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    泊洛沙姆407修飾吉非替尼脂質(zhì)體的制備及抗腫瘤活性研究

    2019-10-09 02:33:56王洪濤劉照容王敬磊王方張彥卓
    藥學研究 2019年9期
    關(guān)鍵詞:吉非脂質(zhì)體生理鹽水

    王洪濤,劉照容,王敬磊,王方,張彥卓

    (徐州醫(yī)科大學,江蘇省新藥研究與臨床藥學重點實驗室,江蘇 徐州 221004)

    吉非替尼(gefitinib,GFB)是一種選擇性作用于表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)的酪氨酸激酶抑制劑[1-2],可以競爭性地結(jié)合EGFR胞內(nèi)ATP位點,阻斷信號傳導,抑制腫瘤細胞的繁殖、轉(zhuǎn)移,發(fā)揮靶向作用[3]。GFB臨床上作為抗晚期非小細胞肺癌治療的藥物,市售制劑為片劑,由于首過效應、P-糖蛋白外排作用,存在生物利用度低、個體差異大、胃腸道不良反應隨劑量增加而加重等問題[4-5]。

    脂質(zhì)體是一類將藥物包封于類脂質(zhì)雙分子層內(nèi)形成的微型囊泡體,主要成分為磷脂、膽固醇,具有無毒、無免疫原性、生物相容性好的特點。難溶性藥物包埋于脂質(zhì)雙分子層中,有利于提高難溶藥物的溶解度[6-7]。脂質(zhì)體通過吸附、融合、內(nèi)吞等方式被細胞攝取,實現(xiàn)藥物的胞內(nèi)遞送[8-9]。但僅由磷脂、膽固醇形成的脂質(zhì)體穩(wěn)定性差、包封率較低,限制了體內(nèi)外運用。泊洛沙姆407是由聚氧乙烯和聚氧丙烯組成的嵌段聚合物,中間為疏水聚氧丙烯嵌段,兩側(cè)為親水性聚氧乙烯嵌段,具有良好的兩親性,可與生物膜材料良好相容[10],同時對P-糖蛋白介導的藥物外排作用有抑制效果[11]。泊洛沙姆407與磷脂形成脂質(zhì)體時,可增加脂質(zhì)體的強度,同時作為表面活性劑可提高藥物的溶解度[12]。本課題制備泊洛沙姆407修飾的吉非替尼脂質(zhì)體(GFB-PML),通過泊洛沙姆407的修飾增加藥物溶解性、包封率,發(fā)揮脂質(zhì)體的被動靶向與吉非替尼的分子靶向的雙重作用,通過細胞毒性實驗與小鼠體內(nèi)腫瘤生長實驗考察GFB-PML的腫瘤抑制效果,為吉非替尼的新劑型研究提供參考。

    1 材料和方法

    1.1 儀器與材料

    1.1.1 儀器 RE-2000B旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠);SH2-CA循環(huán)水式多用真空泵(鞏義市予華儀器有限公司);SB-5200超聲波清洗機(寧波新芝生物科技公司);MS104S/01分析天平(梅特勒-托利多公司);Nicomp 380/ZLS納米粒度及Zeta電位測定儀(美國PSS公司);FD-1C-50冷凍干燥機(北京博醫(yī)實驗儀器公司);CKX31顯微鏡(日本奧林巴斯公司);SHZ-82A數(shù)顯恒溫振蕩器(金壇區(qū)白塔新寶儀器廠);H1850臺式高速離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司);1260高效液相色譜儀(美國安捷倫公司)。

    1.1.2 試藥 大豆卵磷脂(上海阿拉丁試劑公司,批號:G1813018);膽固醇(上海阿拉丁試劑公司,批號:G12600);泊洛沙姆407(巴斯夫股份公司,批號:WPW1603B);吉非替尼原料藥(南京亞東啟天藥業(yè)有限公司,批號:180420);吉非替尼對照品(南京亞東啟天藥業(yè)有限公司,批號:180309);透析袋(上海源葉生物科技公司,MCWO 8000-14000);超濾管(北京拜爾迪生物技術(shù)有限公司,MWCO 10K);噻唑藍(MTT)細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒(凱基生物技術(shù)股份有限公司,批號:20180413);香豆素-6(北京百靈威科技有限公司,批號:LPC0R06);赫斯特熒光染料33342(上海阿拉丁試劑公司,批號:11318001);羅丹明標記鬼筆環(huán)肽(翎盛科技有限公司,批號:T03598);乙腈、乙酸銨為色譜純;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

    1.1.3 細胞及動物 人肺癌細胞A549、小鼠肝癌細胞H22購于中國科學院上海細胞庫;昆明小鼠,雌性,體重(20±5)g,購于徐州醫(yī)科大學動物實驗中心,生產(chǎn)許可證號:SYXK(蘇)2010-0011,常規(guī)飼養(yǎng)1周后進行造模。

    1.2 方法

    1.2.1 GFB-PML的制備 采用薄膜分散-水化法制備GFB-PML。即稱取磷脂20 mg、膽固醇6 mg、泊洛沙姆407 10 mg、GFB 5 mg,置于100 mL茄形瓶中,加入30 mL無水乙醇超聲溶解。50 ℃下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去乙醇,待形成薄膜后,加入5 mL pH 7.4磷酸鹽緩沖液,超聲水化,得到脂質(zhì)體混懸液。將脂質(zhì)體混懸液過0.45 μm微孔濾膜,即得GFB-PML溶液??瞻撞绰迳衬沸揎椫|(zhì)體(PML)處方中不含GFB,其他制備過程保持一致。將GFB-PML溶液轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,-20 ℃預凍12 h后,于冷凍干燥機內(nèi)凍干24 h,得GFB-PML凍干粉。

    1.2.2 GFB-PML內(nèi)藥物的測定

    1.2.2.1 色譜條件 色譜柱為Agilent TC-C18柱(4.66 mm×250 mm,5 μm),流動相為乙腈-乙酸銨水溶液(51∶49,乙酸銨濃度為0.01 mol·L-1),流速為1 mL·min-1,柱溫35 ℃,紫外檢測波長247 nm,進樣量20 μL。

    1.2.2.2 GFB標準曲線的制備 精密稱取GFB對照品10.00 mg,溶于100 mL乙腈中,配成100 μg·mL-1的GFB儲備液。分別吸取上述溶液適量,乙腈稀釋至終濃度為0.05、0.1、0.5、1、5、10、50 μg·mL-1的溶液。高效液相色譜儀進樣,記錄峰面積。

    1.2.2.3 精密度試驗 分別配制0.1、1、50 μg·mL-1的GFB溶液,于同一天內(nèi)重復測定5次,計算日內(nèi)相對標準偏差。重復測定3 d,計算日間相對標準偏差。

    1.2.2.4 回收率試驗 取9份1 mL制備的PML溶液,加至25 mL容量瓶內(nèi),分別加入適量“1.2.2.2”項下GFB儲備液,每組3份,乙腈定容至刻度線,制成低、中、高(0.2、2.0、10.0 μg·mL-1)濃度的供試品溶液。進液相測定峰面積,與同濃度GFB標準溶液測定峰面積進行比較,計算回收率。

    1.2.3 GFB-PML的質(zhì)量研究

    1.2.3.1 粒徑和Zeta電位的測定 吸取適量制備的GFB-PML溶液,用去離子水稀釋數(shù)倍并超聲分散,用Nicomp380/ZLS型納米粒度與Zeta電位測定儀測定粒徑、PDI值、Zeta電位,重復測定3次。

    1.2.3.2 GFB-PML載藥量與包封率的測定 稱取10 mg GFB-PML凍干粉,記錄質(zhì)量m1。加5 mL乙腈超聲20 min破乳,轉(zhuǎn)移至25 mL容量瓶并定容,過0.45 μm微孔濾膜后按“1.2.2.1”項下色譜條件進行液相檢測,記錄峰面積,對應濃度為C0。按以下公式計算載藥量:載藥量(%)=(25C0×10-3/m1)×100%。吸取500 μL GFB-PML溶液,加至超濾管中,9 500 rpm離心30 min,吸取濾過液,按“1.2.2.1”項下色譜條件進行液相檢測,記錄峰面積,對應游離濃度C1。同時吸取500 μL GFB-PML溶液加至25 mL容量瓶中,加乙腈定容,進樣并計算總濃度C2。按以下計算包封率:包封率(%)=(1-C1/50C2)×100%。

    1.2.3.3 形態(tài)學觀察 將制備的GFB-PML混懸液用適量純化水稀釋,滴于銅網(wǎng)上,自然晾干,醋酸鈾負染后,進行透射電鏡拍攝,觀察形態(tài)。

    1.2.3.4 體外釋放度實驗 稱取10 mg GFB-PML凍干粉,記錄質(zhì)量m2,5 mL釋放介質(zhì)(PBS7.4磷酸鹽緩沖液,含30%甲醇,V/V)溶解,轉(zhuǎn)移至透析袋中,置于含95 mL釋放介質(zhì)的燒杯內(nèi),于37 ℃,100 rpm恒溫振蕩器內(nèi)振搖,平行3組。同時稱取GFB原料藥,甲醇溶解后轉(zhuǎn)移至透析袋內(nèi),相同釋放介質(zhì)進行釋放。平行3組。分別于第0.5、1、2、4、6、8、12、24、36、48 h從各燒杯內(nèi)取樣5 mL,同時補充相同體積的釋放介質(zhì),樣品經(jīng)0.45 μm微孔濾膜濾過后,按“1.2.2.1”項下色譜條件進行濃度檢測,根據(jù)下式計算累積釋放率:累積釋放率(%)=(100×Cn+5×∑n-1Cn-1)×10-3/m2×100%,Cn為第n次取樣樣品濃度。以時間為橫坐標,GFB的累積釋放率為縱坐標,繪制釋放曲線。

    1.2.4 細胞實驗

    1.2.4.1 細胞培養(yǎng) 將A549細胞接種于含完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清,1%雙抗的DMEM培養(yǎng)基)的培養(yǎng)瓶內(nèi),于37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),待瓶內(nèi)細胞數(shù)量達80%~90%時可進行傳代。棄去細胞瓶內(nèi)培養(yǎng)基,生理鹽水清洗后加入1.5 mL胰酶,消化3 min后加入等體積完全培養(yǎng)基終止消化。將細胞轉(zhuǎn)移至離心管內(nèi),800 rpm離心3 min,棄去上清,加入完全培養(yǎng)基吹打均勻后吸取部分轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶內(nèi),放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2.4.2 細胞攝取 按“1.2.1”項下GFB-PML制備方法,將GFB替換成香豆素-6溶液0.2 mL(0.5 mg·mL-1)制備載香豆素-6的熒光脂質(zhì)體(C6-PML)。取對數(shù)生長期的A549細胞,消化離心后,棄去上層液體,加入新DMEM培養(yǎng)基,計數(shù),以每孔2×104個細胞接種于24孔板,培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h。吸去培養(yǎng)基后,按C6-PML終濃度為50、200、500、1 000 μg·mL-1將C6-PML培養(yǎng)基溶液加入孔內(nèi),培養(yǎng)4 h;吸取500 μg·mL-1C6-PML培養(yǎng)基溶液加入孔內(nèi),培養(yǎng)0.5、2、4 h,攝取結(jié)束后棄去培養(yǎng)基;生理鹽水清洗3次后,加入500 μL 4%多聚甲醛溶液固定10 min;生理鹽水清洗3次,再加入200 μL赫斯特染料,孵育10 min,繼續(xù)清洗3次。于倒置熒光顯微鏡觀察攝取情況并拍照。

    1.2.4.3 細胞毒性評價 取對數(shù)生長期A549細胞置于96孔板內(nèi),密度為每孔1×104個。24 h后棄掉原有培養(yǎng)基,更換為無血清DMEM培養(yǎng)基。按照培養(yǎng)基內(nèi)PML終濃度為20、50、100、200、300、400、500、1 000 μg·mL-1加入配置好的PML溶液,每個濃度6個復孔,每孔100 μL。加樣后培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)培養(yǎng)24 h;24 h后每孔加入50 μL MTT溶液(2 mg·mL-1),繼續(xù)放回培養(yǎng)箱孵育4 h;4 h后吸出上清液,每孔加入150 μL二甲基亞砜,置于平板搖床100 rpm搖動10 min,酶標儀492 nm波長處檢測吸光度值(OD值)。按以下公式計算:細胞存活率(%)=(OD實驗-OD陰性對照)/(OD陽性對照-OD陰性對照)×100%,陽性對照組為不加藥物的含細胞組,陰性對照組為僅加二甲基亞砜的無細胞組。同時,按照培養(yǎng)基內(nèi)GFB終濃度為0.01、0.05、0.1、0.5、1、5、20 μg·mL-1加入GFB原料藥和GFB-PML,培養(yǎng)24 h后檢測吸光度值并計算細胞存活率。

    1.2.5 體內(nèi)抗腫瘤研究 取2只雌性昆明小鼠腹腔接種小鼠肝癌細胞(H22細胞)懸液,約7 d形成腹水模型。抽取腹水,于離心管內(nèi)加等量生理鹽水,1 000 rpm離心3 min,棄上清后,生理鹽水分散并計數(shù)。細胞濃度調(diào)整到每毫升2×107個細胞后,于小鼠腹部右下側(cè)皮下接種0.2 mL細胞懸液,待瘤體生長到約800 mm3時開始給藥。32只雌性荷瘤小鼠隨機分為4組,每組8只,分為生理鹽水組,PML組,GFB組,GFB-PML組,尾靜脈給藥,GFB劑量為6 mg·kg-1,每兩天給藥1次共給藥4次,給藥后1 d游標卡尺測量瘤徑(長徑D,短徑d,mm)。按以下公式計算瘤體積V(mm3)=0.5×D×d2,繪制腫瘤體積曲線。給藥結(jié)束后解剖瘤塊,稱重,并按公式計算抑瘤率:抑瘤率=(生理鹽水組平均瘤重-給藥組平均瘤重)/生理鹽水組平均瘤重×100%。

    2 結(jié)果

    2.1 GFB-PML的質(zhì)量研究

    2.1.1 GFB標準曲線、精密度、回收率結(jié)果 GFB的線性回歸方程為A=72.575C+3.961 5,r=1,表明在0.05~50 μg·mL-1范圍內(nèi)峰面積與濃度線性良好。低、中、高3個濃度下,測得日內(nèi)精密度RSD分別為0.45%、0.27%、0.19%(n=5);日間精密度RSD分別為0.81%、0.84%、1.08%(n=3),均小于3%,表明該液相方法適合本品測定。低、中、高濃度GFB回收率為101.49%、98.12%、100.88%(n=3),RSD均小于3%,表明回收率符合要求。

    GFB-PML粒徑分布結(jié)果及電位測定如下:平均粒徑為(190.00 ± 8.77)nm,PDI值為0.31±0.04,Zeta電位為(-15.07±6.11)mV。載藥量測定結(jié)果為5.09%±0.48%,包封率測定結(jié)果為99.53%±0.34%。

    制備的GFB-PML透射電鏡結(jié)果如圖1。透射電鏡觀察可見GFB-PML呈球狀或類球狀,粒徑集中在50~100 nm。

    圖1 GFB-PML的透射電鏡圖

    2.2 體外模擬釋放結(jié)果 以釋放時間為橫坐標,GFB累積釋放百分率為縱坐標,繪制釋放曲線,結(jié)果見圖2。其中A代表GFB原料藥組累積釋放率,B代表GFB-PML組中GFB累積釋放率。GFB原料藥組2 h時GFB累計釋放率為59.83%,8 h累積釋放率接近100%,釋放迅速。GFB-PML組2 h時GFB累計釋放率為21.62%,釋放相對于原料藥組較為緩慢,這是由于GFB-PML有較高的包封率,藥物GFB無法迅速透過雙分子層進入釋放介質(zhì)中;GFB-PML組24 h時GFB累計釋放率接近80%,至48 h仍持續(xù)釋放,緩釋效果明顯。

    圖2 GFB(A)與GFB-PML(B)體外模擬釋放曲線(n=3)注:與GFB-PML組比較,*P<0.05,**P<0.01

    2.3 GFB-PML對A549細胞攝取與毒性影響 攝取結(jié)果見圖3~4。綠色熒光為細胞攝取C6-PML后顯示的熒光,藍色熒光為細胞核染色后顯示的熒光,紅色熒光為細胞骨架染色后顯示的熒光。綠色熒光越強,表明細胞攝取越多C6-PML。熒光在細胞質(zhì)內(nèi)均有分布,圖3顯示,在相同濃度下(500 μg·mL-1),隨攝取時間增加,綠色熒光強度增強,表明細胞攝取更多C6-PML,細胞對脂質(zhì)體的攝取呈時間依賴性;圖4顯示,在相同攝取時間下(4 h),C6-PML濃度越高,綠色熒光強度增強,攝取呈濃度依賴性。由此可以看出,細胞對GFB-PML的攝取呈現(xiàn)出時間和濃度雙重依賴性。

    圖3 不同攝取時間下C6-PML在A549細胞內(nèi)攝取情況(比例尺為20 μm)

    圖4 不同濃度C6-PML在A549細胞內(nèi)攝取情況(比例尺為20 μm)

    細胞毒性結(jié)果如圖5~6。圖5為PML作用于A549細胞毒性結(jié)果,PML在高達1 000 μg·mL-1時對細胞幾乎無毒性,表明PML安全性好,細胞順應性高。圖6為GFB和GFB-PML對A549細胞毒性結(jié)果,在低濃度下(0.01 ~ 1 μg·mL-1),GFB原料藥組對細胞毒性不明顯,說明游離原料藥入胞能力較差,在低濃度時對細胞抑制作用較??;GFB-PML組顯示出較高的細胞殺傷性,細胞存活率顯著低于GFB組(P<0.05),表明GFB-PML能攜帶GFB入胞,增加了GFB對A549細胞的殺傷性。同時在較高濃度下GFB-PML組細胞存活率低于GFB組(P<0.05),結(jié)合GFB-PML體外釋放結(jié)果,可看出GFB-PML能延長GFB在細胞內(nèi)作用時間,增加細胞對GFB的攝取,進而提高GFB對A549細胞抑制效果。

    圖5 PML對A549細胞毒性結(jié)果(n=6)

    圖6 GFB(A)與GFB-PML(B)對A549細胞毒性結(jié)果(n=6)注:兩組間比較,*P<0.05

    2.4 GFB-PML對小鼠腫瘤生長的影響 H22荷瘤小鼠腫瘤生長趨勢如圖7,各組小鼠腫瘤體積均隨給藥時間而增長,第0至第2天腫瘤生長較為緩慢。從第4 天開始,生理鹽水組與PML組腫瘤體積增長較快,兩組體積無統(tǒng)計學差異(P>0.05)。GFB組第4、6、8 d與生理鹽水組相比,腫瘤體積大小有所降低,兩組體積無統(tǒng)計學差異(P=0.881、0.443、0.224)。GFB-PML組與生理鹽水組對比,3次測量的腫瘤體積均降低,有統(tǒng)計學差異(P=0.028、0.024、0.009),對腫瘤生長有較強抑制作用。小鼠處死后解剖瘤體,生理鹽水組瘤重為(6.83 ± 0.87)g,PML組瘤重為(5.85±1.88)g,與生理鹽水組相比,無統(tǒng)計學差異(P=0.973);GFB組瘤重為(4.28±1.72)g,與生理鹽水組相比,有統(tǒng)計學差異(P=0.016);GFB-Lip組瘤重為(3.64±2.00)g,與生理鹽水組相比,有統(tǒng)計學差異(P=0.001)。GFB組抑瘤率為37.34%,GFB-PML組抑瘤率為46.71%??梢钥闯?,GFB-PML能增強GFB抑制腫瘤生長的效果。

    圖7 H22荷瘤小鼠腫瘤生長曲線(n=8)注:與生理鹽水組對比,*P<0.05,**P<0.01

    3 討論

    傳統(tǒng)磷脂、膽固醇通過薄膜分散法制備的脂質(zhì)體包封率較低,包封率值為50%~80%[13];本文利用泊洛沙姆407修飾脂質(zhì)體,包封率明顯提高。相比于泊洛沙姆188,有研究顯示隨泊洛沙姆188含量增加,包封率值沒有顯著性改變[14],顯示出泊洛沙姆407應用于脂質(zhì)體載藥時具有提高包封率的優(yōu)勢。制備的脂質(zhì)體于4 ℃冰箱放置12 h,沒有出現(xiàn)沉降現(xiàn)象,穩(wěn)定性較好。

    制備的GFB-PML在粒徑測定時由于濃度較大,脂質(zhì)體之間出現(xiàn)了重疊,而納米粒度測定儀難以分辨,造成測定粒徑結(jié)果較透射電鏡觀察結(jié)果偏大。體外釋放實驗中,我們選擇磷酸鹽緩沖液作為釋放介質(zhì),但由于GFB在中性pH值的磷酸鹽緩沖液中幾乎不溶,所以加入30%(V/V)的甲醇溶液,增加GFB在介質(zhì)中的溶解度[15]。由于本實驗制備的GFB-PML包封率高,能有效降低突釋現(xiàn)象,發(fā)揮緩釋效果。體外細胞攝取實驗從時間和濃度兩方面說明細胞對脂質(zhì)體的攝取有時間和劑量依賴性。細胞毒性實驗中,相同濃度下GFB-PML比GFB原料藥對A549細胞殺傷性更強,可理解為GFB-PML增加了GFB穿過細胞膜的能力,運載GFB進入細胞內(nèi)并作用于ATP位點,阻斷信號傳導,從而抑制A549細胞的繁殖、轉(zhuǎn)移[16]。

    有研究以100 mg·kg-1劑量的吉非替尼灌胃方式考察吉非替尼對肝癌H22小鼠的腫瘤作用[17]。本文建立了H22小鼠肝癌腹水腫瘤模型,進行了GFB-PML對肝癌H22小鼠腫瘤生長抑制實驗,以6 mg·kg-1的給藥劑量,尾靜脈注射方式給藥,考察GFB-PML的腫瘤抑制效果。結(jié)果可見,制備的GFB-PML對小鼠腫瘤生長有較強的抑制作用,增強了GFB的抗腫瘤效果。同時對比大劑量灌胃方式,低劑量注射給藥也顯現(xiàn)出較顯著的抑瘤效果,為吉非替尼拓展新劑型應用奠定基礎。

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