國);ABI 7500實時熒光定量PCR儀(Applied Biosystems,美國);高速離心機(Eppendorf,德國);冷凍冷藏兩用冰箱(Siemens,德國);轉(zhuǎn)膜儀以及電泳儀(北京六一儀器廠),倒置顯微鏡(Olympus,日本)。

    1.3 實時定量熒光PCR檢測mi-RNA-135a以及HOXA10的表達 采用TRIzol試劑重懸,反復(fù)吹打充分裂解細(xì)胞,之后根據(jù)試劑說明書提取總RNA并對RNA濃度及純度進行檢測。根據(jù)cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性30 s;95℃變性60 s;60℃ 退火30 s;72℃延伸50 s,共40個循環(huán),每組重復(fù)3次。其中miRNA-135a以U6作為每次擴增的內(nèi)參,HOXA10以β-actin作為內(nèi)參,采用ABI 7500對擴增結(jié)果進行分析。見表1。

    表1 引物序列

    1.4 實驗細(xì)胞培養(yǎng) 采用RPMI1640完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素混合抗生素溶液)在37℃、5%的CO2恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)乳腺癌細(xì)胞MCF-7。每3天對細(xì)胞進行傳代1次。取處于對數(shù)生長期且生長狀態(tài)良好的細(xì)胞消化。構(gòu)建miRNA-135a的慢病毒表達質(zhì)粒,取 3 μg miRNA-135a的慢病毒表達質(zhì)粒以及慢病毒表達空質(zhì)粒分別和 8 μg Packaging Mix加入RPMI1640培養(yǎng)基中,輕輕混勻后加入 20 μl的Endo FectinTM-Lenti 轉(zhuǎn)染試劑,室溫孵育 30 min。將混合物緩慢加入到MCF-乳腺癌細(xì)胞,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞用于后續(xù)實驗。

    1.5 CCK-8及平板克隆實驗檢測細(xì)胞增殖能力 將上述轉(zhuǎn)染后細(xì)胞以及未轉(zhuǎn)染細(xì)胞分別按每孔5×103個/孔鋪于12孔板,每組4個孔分成三組,分為空白對照組(未進行轉(zhuǎn)染)、空載體組(轉(zhuǎn)染空載體)、miRNA-135a組(轉(zhuǎn)染miRNA-135a),每周換液1次,培養(yǎng)2周后采用考馬斯亮藍染色,2周后用考馬斯亮藍染色,并在顯微鏡下計數(shù)菌落形成數(shù)量,每組取平均值。分組如上,每組6個復(fù)孔,將細(xì)胞密度調(diào)整為 5×104個/ml后接種于96孔板(每孔100 μl),培養(yǎng)24 h后,每孔加10 μl的CCK-8溶液,于37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中避光孵育2 h 后,將96孔板置于多功能酶標(biāo)儀中檢測 450 nm 處的吸光度值。

    1.6 劃痕實驗檢測細(xì)胞遷移能力 用10%胎牛血清的RPMI1640全培養(yǎng)基將上述細(xì)胞密度調(diào)整為 5×104個/ml后接種于12孔板,每孔加入1 ml細(xì)胞液,于37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育24 h,細(xì)胞基本融合后,使用200 μl 槍頭在細(xì)胞層上制造劃痕,加入PBS洗3次以去除細(xì)胞碎片,孵育24 h后采用倒置顯微鏡觀測細(xì)胞遷移狀況。

    1.7 Transwell實驗檢測細(xì)胞侵襲能力 實驗前12 h將細(xì)胞培養(yǎng)液換成無血清培養(yǎng)基,消化細(xì)胞后用滅菌PBS清洗并計數(shù),實驗分組如上,將細(xì)胞密度調(diào)整為2×105個/ml,吸取200 L細(xì)胞懸液接種于 Matirge 膠預(yù)先包被好的 Transwell小室上室中,下室加入600 L含10% FBS,1%雙抗的 RPMI1640 培養(yǎng)基,確保Transwell下室與上室間無氣泡,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,將小室取出,并用PBS洗滌2次,甲醇固定30 min,用棉簽將小室上層未遷移細(xì)胞輕輕擦掉,倒置晾干,用0.1%的結(jié)晶紫染色,倒置顯微鏡下取5個視野觀察并計數(shù)穿過基質(zhì)膠的細(xì)胞數(shù)。

    1.8 生物信息學(xué)預(yù)測及熒光素酶基因報告分析 使用生物信息學(xué)網(wǎng)站StarBase預(yù)測miRNA-135a可互補結(jié)合的基因。通過miRBase數(shù)據(jù)庫獲得人的miRNA135a和HOXA10基因序列,以HNEC細(xì)胞基因組DNA為模板,采用PCR擴增HOXA10的3’-非翻譯區(qū)序列,構(gòu)建至熒光素酶報告基因載體psi-CHECK中,記為野生型HOXA10-wild,同時構(gòu)建突變型重組質(zhì)粒HOXA10-mutant。將HEK293T細(xì)胞按30%左右密度鋪于24孔板,將miRNA-135a mimic、mimic control分別及上述質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染至HEK293T細(xì)胞,以空載質(zhì)粒作為對照。轉(zhuǎn)染后24 h,根據(jù)雙熒光素酶測定試劑盒說明書檢測熒光素酶活性。

    1.9 qRT-PCR檢測 收集上述細(xì)胞各5×106個,采用TRIzol試劑重懸,反復(fù)吹打充分裂解細(xì)胞,之后根據(jù)試劑說明書提取總RNA并對RNA濃度及純度進行檢測。根據(jù)cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,反應(yīng)條件:95℃ 預(yù)變性30 s;95℃變性60 s;60℃ 退火30 s;72℃延伸50 s,共40個循環(huán),每組重復(fù)3次。以β-actin作為每次擴增的內(nèi)參,采用ABI 7500對擴增結(jié)果進行分析。

    1.10 Western blot檢測 分別收集上述細(xì)胞加入RIPA裂解液300 L裂解10 min,1 3000 r/min離心3 min 取上清。BCA蛋白定量試劑盒測定含量,每組分別上樣20 g蛋白樣本加上樣緩沖液后煮沸以制備蛋白樣品,100℃水浴變性3 min,采用10% SDS-PAGE分離膠電泳,轉(zhuǎn)膜,室溫5%脫脂奶粉封閉2 h,加入稀釋后的HOXA10一抗(1∶500)以及β-actin一抗(1∶500),4℃搖床過夜孵育。次日復(fù)溫后用PBST將PVDF膜洗凈并加入適量稀釋好的HRP,37℃孵育2 h之后ECL顯影拍照,保存圖像,并用Image J 軟件分析條帶,以β-actin為內(nèi)參計算HOXA10蛋白的相對表達量。

    2 結(jié)果

    2.1 miRNA-135a以及HOXA10在乳腺癌組織中的表達 qRT-PCR結(jié)果顯示,NSCLC組織中miRNA-135a的表達水平顯著高于正常組織(P<0.05),HOXA蛋白的表達量明顯低于正常組織(P<0.05)。見表2。

    表2 miRNA-135a、HOXA10在不同組織中的相對表達量

    2.2 乳腺癌組織中miRNA-135a的表達情況與患者臨床病理特征之間的關(guān)系 取miRNA-135a在乳腺癌組織中相對表達量差異倍數(shù)的中位數(shù)作為截點,將乳腺癌患者分為兩組,大于中位數(shù)為高表達組(n=38)、小于中位數(shù)為低表達組(n=20),統(tǒng)計學(xué)分析結(jié)果顯示,miRNA-135a表達水平與患者腫瘤分化程度(P=0.008)、浸潤深度(P=0.009)、Her2狀態(tài)(P=0.008)、腫瘤分期(P=0.014)以及淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移(P=0.020)密切相關(guān),而與其他臨床特征包括年齡(P=0.864)及腫瘤大小(P=0.813)無相關(guān)性。見表3。

    表3 miRNA-135a表達與乳腺癌臨床病理參數(shù)間的關(guān)系 例(%)

    2.3 miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞增殖能力的影響 與空白對照組比較,miRNA-135a組細(xì)胞克隆數(shù)以及細(xì)胞增殖率均有顯著增加 (P<0.05),空載體組與空白對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表4。

    表4 miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞增殖能力的影響

    2.4 miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞遷移能力的影響 miRNA-135a組細(xì)胞遷移率相比于空白對照組,有顯著升高(P<0.05),空載體組與空白對照組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖1,表5。

    圖1 miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞遷移能力的影響;A 代表性劃痕實驗照片;B 劃痕實驗量化結(jié)果

    表5 miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞遷移能力的影響

    2.5 miRNA-135a對于細(xì)胞侵襲能力的影響 與空白對照組比較,miRNA-135a組細(xì)胞侵襲個數(shù)均有顯著增加(P<0.05),空載體組與空白對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖2,表6。

    圖2 miRNA-135a對于乳腺癌細(xì)胞侵襲能力的影響;A 代表性侵襲實驗照片;B 侵襲實驗量化結(jié)果

    表6 miRNA-135a對于細(xì)胞侵襲能力的影響 個,

    2.6 生物信息學(xué)預(yù)測 使用StarBase預(yù)測軟件分析,結(jié)果顯示miRNA-135a與HOXA10具有最高的匹配預(yù)測值。證明miRNA-135a與HOXA10存在靶向結(jié)合位點;雙熒光素酶報告基因結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-135a后,HOXA10-wild的熒光素酶活性被抑制(P<0.05),而HOXA10-mutant的熒光素酶活性無明顯變化,說明miR-135a與HOXA10具有靶向調(diào)控關(guān)系。見圖3,表7。

    圖3 生物信息學(xué)預(yù)測miRNA-135a與HOXA10的關(guān)系

    表7 miR-148a與 HOXA10雙熒光素酶報告基因檢測結(jié)果

    2.7 HOXA10的mRNA轉(zhuǎn)錄水平 與空白對照組比較,miRNA-135a組HOXA10的mRNA表達水平顯著降低(P<0.05),空載體組與空白對照組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表8。

    表8 HOXA10的mRNA表達水平

    2.8 HOXA10的蛋白表達水平 miRNA-135a組細(xì)胞HOXA10蛋白表達相比于空白對照組,顯著降低(P<0.05),空載體組與空白對照組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖4,表9。

    圖4 HOXA10蛋白表達水平;A 電泳轉(zhuǎn)膜后蛋白條帶圖片;B 蛋白表達水平量化結(jié)果

    表9 HOXA10的蛋白表達水平

    3 討論

    乳腺癌是一種最為常見也最致命的女性惡性腫瘤疾病,嚴(yán)重影響全球女性的健康,其病因復(fù)雜,涉及因素眾多[7,8]。乳腺癌的發(fā)病過程具有多基因性,對此國內(nèi)外做了廣泛研究,目前研究表明BRCA-1、p53和 PTEN等基因與乳腺癌的發(fā)生密切相關(guān),這些基因在一定程度上可用于預(yù)測乳腺癌[9,10]。乳腺癌中早期患者經(jīng)過治療有良好預(yù)后,對于晚期以及術(shù)后轉(zhuǎn)移而又復(fù)發(fā)的乳腺癌患者治療效果相當(dāng)差,5年生存率僅為20%左右[11,12]。造成乳腺癌患者死亡的主要原因癌細(xì)胞的增殖、遷移和侵襲轉(zhuǎn)移[13]。因此,深入研究乳腺癌遷移、侵襲轉(zhuǎn)移過程的相關(guān)調(diào)控機制對于提高患者的預(yù)后至關(guān)重要。

    miRNA是一種長度約為22 nt的非編碼RNA,其主要通過沉默特異性基因來發(fā)揮功能,某些miRNA可以通過降解mRNA從而抑制某些特定蛋白的合成,在轉(zhuǎn)錄水平調(diào)控蛋白的表達。miRNA參與到多種疾病的生理、病理過程,對疾病的發(fā)生發(fā)展有顯著影響,包括調(diào)節(jié)細(xì)胞的增殖以及凋亡等。近年來,miRNA在腫瘤發(fā)生以及發(fā)展進程中起到的作用備受關(guān)注,某些miRNA可直接參與腫瘤的形成[14]。腫瘤的進展涉及多種基因調(diào)控,過程復(fù)雜,miRNA的表達在其中發(fā)揮了重要作用,但關(guān)于miRNA發(fā)揮作用的分子機制尚不清楚。miRNA-135a作為 miRNA-135家族成員之一,被廣泛報道參與多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展,例如在非小細(xì)胞肺癌和結(jié)直腸癌中,miRNA-135a可促進其腫瘤細(xì)胞的增殖并抑制細(xì)胞凋亡,發(fā)揮癌基因的作用,通過對miRNA-135a表達的抑制可促進相關(guān)腫瘤的凋亡和抑制增殖[15,16]。此外,相關(guān)研究報道,乳腺癌組織中miRNA-135a呈高表達水平,暗示miRNA-135a可能與乳腺癌疾病的進程息息相關(guān)[17]。HOX基因編碼的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子對于胚胎形成、形態(tài)發(fā)生和器官發(fā)育至關(guān)重要[18]。HOX基因家族包括HOXA、HOXB、HOXC以及HOXD,其中HOXA10曾被多次報道在宮頸癌、卵巢癌、肺癌中表達異常,表明它們可能與腫瘤的發(fā)展有著密切關(guān)系[19,20]。此外,相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),HOXA10在人類乳腺組織細(xì)胞中表達,并且也有研究指出HOXA10可抑制癌基因的表達,由此可見,HOXA10具有一定的抑癌作用[21]。研究表明,miRNA 135a與HOXA10二者互補結(jié)構(gòu)高達 97%,證明HOXA10可能是miRNA 135a的靶基因[22]。因此,本研究通過構(gòu)建miRNA-135a過表達乳腺癌細(xì)胞系來體外探討miRNA 135a與HOXA10對于乳腺癌進程的影響并驗證二者之間的關(guān)系,相比于空白對照組,轉(zhuǎn)染miRNA-135a的MCF-7乳腺癌細(xì)胞的增殖、遷移以及侵襲能力顯著增強。此外,轉(zhuǎn)染miRNA-135a的MCF-7乳腺癌細(xì)胞的HXOA10的mRNA與蛋白的表達水平明顯降低;與此同時,空載體組乳腺癌細(xì)胞的HOXA10的表達與空白對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義。以上結(jié)果提示,miRNA-135促進乳腺癌細(xì)胞遷移、侵襲的作用可能是通過抑制HOXA10蛋白的表達實現(xiàn)的。

    綜上所述,本研究通過體外驗證了mi-RNA-135a通過抑制HOXA10蛋白的表達,進而促進乳腺癌細(xì)胞的增殖、遷移以及侵襲能力。然而,細(xì)胞的遷移和侵襲是一個非常復(fù)雜的過程,受眾多因素的調(diào)控。因此,這一過程的具體作用機制仍需進一步的研究。

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