外泌體調(diào)控脂代謝的研究進展

劉亞楠

摘 要：外泌體可以誘導多種miRNAs調(diào)節(jié)脂代謝。通過分析外泌體和脂代謝之間的關系，發(fā)現(xiàn)外泌體參與脂質(zhì)的合成、脂質(zhì)運輸和脂質(zhì)降解。探討外泌體miRNAs調(diào)控脂代謝的相關機制，發(fā)現(xiàn)miR-122，miR-192，miR-27a-3p和miR-27b-3p是外泌體調(diào)控脂代謝紊亂的標記物，靶基因Ppara很可能是目前觀察到的顯性基因中的核心基因。這一發(fā)現(xiàn)，有望為更好地解決脂代謝障礙的病因提供幫助，為將其作為新的靶點來源或新的治療策略提供參考依據(jù)。

關鍵詞：外泌體;miRNAs;脂代謝

中圖分類號：G804.5 文獻標識碼：A 文章編號：1009-9840（2021）01-0060-04

Abstract： Exosomes can induce a variety of miRNAs to regulate lipid metabolism. This article reviewed the relationship between exosomes and lipid metabolism and found that exosomes are involved in lipid synthesis， lipid transport and lipid degradation. To explore the relevant mechanisms of exosomal miRNAs regulating lipid metabolism， it was found that miR-122， miR-192， miR-27a-3p and miR-27b-3p are markers of exosomal regulation of lipid metabolism disorders， and the target gene Ppara is likely to be the core gene among the dominant genes currently observed. This discovery is expected to provide help for the study of exosomal miRNAs to better solve the cause of lipodystrophy and to provide reference for using it as a new target source or new treatment strategy.

Key words： exosomes; miRNAs; lipid metabolism

外泌體可以被受體細胞捕獲，其中所含的miRNA可能會誘導轉(zhuǎn)錄組變化，從而成為一種新型的細胞間通訊形式。外泌體miRNA已顯示參與腫瘤進展，血管生成和轉(zhuǎn)移，然而，關于它們在代謝疾病中的作用研究還相對較少[1， 2]。肥胖是世界上最常見的代謝性疾病之一，預計到2050年將影響近三分之一的人口[3]。肥胖人口的不斷上升，脂代謝紊亂是主要的潛在原因之一。因此，調(diào)控脂代謝的穩(wěn)態(tài)就變得至關重要。最近研究證明，脂肪釋放的外泌體miRNA可以調(diào)節(jié)其他組織中的基因表達[4]。本研究通過綜述外泌體和脂代謝之間的關系，探討外泌體miRNAs調(diào)控脂代謝的相關機制，為外泌體miRNA的研究有望更好地解決脂代謝障礙的病因提供幫助，為將其作為新的靶點來源或新的治療策略提供參考依據(jù)。

1 外泌體概述

1.1 外泌體的形成

多泡體（MVBs）是晚期核內(nèi)體，攜帶許多“管腔核內(nèi)體囊泡”。一些MVBs注定會在溶酶體中降解，而另一些MVBs則與細胞膜結合并釋放胞內(nèi)囊泡到細胞外空間。在釋放的載體中，直徑30～120 nm的較小載體稱為外泌體;而直徑在120～1000 nm的較大載體稱為微泡[5]。外泌體的形成涉及轉(zhuǎn)運所需的內(nèi)體分選復合物（ESCRT），其識別泛素化的蛋白質(zhì)。除ESCRT外，其他與ESCRT無關的機制也可產(chǎn)生某些生化成分的外泌體[6]。

1.2 外泌體的組成

外泌體的組成具有獨特性和復雜性。最新的外泌體內(nèi)容數(shù)據(jù)庫，已在多種生物的外泌體中鑒定出4563個蛋白、194個脂質(zhì)、1639個mRNA和764 miRNA[7]。外泌體中最常見的蛋白質(zhì)是膜轉(zhuǎn)運蛋白、融合蛋白（GTP酶，膜聯(lián)蛋白和弗洛林）、熱休克蛋白（HSC70）、四跨膜蛋白（CD9， CD63， and CD81）、MVB生物發(fā)生蛋白（TSG101）以及和脂質(zhì)相關的蛋白質(zhì)和磷脂酶[8]。這幾種蛋白質(zhì)被認為是特定的外泌體標記，其中四跨膜蛋白CD63和CD81是最常用的。外泌體也富含脂質(zhì)，主要是膽固醇，鞘脂，磷脂和雙膦酸鹽。外泌體脂質(zhì)成分可以從樹突狀細胞和肥大細胞[9]、網(wǎng)織紅細胞（Proteomic analysis of secreted exosomes）和B淋巴細胞[10]等幾種細胞類型中分泌出來。 一些報道表明，外泌體的某些脂質(zhì)成分，例如磷脂酰絲氨酸[10]和前列腺素[11]，可能在外泌體功能中起重要作用。外泌體含有mrna和miRNAs的發(fā)現(xiàn)表明，外泌體可能是遺傳信息的載體。盡管外泌體中發(fā)現(xiàn)的大多數(shù)RNA是長度小于200個核苷酸的降解RNA片段，但仍可能存在一些全長RNA，并通過內(nèi)吞作用轉(zhuǎn)運至受體細胞，可能影響受體細胞中蛋白質(zhì)的生成。同時，已發(fā)現(xiàn)外泌體miRNA與某些疾病有關。例如，一些研究已經(jīng)注意到，循環(huán)外泌體的miRNA含量與其原發(fā)癌細胞的miRNA含量相似，這表明外泌體miRNA具有癌癥診斷的潛力[12]。此外，越來越多的研究報道，miRNAs可以從非侵入性獲得的體液（如唾液）中分離出來的外泌體中檢測到，顯示了作為新的生物標志物的外泌體miRNAs的潛在優(yōu)勢[13， 14]。

1.3 外泌體的功能

外泌體可以與受體細胞融合并釋放其內(nèi)容物，通過將蛋白質(zhì)、RNA和脂質(zhì)的細胞成分從一個細胞轉(zhuǎn)移到另一個細胞，外泌體在細胞間通信中發(fā)揮著重要作用[15]。大量文獻表明，外泌體表現(xiàn)出廣泛的功能，這取決于它們的細胞或組織來源，例如脂肪細胞產(chǎn)生的外泌體可誘導肝細胞轉(zhuǎn)化生長因子β通路失調(diào)，為研究非酒精性脂肪肝病的發(fā)病機理提供了思路[16， 17]。此外，由于外泌體的分子組成反映了其細胞或組織起源的生理或病理生理變化，因此外泌體具有作為疾病診斷的生物標志物的重要潛力。

2 外泌體參與脂代謝

外泌體與無核細胞一致，是具有蛋白質(zhì)和豐富脂質(zhì)組成的脂質(zhì)雙分子層的細胞器，增強其剛性和靈活性。鄰近的細胞或遠處的細胞能夠通過外泌體與受體細胞結合并釋放生物活性分子，如脂類、蛋白質(zhì)和核酸，來交換遺傳或代謝信息。最近的發(fā)現(xiàn)已經(jīng)證實外泌體作為生物載體直接轉(zhuǎn)移膽固醇、脂肪酸和二十烷類脂質(zhì)。一些酶（蛋白質(zhì)）也被包裹在外泌體中并參與脂質(zhì)代謝，特別是外泌體中的miRNAs受到了更多的關注。外泌體通過攜帶的miRNAs保護自己免受核糖核酸酶的傷害[18]。值得注意的是，外泌體對脂質(zhì)代謝具有顯著的作用，包括脂質(zhì)的合成、運輸和降解。外泌體介導的脂質(zhì)代謝紊亂導致動脈粥樣硬化、非酒精性脂肪肝、肥胖等疾病的發(fā)生和發(fā)展[19]。因此，脂質(zhì)及其修飾蛋白、酶和miRNA可以與外泌體進行串擾。

2.1 外泌體參與脂質(zhì)合成

眾所周知，脂肪酸和膽固醇的生物合成是一個巨大的能量消耗過程，需要大量的乙酰輔酶A、ATP和氧氣。肝臟脂肪酸合成紊亂可引起肝細胞疾病，如肝細胞損傷和炎癥。PPAR-γ是核超受體家族的成員，可以通過代謝相關基因的轉(zhuǎn)錄，嚴格調(diào)節(jié)肝臟中脂質(zhì)的攝入、儲存和代謝。 更重要的是，在沒有PPAR-γ的情況下，沒有單一核轉(zhuǎn)錄因子可以誘導脂肪細胞分化[20， 21]。外泌體中的一些循環(huán)miRNA，例如miR-155和miR-27，能夠通過結合靶基因的3'非翻譯區(qū)（3'URT）來抑制PPAR-γ表達[2]。其中miR-122屬于豐富的肝臟特異性miRNA。研究發(fā)現(xiàn)，上調(diào)基因的3個UTR，如脂肪酸合酶（FASN）和乙酰輔酶a羧化酶（ACC），在miR-122識別基序中高度富集，從而增加了肝臟中脂肪酸和膽固醇的生物合成[22]。值得注意的是，低氧脂肪細胞釋放的外泌體富含與新生脂肪形成有關的酶，例如ACC，葡萄糖-6-磷酸脫氫酶（G6PD）和FASN。與在常氧條件下產(chǎn)生的脂質(zhì)相比，低氧來源的外泌體促進受體3T3-L1細胞中脂質(zhì)的積累[23]。與此同時，糖基磷脂酰肌醇（GPI）錨定的蛋白從脂肪細胞來源的外泌體釋放到小脂肪細胞，增加酯化，降低三?；视椭舅?，促進脂滴的形成[24]。

2.2 外泌體參與脂質(zhì)運輸

最近研究表明，外泌體能夠?qū)⒅|(zhì)從母細胞直接轉(zhuǎn)運到受體細胞，例如膽固醇，脂肪酸，類花生酸等，這可能會引起炎癥，免疫或代謝改變[25]。Wang等人[26]也證實了在阿爾茨海默病的發(fā)展過程中，星形細胞來源的外泌體攜帶神經(jīng)酰胺，神經(jīng)酰胺的積累導致神經(jīng)細胞凋亡。然而，越來越多的報道提供了驚人和令人信服的證據(jù)，證明外泌體可以調(diào)節(jié)經(jīng)典脂質(zhì)轉(zhuǎn)運體的表達，如ABCA1， ABCG1， LDLR， CD36。逆向膽固醇轉(zhuǎn)運是目前唯一清除體內(nèi)膽固醇的機制，對維持體內(nèi)膽固醇穩(wěn)態(tài)有積極意義。ABCA1、ABCG1主要參與逆向膽固醇轉(zhuǎn)運。在巨噬細胞和血管平滑肌細胞（VSMCs）中特異性敲除ABCA1或ABCG1可促進LDLR /小鼠膽固醇外排不足引起的泡沫細胞形成。外泌體中的一些循環(huán)miRNA，如miR-30e和miR-92a，對ABCA1和ABCG1具有抑制作用，導致細胞內(nèi)膽固醇的積累，而內(nèi)臟脂肪組織可通過下調(diào)ABCG1表達，促進巨噬細胞源性泡沫細胞的形成[27]。幾項研究還表明，外泌體不是通過競爭性CD36配體來抑制巨噬細胞中的膽固醇吸收，而是通過大幅減少總巨噬細胞CD36來抑制膽固醇的吸收。 來源于血小板的外泌體可通過減少巨噬細胞的CD36依賴性脂質(zhì)負荷和抑制血小板血栓形成來抑制動脈粥樣硬化血栓形成過程。Srikanthan等人[28]還證實外泌體可以增加蛋白質(zhì)泛素化并增強CD36的蛋白酶體降解。此外，Ramakrishnan等人[29]發(fā)現(xiàn)外泌體通過激活CD36依賴的信號通路抑制內(nèi)皮細胞促血管生成反應，而CD36的缺失會削弱外泌體誘導的對微血管內(nèi)皮細胞遷移的抑制。

2.3 外泌體參與脂質(zhì)降解

眾所周知，白色脂肪組織主要負責儲存能量。白色脂肪組織的降解為細胞生長和增殖提供了足夠的能量，特別是在癌癥和癌癥相關惡病質(zhì)中。Lewis肺癌（LLC）來源的外泌體具有較高水平的磷激素敏感脂肪酶（P-HSL，激活脂解的標記物）。暴露于LLC外泌體的3T3-L1脂肪細胞表現(xiàn)出較高的甘油釋放水平和較低的脂滴水平[30]。Sagar等人[31]研究發(fā)現(xiàn)，胰腺癌（PC）來源的外泌體含有腎上腺髓磷脂，這是一種52種氨基酸肽，在脂肪細胞中廣泛表達，可誘導脂肪分解。肺癌外泌體可被人脂肪來源間充質(zhì)干細胞（hAD-MSCs）內(nèi)化，并顯著抑制hAD-MSC的脂肪形成。具體來說，肺癌外泌體參與了TGF調(diào)節(jié)因子信號通路對hADMSC脂肪形成的抑制。與此同時，Khalyfa等人[32]發(fā)現(xiàn)，來自阻塞性低通氣綜合征的外泌體導致脂肪細胞脂肪分解顯著增加。PPAR-α是核超受體家族的另一個成員，主要參與脂肪酸的降解。 血漿中的一些循環(huán)miRNA，例如miR-122，miR-192，miR-27a-3p和miR-27b-3p，也通過與3'URT結合而抑制PPAR-α的表達，進一步抑制肥胖相關患者機體組織白色脂肪中的脂質(zhì)降解。

3 外泌體可作為脂代謝紊亂的標志物

肥胖經(jīng)常與代謝疾病有關。Anna等人[3]研究顯示肥胖會改變小鼠血漿外泌體的miRNA譜，包括增加miR-122，miR-192，miR-27a-3p和miR-27b-3p。不僅如此，用從肥胖小鼠中分離出的外泌體來注射到瘦小鼠體內(nèi)（模擬處理小鼠）會引起葡萄糖耐量下降和胰島素抵抗，并導致向心性肥胖和肝脂肪變性。在處理模擬處理小鼠白色脂肪組織中還發(fā)現(xiàn)候選靶基因Ppara的表達降低，但在肝臟組織中表達沒有降低，這種情況可能會導致循環(huán)中游離脂肪酸水平升高以及提高患高甘油三酯血癥的風險。其他研究表明，外泌體還可以在器官之間轉(zhuǎn)移成熟的miRNA，從而改變接收細胞功能[4]并影響全身胰島素敏感性[2]，同樣發(fā)現(xiàn)肥胖會改變小鼠外泌體miRNA的表達，外泌體miR-192和miR-122的增加，這與Anna等人研究結果一致，表明這兩種miRNA作為參與胰島素抵抗的循環(huán)因子發(fā)揮了重要作用。 目前研究無法確定提供肥胖外泌體miRNA的主要來源，但許多研究表明指向了附睪脂肪。

Costet等人[33]用與Anna等人相同的方法模擬處理小鼠，試驗后發(fā)現(xiàn)模擬處理小鼠保持苗條，但表現(xiàn)出明顯的附睪脂肪庫的擴大，曲線下的附睪脂肪百分比與血糖之間有很強的相關性，這表明，這些模擬處理小鼠的葡萄糖耐量與中央型肥胖有關，而與總體重無關。并證明血漿中miR-122和miR-192的豐度與人的腰圍和內(nèi)臟脂肪量以及TG/HDL比的增加有關。還發(fā)現(xiàn)，抑制miR-122會降低小鼠的膽固醇和肝脂肪酸合成，而miR-27a-3p和miR-27b-3p參與脂肪功能的調(diào)節(jié)，提高miR-27表達會增加甘油三酯的表達水平。模擬處理小鼠在附睪脂肪中顯示成脂基因和脂肪酸氧化通路表達下降，與巨噬細胞浸潤和組織擴大有關，也與血漿游離脂肪酸水平升高，肝DNL基因和脂質(zhì)的積累相關，以及Ppara基因表達降低，可能導致?lián)p害脂肪酸氧化過程，增加游離脂肪酸向外周的遞送。Shah等人[34]為了進一步證明附睪脂肪和Ppara基因的作用，Shah等人使用兩種替代策略，均旨在降低血漿游離脂肪酸水平。同時給予模擬處理小鼠脂解抑制劑阿西莫司，然后通過強制將其儲存在附睪脂肪中來減少游離脂肪酸釋放到血液中去，或PPARα激動劑非諾貝特增加氧化作用[35]，試驗后發(fā)現(xiàn)，兩種策略均可恢復胰島素敏感性并顯著改善小鼠的葡萄糖耐量。因此，非諾貝特被證明可以改善高甘油三酯血癥患者的胰島素敏感性[36]。PPARα的激活足以恢復模擬處理小鼠的病理表型，即使因子水平降低了。這些結果數(shù)據(jù)，同樣支持Anna等人的觀點，表明外泌體中的miRNAs可以作為脂代謝紊亂的標記物，其中所調(diào)控的靶基因Ppara，很可能是目前觀察到的顯性基因中的核心基因。

4 小結與展望

外泌體對脂代謝的調(diào)節(jié)是一個極其復雜過程，是調(diào)節(jié)脂代謝的重要途徑之一，miR-122，miR-192，miR-27a-3p和miR-27b-3p是外泌體調(diào)控脂代謝紊亂的標記物，靶基因Ppara很可能是目前觀察到的顯性基因中的核心基因，對脂代謝通路的信息整合及調(diào)節(jié)信號的輸出途徑起到不可忽視的作用。外泌體可以誘導機體miRNAs的表達水平，同時也是改善血脂異常、降低體重和影響機體脂代謝能力的有效手段。但是，外泌體調(diào)控脂代謝的具體機制尚不明了，還處于起步階段，需要進一步研究外泌體調(diào)控脂代謝的機制，探索外泌體調(diào)控脂代謝的變化及原因，從而為解決超重與肥胖問題提供理論依據(jù)。

參考文獻：

[1]Fong M. Y.， Zhou W.， Liu L.， etc. Breast-cancer-secreted mir-122 reprograms glucose metabolism in premetastatic niche to promote metastasis [J]. Nat Cell Biol， 2015， 17（2）： 183-94.

[2]Ying W.， Riopel M.， Bandyopadhyay G.， etc. Adipose tissue macrophage-derived exosomal mirnas can modulate in？vivo and in？vitro insulin sensitivity [J]. Cell， 2017， 171（2）： 372-384.e12.

[3]Casta？o C.， Kalko S.， Novials A.， etc. Obesity-associated exosomal mirnas modulate glucose and lipid metabolism in mice [J]. Proc Natl Acad Sci U S A， 2018， 115（48）： 12158-12163.

[4]Thomou T.， Mori M. A.， Dreyfuss J. M.， etc. Adipose-derived circulating mirnas regulate gene expression in other tissues [J]. Nature， 2017， 542（7642）： 450-455.

[5]Sun D.， Zhuang X.， Zhang S.， etc. Exosomes are endogenous nanoparticles that can deliver biological information between cells [J]. Adv Drug Deliv Rev， 2013， 65（3）： 342-7.

[6]S E. L. Andaloussi， M？ger I.， Breakefield X. O.， etc. Extracellular vesicles： Biology and emerging therapeutic opportunities [J]. Nat Rev Drug Discov， 2013， 12（5）： 347-57.

[7]Mathivanan S.， Fahner C. J.， Reid G. E.， etc. Exocarta 2012： Database of exosomal proteins， rna and lipids [J]. Nucleic Acids Res， 2012， 40（Database issue）： D1241-4.

[8]Subra C.， Grand D.， Laulagnier K.， etc. Exosomes account for vesicle-mediated transcellular transport of activatable phospholipases and prostaglandins [J]. J Lipid Res， 2010， 51（8）： 2105-20.

[9]Laulagnier K.， Motta C.， Hamdi S.， etc. Mast cell- and dendritic cell-derived exosomes display a specific lipid composition and an unusual membrane organization [J]. Biochem J， 2004， 380（Pt 1）： 161-71.

[10]Wubbolts R.， Leckie R. S.， Veenhuizen P. T.， etc. Proteomic and biochemical analyses of human b cell-derived exosomes. Potential implications for their function and multivesicular body formation [J]. J Biol Chem， 2003， 278（13）： 10963-72.

[11]Xiang X.， Poliakov A.， Liu C.， etc. Induction of myeloid-derived suppressor cells by tumor exosomes [J]. Int J Cancer， 2009， 124（11）： 2621-33.

[12]Feng D. Q.， Huang B.， Li J.， etc. Selective mirna expression profile in chronic myeloid leukemia k562 cell-derived exosomes [J]. Asian Pac J Cancer Prev， 2013， 14（12）： 7501-8.

[13]Michael A.， Bajracharya S. D.， Yuen P. S.， etc. Exosomes from human saliva as a source of microrna biomarkers [J]. Oral Dis， 2010， 16（1）： 34-8.

[14]Lin J.， Li J.， Huang B.， etc. Exosomes： Novel biomarkers for clinical diagnosis [J]. ScientificWorldJournal， 2015， 2015： 657086.

[15]Lakkaraju A.， Rodriguez-Boulan E. Itinerant exosomes： Emerging roles in cell and tissue polarity [J]. Trends Cell Biol， 2008， 18（5）： 199-209.

[16]黃瑩瑩， 劉蕾紅， 吳金節(jié)， etc. 循環(huán)外泌體在酮病奶牛肝臟脂代謝紊亂中的生理作用 [J]. 動物營養(yǎng)學報， 2019， （7）.

[17]Lema D. A.， Burlingham W. J. Role of exosomes in tumour and transplant immune regulation [J]. Scand J Immunol， 2019， 90（5）： e12807.

[18]Bala S.， Petrasek J.， Mundkur S.， etc. Circulating micrornas in exosomes indicate hepatocyte injury and inflammation in alcoholic， drug-induced， and inflammatory liver diseases [J]. Hepatology， 2012， 56（5）： 1946-57.

[19]Wang W.， Zhu N.， Yan T.， etc. The crosstalk： Exosomes and lipid metabolism [J]. Cell Commun Signal， 2020， 18（1）： 119.

[20]Rosen E. D.， Spiegelman B. M. Ppargamma ： A nuclear regulator of metabolism， differentiation， and cell growth [J]. J Biol Chem， 2001， 276（41）： 37731-4.

[21]Lee J. E.， Ge K. Transcriptional and epigenetic regulation of pparγ expression during adipogenesis [J]. Cell Biosci， 2014， 4： 29.

[22]Yu Y.， Du H.， Wei S.， etc. Adipocyte-derived exosomal mir-27a induces insulin resistance in skeletal muscle through repression of pparγ [J]. Theranostics， 2018， 8（8）： 2171-2188.

[23]Sano S.， Izumi Y.， Yamaguchi T.， etc. Lipid synthesis is promoted by hypoxic adipocyte-derived exosomes in 3t3-l1 cells [J]. Biochem Biophys Res Commun， 2014， 445（2）： 327-33.

[24]Müller G.， Schneider M.， Biemer-Daub G.， etc. Microvesicles released from rat adipocytes and harboring glycosylphosphatidylinositol-anchored proteins transfer rna stimulating lipid synthesis [J]. Cell Signal， 2011， 23（7）： 1207-23.

[25]Garcia N. A.， González-King H.， Grueso E.， etc. Circulating exosomes deliver free fatty acids from the bloodstream to cardiac cells： Possible role of cd36 [J]. PLoS One， 2019， 14（5）： e0217546.

[26]Wang G.， Dinkins M.， He Q.， etc. Astrocytes secrete exosomes enriched with proapoptotic ceramide and prostate apoptosis response 4 （par-4）： Potential mechanism of apoptosis induction in alzheimer disease （ad） [J]. J Biol Chem， 2012， 287（25）： 21384-95.

[27]Wang Z.， Zhang J.， Zhang S.， etc. Mir？30e and mir？92a are related to atherosclerosis by targeting abca1 [J]. Mol Med Rep， 2019， 19（4）： 3298-3304.

[28]Srikanthan S.， Li W.， Silverstein R. L.， etc. Exosome poly-ubiquitin inhibits platelet activation， downregulates cd36 and inhibits pro-atherothombotic cellular functions [J]. J Thromb Haemost， 2014， 12（11）： 1906-17.

[29]Ramakrishnan D. P.， Hajj-Ali R. A.， Chen Y.， etc. Extracellular vesicles activate a cd36-dependent signaling pathway to inhibit microvascular endothelial cell migration and tube formation [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol， 2016， 36（3）： 534-44.

[30]Hu W.， Ru Z.， Xiao W.， etc. Adipose tissue browning in cancer-associated cachexia can be attenuated by inhibition of exosome generation [J]. Biochem Biophys Res Commun， 2018， 506（1）： 122-129.

[31]Sagar G.， Sah R. P.， Javeed N.， etc. Pathogenesis of pancreatic cancer exosome-induced lipolysis in adipose tissue [J]. Gut， 2016， 65（7）： 1165-74.

[32]Khalyfa A.， Gozal D.， Masa J. F.， etc. Sleep-disordered breathing， circulating exosomes， and insulin sensitivity in adipocytes [J]. Int J Obes （Lond）， 2018， 42（6）： 1127-1139.

[33]Costet P.， Legendre C.， Moré J.， etc. Peroxisome proliferator-activated receptor alpha-isoform deficiency leads to progressive dyslipidemia with sexually dimorphic obesity and steatosis [J]. J Biol Chem， 1998， 273（45）： 29577-85.

[34]Shah R.， Murthy V.， Pacold M.， etc. Extracellular rnas are associated with insulin resistance and metabolic phenotypes [J]. Diabetes Care， 2017， 40（4）： 546-553.

[35]Blachère J. C.， Pérusse F.， Bukowiecki L. J. Lowering plasma free fatty acids with acipimox mimics the antidiabetic effects of the beta 3-adrenergic agonist cl-316243 in obese zucker diabetic fatty rats [J]. Metabolism， 2001， 50（8）： 945-51.

[36]Koh K. K.， Han S. H.， Quon M. J.， etc. Beneficial effects of fenofibrate to improve endothelial dysfunction and raise adiponectin levels in patients with primary hypertriglyceridemia [J]. Diabetes Care， 2005， 28（6）： 1419-24.