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    補(bǔ)骨脂素誘導(dǎo)BMSCs成骨分化中的LncRNA表達(dá)譜分析

    2021-04-16 06:13:52楊鋒李文雄康武林董博袁普衛(wèi)
    中國骨質(zhì)疏松雜志 2021年3期
    關(guān)鍵詞:補(bǔ)骨脂素充質(zhì)成骨

    楊鋒 李文雄 康武林 董博 袁普衛(wèi)

    陜西中醫(yī)藥大學(xué) 陜西高校青年創(chuàng)新團(tuán)隊(duì),陜西中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院,陜西 咸陽 712046

    長鏈非編碼RNA(lncRNA)是近年來發(fā)現(xiàn)的重要的表觀遺傳學(xué)調(diào)控手段,可多層次調(diào)控基因表達(dá),影響干細(xì)胞的多能性和發(fā)育,從而調(diào)控干細(xì)胞的分化命運(yùn)。作者前期研究[1]表明一些補(bǔ)腎中藥能通過DNA甲基化、組蛋白去乙酰化等表觀遺傳學(xué)機(jī)制顯著促進(jìn)成骨相關(guān)基因及蛋白表達(dá)。其中,補(bǔ)腎中藥補(bǔ)骨脂的有效組分補(bǔ)骨脂素具有較強(qiáng)的成骨作用,可以誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化。已有研究[2]證實(shí)多種lncRNA參與了BMSCs 的成骨分化,lncRNA在調(diào)節(jié)BMSCs增殖與分化方面具有重要作用,與各種骨骼疾病有著密切的關(guān)系。但有關(guān)中藥介導(dǎo)lncRNA調(diào)控BMSCs成骨分化的作用機(jī)制報(bào)道較少。本研究通過lncRNA芯片、生物信息學(xué)、Real time RT-PCR等技術(shù)篩選出補(bǔ)骨脂素調(diào)控BMSCs成骨分化相關(guān)的lncRNA,為揭示lncRNA在補(bǔ)骨脂素調(diào)控BMSCs成骨分化中的表觀遺傳學(xué)機(jī)制奠定基礎(chǔ),從而進(jìn)一步促進(jìn)中醫(yī)“腎主骨”理論的轉(zhuǎn)化應(yīng)用。

    1 材料和方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    選取4~6周齡SD大鼠10只,清潔級(jí),雌雄各半,體重(90±10)g,由西安交通大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供(合格證號(hào):61001700000815)。飼養(yǎng)溫度20~25 ℃,相對(duì)濕度50 %,全價(jià)營養(yǎng)飼料喂養(yǎng)。

    1.2 主要試劑及儀器

    L-DMEM(Gibco,Invitrogen,USA)、胎牛血清(FBS,Gibco,Invitrogen,USA)、DMSO、地塞米松、β-甘油磷酸鈉、抗壞血酸、1-3-異丁基-1-甲基黃嘌呤、吲哚美辛、胰島素、MTT(Sigma USA)、補(bǔ)骨脂素標(biāo)準(zhǔn)品(Sigma)、Total RNA提取試劑盒(Promega)、RT-PCRKit(Invitrogen,USA)、mRNA引物(華大基因)、胰蛋白酶(Gibco USA)、CO2孵箱(Thermo,USA)、倒置相差顯微鏡(Olympus)、Bechman Epicx流式細(xì)胞儀、水平式電泳儀(Bio-Rad,Hercules,CA)、凝膠成像分析系統(tǒng)(Dolphin DOC,Wealtec,USA)、PCR 儀(Rotor-Gene 3000 Corbett Research,Australia)、酶聯(lián)免疫標(biāo)記儀(Bio-Rad 550)。

    1.3 BMSC體外培養(yǎng)與鑒定

    經(jīng)戊巴比妥麻醉后,無痛下頸椎脫臼法處死;將大鼠在75 %的乙醇中浸泡5 min,無菌條件下取出股骨和脛骨,切除干骺端軟骨顯露髓腔,用5 mL注射器吸取L-DMEM培養(yǎng)基反復(fù)沖洗髓腔。10 cm培養(yǎng)皿收集骨髓沖洗液,37 ℃、5 % CO2孵箱培養(yǎng)。每3 d換液1次。第4代培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行流式細(xì)胞儀檢測,結(jié)果顯示細(xì)胞均一性較好,其中CD34表達(dá)呈陰性,而CD90、CD29表達(dá)呈陽性,表達(dá)率分別為1.4 %、96.4 %和97.5 %,提示培養(yǎng)所得細(xì)胞主要是BMSCs,非造血性細(xì)胞。同時(shí),經(jīng)成骨、成脂誘導(dǎo)證實(shí)該細(xì)胞可以分化為成骨細(xì)胞和脂肪細(xì)胞。細(xì)胞計(jì)數(shù)并調(diào)整細(xì)胞濃度至5*104/mL,備用。

    圖1 BMSCs流式圖Fig.1 Flow cytometry chart of BMSCs

    1.4 分組與給藥

    細(xì)胞分3組,每組6孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

    對(duì)照組:L-DMEM,10 %FBS,1 %青霉素、鏈霉素。

    成骨誘導(dǎo)組:L-DMEM,20 %胎牛血清,1 %青霉素、鏈霉素,成骨誘導(dǎo)劑(10-8mol/L 地塞米松,10 mmol/L β-甘油磷酸鈉,0.05 mmol/L L-抗壞血酸)。

    補(bǔ)骨脂素組:MTT實(shí)驗(yàn)結(jié)果(見圖2)表明0.01、0.1、1、10 μmol/L均對(duì)體外培養(yǎng)的BMSCs具有促進(jìn)增殖作用,尤以10 μmol/L的作用最為明顯,但當(dāng)濃度達(dá)到100 μmol/L時(shí)出現(xiàn)毒性反應(yīng)。故后續(xù)實(shí)驗(yàn)選擇10 μmol/L濃度。

    圖2 MTT法藥物濃度篩選Fig.2 Drug concentration screen with MTT method

    1.5 堿性磷酸酶染色

    誘導(dǎo)第4天取一6孔板,PBS清洗2遍,加入固定液,10 min后加入底物,37 ℃水浴15 min,水洗;再加入蘇木精復(fù)染10 min,水洗,晾干后鏡下觀察。

    1.6 BMSCs及其誘導(dǎo)成骨分化中的lncRNA表達(dá)譜芯片

    收集P2代BMSCs,Trizol一步法提取總RNA,用分光光度計(jì)定量。取50~100 μg 總RNA用PEG方法分離lncRNA,用T4 RNA連接酶進(jìn)行熒光標(biāo)記。然后再用無水乙醇沉淀。將熒光標(biāo)記后小分子 RNA 溶于 16 μL雜交液中(15 %甲酰胺、0.2 % SDS、3*SSC、50*Denhardt),于 42 ℃與Agilent大鼠長鏈非編碼RNA芯片雜交過夜。雜交結(jié)束后,先在 42 ℃左右在含 0.2 % SDS、2*SSC 的液體中漂洗 4 min,然后在 0.2*SSC 液體中室溫漂洗 4 min,甩干。用Agilent DNA Microarray Scanner(G2505C)進(jìn)行掃描。用Agilent Feature Extraction軟件(v11.0.1.1) 生成芯片圖,并得到原始數(shù)據(jù)。

    1.7 芯片分析

    使用GeneSpring GX v12.1軟件(Agilent Technologies)對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行Quantile標(biāo)準(zhǔn)化和數(shù)據(jù)處理。原始數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化后經(jīng)過篩選高質(zhì)量探針(某探針在12個(gè)樣品中至少有3個(gè)被標(biāo)記為Present或Marginal)進(jìn)行進(jìn)一步分析。兩組樣品間具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的差異表達(dá)LncRNA或差異表達(dá)mRNA通過P-value/FDR篩選。篩選條件為:FDR控制在5 %以內(nèi),F(xiàn)old change不低于2倍。

    1.8 差異性lncRNAs的驗(yàn)證

    選取高表達(dá)的差異lncRNAs做PCR驗(yàn)證。以GAPDH作為看家基因,差異性lncRNA 作為目標(biāo)基因,與芯片結(jié)果進(jìn)行印證。

    1.9 GO分析和Pathway 分析

    運(yùn)用topGo進(jìn)行差異lncRNA的GO分析,運(yùn)用KEGG等生物軟件綜合分析長鏈非編碼RNA所參與的分子功能和相關(guān)信號(hào)通路。

    1.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    2 結(jié)果

    2.1 補(bǔ)骨脂素對(duì)BMSCs堿性磷酸酶的影響

    堿性磷酸酶染色顯示補(bǔ)骨脂素組堿性磷酸酶活性較成骨誘導(dǎo)組和對(duì)照組明顯增強(qiáng),見圖3。堿性磷酸酶陽性細(xì)胞胞漿呈現(xiàn)淺灰色、灰黑色顆粒沉著,補(bǔ)骨脂素組較成骨誘導(dǎo)組明顯。

    圖3 三組細(xì)胞堿性磷酸酶染色Fig.3 ALP staining in cells of the three groups

    2.2 lncRNA芯片

    2.2.1三組細(xì)胞LncRNA聚類分析(見圖4):用lncRNA芯片獲得大鼠BMSCs、成骨誘導(dǎo)及補(bǔ)骨脂素干預(yù)21 d后的lncRNAs表達(dá)譜。通過各組兩兩比較,發(fā)現(xiàn)差異倍數(shù)2倍及以上的共446個(gè)lncRNAs。在BMSCs成骨分化過程中,共篩選5個(gè)lncRNA顯著上調(diào),4個(gè)lncRNA顯著下調(diào)(見表1)。其中XR009483上調(diào)最顯著,而XR007366下調(diào)最顯著。

    表1 BMSCs成骨分化差異表達(dá)的部分lncRNATable 1 Differential expression of lncRNA in the osteogenic differentiation by BMSCs

    圖4 三組細(xì)胞LncRNA聚類分析圖Fig.4 Cluster analysis diagram of LncRNA in three groups

    2.2.2PCR驗(yàn)證:選取2個(gè)差異表達(dá)lncRNA,引物序列見表2,其中1個(gè)上調(diào) (XR009483)、1個(gè)下調(diào) (XR007366)。Real-time PCR結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較XR009483顯著上調(diào)(P<0.05);XR007366顯著下調(diào)(P<0.05),見表3。Real-time PCR驗(yàn)證結(jié)果與芯片結(jié)果相符。

    表2 lncRNA引物序列Table 2 Primer sequences of lncRNA

    表3 Real-time PCR檢測 BMSCs 成骨分化lncRNA 的表達(dá)水平Table 3 The expression level of lncRNA in the osteogenic differentiation by BMSCs detected with RT-PCR

    2.2.3GO分析和Pathway 分析:經(jīng)差異分析(fold change >2,P<0.001,Q<0.05)得到446個(gè)差異基因。將差異基因分別進(jìn)行GO(P<0.01,F(xiàn)DR<0.01)和pathway分析(P<0.05),富集得到351個(gè)GO term和110條pathway。表4為部分GO富集結(jié)果,表5為差異最顯著的15條pathway。多數(shù)為干細(xì)胞成骨分化、骨代謝相關(guān)的功能類群,如:間充質(zhì)干細(xì)胞分化、骨骼發(fā)育、膠原合成、骨礦化等。pathway分析多數(shù)為經(jīng)典信號(hào)通路。

    表4 部分富集度高的GO termTable 4 Highly enriched lncRNAs in GO

    表5 部分富集度高的pathwayTable 5 Highly enriched lncRNAs in the pathway analysis

    GO分析結(jié)果顯示,在生物學(xué)進(jìn)程化(biological process,BP)方面,BMSCs成骨分化過程中持續(xù)差異表達(dá)mRNA基因中有680個(gè)基因富集于生物學(xué)進(jìn)程,其中富集評(píng)分較高的是mesenchymal development、skeletal system development及cartilage development等生物學(xué)進(jìn)程,含有差異表達(dá)基因208個(gè)。在細(xì)胞組件(cellular component,CC)方面,富集較高的是extracellular space、extracellular matrix、collagen trimer等組件,含有差異表達(dá)基因114個(gè)。在分子功能(molecular function,MF)方面,BMSCs成骨分化過程中持續(xù)差異表達(dá)mRNA基因中有631個(gè)基因富集于分子功能,其中富集評(píng)分較高的collagen biosynthetic process、bone morphogenesis、ossification及bone remodeling 等分子功能,含有差異表達(dá)基因158個(gè)。

    KEGG分析結(jié)果顯示,BMSCs成骨分化過程中持續(xù)差異表達(dá)mRNA基因中有427個(gè)基因富集于生物學(xué)通路,并主要富集于15個(gè)生物學(xué)通路,其中富集評(píng)分較高的是TGF-beta、Wnt、NF-kappa B及Calcium等生物學(xué)通路,含有差異表達(dá)基因143個(gè)。

    續(xù)表5 部分富集度高的pathwayContinued table 5 Highly enriched lncRNAs in the pathway analysis

    3 討論

    骨創(chuàng)傷、骨壞死、骨質(zhì)疏松、骨腫瘤等引起的骨缺損修復(fù)一直是骨科領(lǐng)域的難題,隨著骨組織工程技術(shù)的發(fā)展,以生物材料與種子細(xì)胞的活體移植為代表的組織工程骨修復(fù)骨缺損成為一種全新的治療模式并日益得到廣泛關(guān)注。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)具有強(qiáng)大的自我增殖能力以及多向分化潛能,能分泌多種生物活性物質(zhì),包括細(xì)胞因子、生長因子等,具有改善微環(huán)境、抑制局部炎癥反應(yīng)等作用,是骨組織工程理想的種子細(xì)胞。但BMSCs的成骨活性受微環(huán)境和支架孔隙結(jié)構(gòu)等多因素影響,臨床應(yīng)用受到一定限制。所以,如何維持干細(xì)胞的成骨活性成為骨組織工程領(lǐng)域亟待解決的關(guān)鍵問題之一。中醫(yī)藥在“腎主骨”理論指導(dǎo)下應(yīng)用補(bǔ)腎藥物調(diào)節(jié)干細(xì)胞微環(huán)境誘導(dǎo)BMSCs的成骨分化,可以增強(qiáng)BMSCs作為種子細(xì)胞的成骨活性。補(bǔ)骨脂是常用的補(bǔ)腎壯骨類中藥,我們前期研究[3]發(fā)現(xiàn)補(bǔ)骨脂素明顯上調(diào)β-catenin、Runx2基因的表達(dá)水平,多項(xiàng)研究[4-5]表明補(bǔ)腎中藥補(bǔ)骨脂的有效組分補(bǔ)骨脂素具有較強(qiáng)的成骨作用,可以介導(dǎo)Wnt/β-catenin及BMP/Smad信號(hào)通路誘導(dǎo)BMSCs成骨分化,是理想的骨組織工程種子細(xì)胞成骨分化誘導(dǎo)劑。

    長鏈非編碼RNA在BMSCs成骨分化中的研究日漸增多。已有的研究表明lncRNA對(duì)干細(xì)胞的自我更新和多向分化起到重要的調(diào)控作用。如Takeda等[6]研究發(fā)現(xiàn)骨形態(tài)發(fā)生蛋白2(BMP2)在誘導(dǎo)間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化過程中,lncRNA-BORG表達(dá)顯著上調(diào),說明lncRNA-BORG參與間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化。Zhu等[7]發(fā)現(xiàn)lncRNA-ANCR與EZH2相互作用后下調(diào)Runx2的表達(dá),從而抑制間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化。Zuo等[8]研究鼠間充質(zhì)干細(xì)胞在早期成骨分化過程中l(wèi)ncRNA的表達(dá)譜特征,發(fā)現(xiàn)BMP2處理組與對(duì)照組相比,有116個(gè)lncRNA差異表達(dá)。孫翔等[9]利用Agilent lncRNA 芯片篩選出成骨分化前后差異表達(dá)的lncRNA,對(duì)lncRNA 鄰近蛋白編碼基因分析表明部分lncRNA(如lncRNA ENST0000058553 7.1 和lncRNA eHIT00001595) 可能在hMSCs 成骨分化過程中發(fā)揮重要作用。羅嘉全等[10]研究發(fā)現(xiàn) lncRNA -AK096529 和uc003ups 可能通過正向調(diào)控Smurf1,減少Runx2 的降解,從而促進(jìn)hMSCs 的成骨分化。Liao等[11]研究發(fā)現(xiàn)LncRNAH19 可以促進(jìn)間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化。證明了lncRNA在BMSCs成骨分化過程中發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)作用。但有關(guān)lnRNA在中藥調(diào)控BMSCs成骨分化中的機(jī)制研究仍然較少。已有的研究僅表明羅漢果苷V可通過促進(jìn)LncRNA TUG1表達(dá)刺激成骨細(xì)胞的增殖與分化[12]。鐘梅[13]通過分析lnc RNA在淫羊藿苷(Icariin,ICA)誘導(dǎo)人牙周膜干細(xì)胞(human periodontal ligament stem cells,hPDLSCs)成骨分化前后的差異性表達(dá),篩選出與成骨分化密切相關(guān)的lncRNA-p16340和lnc RNA-p21662,它們隨著成骨誘導(dǎo)時(shí)間的增加,其表達(dá)逐漸成上升趨勢,提示可能與成骨分化的調(diào)控密切相關(guān)。并無文獻(xiàn)報(bào)道lnRNA在中藥調(diào)控BMSCs成骨分化中的機(jī)制研究。

    本研究在前期針對(duì)補(bǔ)骨脂素誘導(dǎo)成骨過程中基因甲基化、組蛋白乙?;缺碛^遺傳機(jī)制研究的基礎(chǔ)上,通過芯片及生物信息學(xué)技術(shù)發(fā)現(xiàn)在補(bǔ)骨脂誘導(dǎo)BMSCs成骨過程中446個(gè)差異表達(dá)的lncRNA,通過聚類分析及GO分析和Pathway分析共發(fā)現(xiàn)10個(gè)成骨相關(guān)的模塊及其mRNA和15條信號(hào)通路。可以作為補(bǔ)骨脂素誘導(dǎo)BMSCs成骨的潛在靶點(diǎn)。其中,與成骨相關(guān)的差異表達(dá)lncRNA是后續(xù)研究的重點(diǎn)。結(jié)合上述GO分析和Pathway分析結(jié)果,與BMSCs成骨分化相關(guān)的TGF-beta、Wnt、NF-kappa B、Toll樣受體信號(hào)通路及鈣代謝、礦物質(zhì)吸收、凋亡、骨重塑等相關(guān)的信號(hào)分子。從中選擇相關(guān)的mRNA和信號(hào)通路作為lncRNA表觀調(diào)控機(jī)制的切入點(diǎn),進(jìn)一步闡明補(bǔ)骨脂素誘導(dǎo)BMSCs成骨分化的作用機(jī)制。

    芯片及生物學(xué)信息分析結(jié)果為尋找促進(jìn)BMSCs成骨分化的表觀遺傳調(diào)控途徑提供了基礎(chǔ),后續(xù)還需要設(shè)計(jì)過表達(dá)及沉默LncRNA持續(xù)觀察轉(zhuǎn)染后的間充質(zhì)干細(xì)胞增殖分化的情況,以此來鑒定該LncRNA是否能夠影響成骨細(xì)胞的分化。并在此基礎(chǔ)上明確中藥及其有效成分的作用靶點(diǎn),提高 BMSCs 成骨分化能力,為促成骨中藥的研發(fā)提供新的思路。

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