李凱 宮一瑋 李興康 張艷婷 Maurycy Daroch 金鵬
不同光質(zhì)對(duì)嗜熱藍(lán)細(xì)菌Synechococcus sp.PCC6715生長(zhǎng)的影響
李凱 宮一瑋 李興康 張艷婷 Maurycy Daroch 金鵬?
北京大學(xué)深圳研究生院環(huán)境與能源學(xué)院, 深圳 518055; ?通信作者, E-mail: jinpeng@pkusz.edu.cn
使用光合有效光量子數(shù)密度(PAR)均為 100μmol/(m2?s)的白光(對(duì)照)、紅光和藍(lán)光, 對(duì)對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的嗜熱藍(lán)細(xì)菌進(jìn)行培養(yǎng), 以期探明不同光質(zhì)對(duì)不表達(dá)藻紅素的藍(lán)細(xì)菌光適應(yīng)生長(zhǎng)的影響。結(jié)果表明, 在不同光質(zhì)培養(yǎng)對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的過程中, 與白光相比, 干重在藍(lán)光下明顯增加, 紅光下明顯減少; 紅、藍(lán)光質(zhì)對(duì)光合色素合成產(chǎn)生影響的開始時(shí)間和持續(xù)時(shí)間有所不同; 最大光能轉(zhuǎn)化效率(v/m)在藍(lán)光下明顯提高, 紅光下明顯降低, 培養(yǎng) 6 天后, 紅、藍(lán)光條件下的v/m均趨于穩(wěn)定。藍(lán)光有利于的生長(zhǎng), 紅光不利于的生長(zhǎng); 同時(shí),在紅、藍(lán)光質(zhì)中均產(chǎn)生適應(yīng)性生長(zhǎng), 藻藍(lán)素的減少使在紅光中發(fā)生適應(yīng)性生長(zhǎng), 藍(lán)光中發(fā)生適應(yīng)性生長(zhǎng)是由于藻藍(lán)素的增加。
藍(lán)細(xì)菌; 嗜熱藍(lán)細(xì)菌; 光質(zhì); 光適應(yīng)生長(zhǎng); 藻藍(lán)素
嗜熱藍(lán)細(xì)菌分離于 45oC 以上的溫泉地帶, 是2000 余種藍(lán)細(xì)菌的重要組成菌種[1–2]。藍(lán)細(xì)菌不僅對(duì)水體生態(tài)系統(tǒng)的維持有重要作用, 而且遺傳學(xué)研究發(fā)現(xiàn), 嗜熱藍(lán)細(xì)菌的存在是地球上能夠出現(xiàn)其他生命體的重要原因[3–6]。藍(lán)細(xì)菌是地球上重要的初級(jí)生產(chǎn)力, 環(huán)境中的光質(zhì)和光強(qiáng)對(duì)其合成有機(jī)物的能力具有決定性的影響[4,7–9]。
近年來, 對(duì)嗜熱藍(lán)細(xì)菌的研究受到極大的關(guān)注。Liang 等[10]得到嗜熱藍(lán)細(xì)菌捕光色素蛋白質(zhì)在不同溫度和 pH 條件下的穩(wěn)定結(jié)構(gòu)。Eberly 等[11]通過測(cè)定嗜熱藍(lán)細(xì)菌在不同 CO2濃度中的生長(zhǎng)狀況, 評(píng)估嗜熱藍(lán)細(xì)菌作為工業(yè)排放 CO2的主要治理方式的可能性。Nikolova 等[12]和 Pedersen 等[13]研究嗜熱藍(lán)細(xì)菌對(duì)溫度產(chǎn)生適應(yīng)時(shí), 承擔(dān)光合作用相關(guān)組分的變化情況。MacColl[14]及 Wiltbank 等[4]等從光適應(yīng)性生長(zhǎng)的觀點(diǎn)出發(fā), 總結(jié)在不同光質(zhì)條件下表達(dá)藻紅素的藍(lán)細(xì)菌生長(zhǎng)發(fā)生變化的原因。這些研究為嗜熱藍(lán)細(xì)菌對(duì)環(huán)境要素的響應(yīng)提供了依據(jù), 但對(duì)藍(lán)細(xì)菌光適應(yīng)性生長(zhǎng)的機(jī)理研究仍有不足之處, 相關(guān)研究以表達(dá)藻紅素的藍(lán)細(xì)菌為主, 對(duì)不表達(dá)藻紅素的藍(lán)細(xì)菌研究明顯不足[15]。由于藍(lán)細(xì)菌光適應(yīng)性生長(zhǎng)研究的局限, 可能會(huì)限制藍(lán)細(xì)菌光適應(yīng)生長(zhǎng)研究成果的工程應(yīng)用范圍。
為補(bǔ)充對(duì)不表達(dá)藻紅素的藍(lán)細(xì)菌光適應(yīng)生長(zhǎng)的研究, 本文以 Liang 等[10]通過系統(tǒng)發(fā)育樹方法鑒定出的不表達(dá)藻紅素的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的嗜熱藍(lán)細(xì)菌為對(duì)象, 研究其在不同光質(zhì)培養(yǎng)過程中的生長(zhǎng)變化情況。
購(gòu)自德克薩斯大學(xué)奧斯汀分校的藻類培養(yǎng)中心, 由北京大學(xué)深圳研究生院環(huán)境與能源學(xué)院環(huán)境生物能源實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng), 具體步驟如下: 將購(gòu)買的藻種按照 1:5 (藻種:BG11 培養(yǎng)基)進(jìn)行稀釋, 在有效光子數(shù)密度(PAR)為 100μmol/(m2·s)的白色 LED 光源(Ra=70)、光暗比=16 h : 8 h、45oC 恒溫?fù)u床、150 r/min 的條件下進(jìn)行培養(yǎng), 待其生長(zhǎng)至穩(wěn)定期后, 將此時(shí)的藻種在相同的培養(yǎng)條件下進(jìn)行第二次稀釋培養(yǎng), 待其生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)初期時(shí), 取第二次生長(zhǎng)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)初期的藻種, 將其稀釋到OD730nm=0.09 左右, 在如圖 1 所示特征的藍(lán)光(454nm, Ra=68)、紅光(654nm, Ra=70)和白光(6500K, 400~700nm)中連續(xù)培養(yǎng) 7 天, 每種光質(zhì)條件下設(shè)置 3 組獨(dú)立的平行實(shí)驗(yàn)組。
配制 BG-11 培養(yǎng)基[1], 使用 HCl 或 NaOH 將培養(yǎng)基的 pH 調(diào)整至 7.1 左右, 121oC 滅菌 30 分鐘, 室溫冷卻后, 4oC冷藏備用。
通過測(cè)定藻種的干重確定生長(zhǎng)狀況。取 10mL藻液, 在 4000r/min 的條件下離心 10 分鐘, 棄上清液, 置于凍干機(jī)中 24 小時(shí), 計(jì)算凍干處理前后的質(zhì)量差值, 即為藻種的干重。
取 1mL 菌株培養(yǎng)懸浮液, 在 4oC 條件下以15000離心 7 分鐘, 小心移去上清液, 加入 1mL預(yù)冷至 4oC 的甲醇, 混勻樣品后, 使用鋁箔紙覆蓋, 在 4oC 冰箱孵育 20 分鐘以提取來自細(xì)胞的色素, 孵育完成后, 以 15000, 4oC 的超速離心機(jī)中離心 7 分鐘, 以甲醇作為空白校準(zhǔn)分光光度計(jì), 分別測(cè)定上清液與空白對(duì)照在 470, 665 和 720nm 處的吸光度。根據(jù)下式計(jì)算色素含量:
Chl.a(μg/mL)=12.9447(OD665nm?OD720nm) , (1)
取 10mL 菌液, 以 4000r/min 的轉(zhuǎn)速在 4oC 離心 15 分鐘, 去上清液, 加入磷酸鹽緩沖液(0.5mol/ L, pH=7.0)混合均勻, 用超聲細(xì)胞破碎機(jī)破碎細(xì)胞3 分鐘, 超聲細(xì)胞破碎機(jī)的設(shè)置為輸出 9 秒, 占空比65%。破碎完成后, 以 15000的速度在 4oC 超速離心機(jī)中離心 7 分鐘, 上層清液即為含藻膽素的提取液。整個(gè)過程盡量在黑暗環(huán)境中進(jìn)行, 在冰上操作以避免高溫的影響。通過分光光度計(jì)測(cè)量 615, 652和 562nm 處的吸光度, 根據(jù)文獻(xiàn)[16]中公式計(jì)算藻膽蛋白含量。
使用 1mL 移液槍, 準(zhǔn)確地移取 2mL 藻液, 在黑暗處?kù)o置 1 小時(shí), 然后使用葉綠素?zé)晒鈨x, 在 10μmol/(m2?s)的 620nm 波段的紅光條件下測(cè)得光合系統(tǒng)的初始熒光0, 在 210μmol/ (m2?s)的 620nm波段的紅光條件下測(cè)得光合系統(tǒng)的最大熒光m, 最大光能利用效率的測(cè)定公式為
v=m?0, (3)
y=v/m。 (4)
本研究使用 Excel 2010 計(jì)算實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù), 使用Graphpad Prism5.0 軟件進(jìn)行單因素方差分析(One-way ANOVA)。
在不同光質(zhì)的培養(yǎng)過程中, 對(duì)照組與實(shí)驗(yàn)組中的干重均呈增加的趨勢(shì)(圖 2)。與對(duì)照組白光相比,的干重在藍(lán)光下較高, 紅光下較低。相對(duì)于白光, 藍(lán)光對(duì)的生長(zhǎng)有顯著的促進(jìn)作用, 紅光不利于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的生長(zhǎng)。
的光合色素含量在不同光質(zhì)中均呈現(xiàn)上升趨勢(shì), 最大光能轉(zhuǎn)化效率均呈現(xiàn)先增加、后趨于穩(wěn)定的趨勢(shì)。葉綠素 a 含量的變化如圖3(a)所示, 與白光對(duì)照組相比,在藍(lán)光培養(yǎng)過程中葉綠素 a 含量明顯升高, 紅光條件下生長(zhǎng)至第 5 天時(shí)葉綠素 a 含量才開始顯著降低; 與紅光相比, 藍(lán)光對(duì)葉綠素 a 的合成產(chǎn)生影響的時(shí)間更早, 且持續(xù)時(shí)間更長(zhǎng)。圖 3(b)顯示在不同光質(zhì)培養(yǎng)下藻膽素含量的變化, 與白光相比,藻膽素的含量在藍(lán)光下始終較高, 在紅光下的含量從第 6 天開始出現(xiàn)明顯的減少; 與紅光相比, 藍(lán)光對(duì)藻膽素的合成產(chǎn)生影響的時(shí)間更早, 且持續(xù)時(shí)間更長(zhǎng)。不同光質(zhì)條件下的v/m變化如圖 3(c)所示, 與白光對(duì)照組相比,的最大光能轉(zhuǎn)化效率在藍(lán)光培養(yǎng)下明顯升高, 在紅光條件下明顯下降; 但是, 在不同光質(zhì)培養(yǎng)過程中,的最大光能轉(zhuǎn)化效率都表現(xiàn)出先增加、后歸于平穩(wěn)的變化趨勢(shì)。圖 3(d)顯示不同光質(zhì)中生長(zhǎng)過程中類胡蘿卜素含量的變化, 與白光相比,類胡蘿卜素含量在藍(lán)光條件下培養(yǎng)至第 7 天開始明顯地增多, 而在紅光條件下從第 3 天即開始明顯地降低; 與紅光相比, 藍(lán)光對(duì)類胡蘿卜素的合成產(chǎn)生影響的時(shí)間較晚。
對(duì)進(jìn)行全光譜掃描, 確定其光合色素的組成種類, 結(jié)果如圖 4(a)所示。的光合色素由葉綠素 a (吸收峰 435 和 675nm)、類胡蘿卜素(吸收峰 490nm)以及捕光色素?藻藍(lán)素(吸收峰 625nm)和別藻藍(lán)素(吸收峰 650nm)共同構(gòu)成。對(duì)不同光質(zhì)藻藍(lán)素和別藻藍(lán)素相對(duì)含量的測(cè)定結(jié)果見圖 4(b)。在白光、紅光和藍(lán)光中,別藻藍(lán)素和藻藍(lán)素的相對(duì)含量均降低; 與白光相比, 在藍(lán)光條件的整個(gè)培養(yǎng)過程中別藻藍(lán)素和藻藍(lán)素的相對(duì)含量均顯著降低, 在紅光培養(yǎng)的第2, 4, 6 和 7 天明顯升高;中別藻藍(lán)素和藻藍(lán)素的相對(duì)含量在白光、藍(lán)光與紅光條件下培養(yǎng) 6 天后都趨于穩(wěn)定。對(duì)在不同光質(zhì)中別藻藍(lán)素含量的測(cè)定結(jié)果見圖 4(c)。與白光對(duì)照組相比,的別藻藍(lán)素含量在紅光和藍(lán)光中無顯著變化。在不同光質(zhì)中藻藍(lán)素含量的測(cè)定結(jié)果見圖 4(d)。與白光相比,藻藍(lán)素的含量在藍(lán)光條件下始終較高, 在紅光條件下培養(yǎng)至第 6 天明顯減少; 與紅光相比, 藍(lán)光對(duì)藻藍(lán)素的合成產(chǎn)生影響的時(shí)間更早, 且持續(xù)時(shí)間更長(zhǎng)。
植物及藻類的干重反映其凈光合作用的大小[17], 植物及藻類通過由光合反應(yīng)中心色素與捕光色素共同組成的光合色素進(jìn)行光合作用, 捕光色素將捕獲到的 95%以上的光能傳遞至光合反應(yīng)中心[18], 光合反應(yīng)中心在利用光能時(shí)產(chǎn)生葉綠素?zé)晒猬F(xiàn)象, 由光合反應(yīng)中心葉綠素?zé)晒猬F(xiàn)象獲得的最大光能利用效率直接反映植物及藻類光合作用過程中發(fā)生的變化[19]。
本實(shí)驗(yàn)中,的干重在藍(lán)光處理組中始終高于紅光處理組, 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與劉洪艷等[20]和韓軍軍[21]關(guān)于不同光質(zhì)對(duì)藍(lán)、紅藻生長(zhǎng)影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相似。葉綠素 a、類胡蘿卜素和藻膽素共同構(gòu)成嗜熱藍(lán)細(xì)菌的光合色素[3]。雖然在培養(yǎng)過程中, 藍(lán)光條件下的光合色素總量高于紅光條件下, 但由于紅、藍(lán)光對(duì)不同色素開始產(chǎn)生影響的時(shí)間或影響持續(xù)的時(shí)間不同, 所以在紅、藍(lán)光質(zhì)中的干重差異不僅僅取決于光合色素的總量差異。另外, 最大光能利用效率代表光合系統(tǒng)對(duì)光能的利用效率, 由于藍(lán)光條件下的最大光能利用效率始終大于紅光培養(yǎng)條件下, 所以最大光能利用效率也是導(dǎo)致在不同光質(zhì)中差異生長(zhǎng)的重要原因。
藍(lán)細(xì)菌通過調(diào)整自身捕光色素的相對(duì)含量來實(shí)現(xiàn)在不同波長(zhǎng)光照下的生長(zhǎng), 這一現(xiàn)象稱為光適應(yīng)生長(zhǎng)[22]。最大光能利用效率不僅反映藻類在所處環(huán)境中的生長(zhǎng)狀態(tài), 同時(shí), 如果在培養(yǎng)環(huán)境中藻類出現(xiàn)最大光能利用效率發(fā)生變化但最終趨于穩(wěn)定的現(xiàn)象, 則說明藻類在該培養(yǎng)環(huán)境中發(fā)生了適應(yīng)性生長(zhǎng)[23–24]。對(duì)含藻紅素的藍(lán)藻是否發(fā)生光適應(yīng)性的判定依據(jù)是, 藻紅素與藻藍(lán)素的相對(duì)含量是否發(fā)生變化[25], 但對(duì)不含藻紅素的藍(lán)細(xì)菌發(fā)生光適應(yīng)性的機(jī)制研究尚無定論。對(duì)于含有藻紅素的藍(lán)藻和紅藻, 光能的捕獲和傳遞具有嚴(yán)格的方向性, 首先由藻紅素捕獲光能, 并將捕獲的 95%以上的能量傳遞至藻藍(lán)素, 藻藍(lán)素再將從藻紅素獲取的 95%的能量傳遞至別藻藍(lán)素, 別藻藍(lán)素再將從藻藍(lán)素獲取的95%的能量傳遞到光合反應(yīng)中心[26]。雖然屬于不含藻紅素的藍(lán)細(xì)菌, 但由于藍(lán)細(xì)菌中光能捕獲結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性, 所以能量捕獲和傳遞的方向性在中依然適用。本實(shí)驗(yàn)中的最大光能利用效率在藍(lán)、紅光條件下培養(yǎng)至第 6 天時(shí)結(jié)束波動(dòng)變化, 并趨于穩(wěn)定, 表明在藍(lán)、紅光中產(chǎn)生光適應(yīng)性生長(zhǎng)。作為的捕光色素,的別藻藍(lán)素與藻藍(lán)素相對(duì)含量經(jīng)藍(lán)、紅光處理 6 天后基本上不再發(fā)生變化, 說明對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期通過調(diào)整別藻藍(lán)素與藻藍(lán)素的含量以適應(yīng)不同的光質(zhì)。通過對(duì)在藍(lán)、紅光中別藻藍(lán)素與藻藍(lán)素的含量分析, 我們發(fā)現(xiàn)別藻藍(lán)素的含量在藍(lán)、紅光中基本上一致;藻藍(lán)素的含量在藍(lán)光中明顯高于紅光中。
綜上所述, 如圖 5 所示,通過調(diào)整捕光色素的含量在藍(lán)、紅光中產(chǎn)生適應(yīng)性生長(zhǎng), 藻藍(lán)素含量的改變是引發(fā)在藍(lán)、紅光下產(chǎn)生光適應(yīng)性生長(zhǎng)的主要原因。
本實(shí)驗(yàn)在不同光質(zhì)條件下處理, 得到其在不同光質(zhì)中生長(zhǎng)的差異, 探究不含藻紅素的藍(lán)細(xì)菌產(chǎn)生光適應(yīng)生長(zhǎng)的原因。為了進(jìn)一步明晰不表達(dá)藻紅素的嗜熱藍(lán)細(xì)菌在藍(lán)、紅光質(zhì)中產(chǎn)生適應(yīng)性生長(zhǎng)時(shí)基因表達(dá)的變化, 下一步還需以基因工程為手段, 運(yùn)用基因組學(xué)進(jìn)行深入的研究。
[1] 張艷婷, 江東, 唐杰, 等. 兩株采自惠州的細(xì)鞘絲藻亞科()嗜熱藍(lán)細(xì)菌的分離鑒定及細(xì)胞組分分析. 微生物學(xué)通報(bào), 2019, 46(3): 481–493
[2] Hutchins P R, Miller S R. Genomics of variation in nitrogen fixation activity in a population of the ther-mophilic cyanobacterium. Isme Journal, 2017, 11(1): 78–86
[3] 洪劍明. 藍(lán)藻的光合器與光合色素. 生物學(xué)通報(bào), 1997, 32(9): 6–8
[4] Wiltbank L B, Kehoe D M. Diverse light responses of cyanobacteria mediated by phytochrome superfamily photoreceptors. Nature Reviews Microbiology, 2019, 17(1): 37–50
[5] Averina S, Velichko N, Senatskaya E, et al. Far-red light photoadaptations in aquatic cyanobacteria. Hy-drobiologia, 2018, 813(1): 1–17
[6] Ranawat P, Rawat S. Radiation resistance in thermo-philes: mechanisms and applications. World Journal of Microbiology & Biotechnology, 2017, 33(6): 112
[7] Hoppe C J M, Klaas C, Ossebaar S, et al. Controls of primary production in two phytoplankton blooms in the Antarctic Circumpolar Current. Deep Sea Research Part II Topical Studies in Oceanography, 2017, 138: 63–73
[8] Cullen J J. On models of growth and photosynthesis in phytoplankton. Deep Sea Research Part A: Oceano-graphic Research Papers, 1990, 37(4): 667–683
[9] 鄭潔, 胡美君, 郭延平. 光質(zhì)對(duì)植物光合作用的調(diào)控及其機(jī)理. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào), 2008, 19(7): 1619–1624
[10] Liang Y, Kaczmarek M B, Kasprzak A K, et al. Thermosynechococcaceae as a source of thermostable C-phycocyanins: properties and molecular insights. Algal Research, 2018, 35: 223–235
[11] Eberly J O, Ely R L. Photosynthetic accumulation of carbon storage compounds under CO? enrichment by the thermophilic cyanobacterium. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, 2012, 39(6): 843–850
[12] Nikolova D, Weber D, Scholz M, et al. Temperature-induced remodeling of the photosynthetic machinery tunes photosynthesis in a thermophyllic alga. Plant Physiology, 2017, 174(1): 35–46
[13] Pedersen D, Miller S R. Photosynthetic temperature adaptation during niche diversification of the ther-mophilic cyanobacteriumA/B clade. ISME Journal, 2016, 11(4): 1053–1057
[14] MacColl R. Cyanobacterial phycobilisomes. Journal of Structural Biology, 1998, 124(2/3): 311–334
[15] Edwards M R, Gantt E. Phycobilisomes of the thermophilic blue-green alga. Journal of Cell Biology, 1971, 50(3): 896–900
[16] Bennett A, Bogorad L. Complementary chromatic adaptation in a filamentous blue-green alga. Journal of Cell Biology, 1973, 58(2): 419–435
[17] 王燕, 張亞見, 何茂盛, 等. 光質(zhì)對(duì)植物形態(tài)結(jié)構(gòu)和生長(zhǎng)的影響. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2018, 46(19): 22–25
[18] 王肖肖. 藻類光合作用捕光色素蛋白復(fù)合物—藻膽體的結(jié)構(gòu)、性質(zhì)及功能研究[D]. 曲阜: 曲阜師范大學(xué), 2018
[19] 韓麗麗. 淺水水體浮游藻類光合活性研究[D]. 武漢: 華中科技大學(xué), 2013
[20] 劉洪艷, 潘伶俐, 施定基. 不同光質(zhì)對(duì)紫球藻生長(zhǎng)及藻膽素含量的影響. 天津科技大學(xué)學(xué)報(bào), 2007, 22(1): 26–28
[21] 韓軍軍. 光質(zhì)對(duì)壇紫菜生長(zhǎng)和生理學(xué)特性的影響及壇紫菜絲狀體藍(lán)光效應(yīng)的轉(zhuǎn)錄組分析[D]. 上海: 上海海洋大學(xué), 2017
[22] Kehoe D M. Chromatic adaptation and the evolution of light color sensing in cyanobacteria. Proc Natl Acad Sci USA, 2010, 107(20): 9029–9030
[23] Zhao Longsheng, Li Kang, Wang Qianmin, et al. Nitrogen Starvation Impacts the Photosynthetic Per-formance ofas Revealed by Chlorophyll a Fluorescence. Sci Rep, 2017, 7(1): 8542
[24] 韓軍軍, 鐘晨輝, 何培民, 等. 不同光質(zhì) LED 光源對(duì)壇紫菜自由絲狀體生長(zhǎng)和生理特性的影響. 水產(chǎn)學(xué)報(bào), 2017, 41(2): 230–239
[25] Palenik B. Chromatic adaptation in marinestrains. Applied & Environmental Microbio-logy, 2001, 67(2): 991–994
[26] 王肖肖, 秦松, 楊革, 等. 藻膽體的結(jié)構(gòu)與能量傳遞功能. 海洋科學(xué), 2017, 41(12): 139–145
Effects of Different Light Qualities on the Growth of Thermophilic Cyanobacteriasp.
LI Kai, GONG Yiwei, LI Xingkang, ZHANG Yanting, Maurycy Daroch, JIN Peng?
School of Environment and Energy, Peking University Shenzhen Graduate School, Shenzhen 518055; ? Corresponding author, E-mail: jinpeng@pkusz.edu.cn
In order to understand the lighting quality effects on the light-adaptive growth of cyanobacteria which does not express phycoerythrin, the thermophilic cyanobacteriain logarithmic growth phase was cultured by using white light (control), red light, and blue light with photosynthetically effective photon quantum density (PAR) of 100 μmol/(m2?s). Compared with the growth characteristics ofunder white light conditions, the changes in the measured and analyzed values ofunder other light qualities were as follows:the dry weight ofsignificantly increased under blue light and significantly reduced under red light; the red and blue light have different effects on the start time and duration of the photosynthetic pigment synthesis of; the maximum light energy conversion efficiency (v/m) ofsignificantly increased under blue light and decreased significantly under red light; after 6 days of culture, thev/mofunder red and blue light conditions tends to stable. In conclusion, the blue spectrum lighting promotes the growth of, while red light inhibits the growth of. At the same time,produces light-adaptive growth under both red and blue light, the reduction of phycocyanin content caused light-adaptive growth ofin red light, and the light-adaptive growth ofin blue light was due to the increase of phycocyanin content.
cyanobacteria; thermophilic cyanobacteria; light quality; light-adaptive growth; phycocyanin
10.13209/j.0479-8023.2020.036
深圳市協(xié)同創(chuàng)新計(jì)劃國(guó)際合作研究項(xiàng)目(GJHZ20180928162210431)資助
2019–04–28;
2020–04–07