張立邦,張東建,高 萌,金喬梅,吳天澤,楊 陽,張 健*,殷志琦
(1中國藥科大學(xué)中藥學(xué)院中藥制劑系&天然藥物活性組分與藥效國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京210009;2江蘇省中醫(yī)藥研究院轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室,南京210028;3南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院 南京210028)
壞死是一種由于急性物理化學(xué)損傷或突然的代謝失敗(如機(jī)械損傷、感染、毒素和缺血)導(dǎo)致的細(xì)胞不可逆損傷的死亡形式[1-2]。細(xì)胞壞死發(fā)生于多種疾病中,如腫瘤、心肌梗死和腦卒中等[3-4]。同時(shí),一些腫瘤治療方法,如熱消融、血管阻斷劑等,主要通過誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞壞死達(dá)到殺傷腫瘤的目的[5-6]。因此,非侵入性成像壞死組織對相關(guān)疾病的早期診斷、治療效果評價(jià)及治療方案的調(diào)整具有重要的意義[7-8]。
壞死親和性探針是一類能夠特異性濃聚于壞死組織,從而對壞死組織進(jìn)行可視化的化合物。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)單蒽醌類化合物具有良好的壞死親和性和血漿藥代動力學(xué)性質(zhì)[9],其中大黃酸(rhein)是一種有潛力的先導(dǎo)化合物?;诖簏S酸構(gòu)建的單光子發(fā)射計(jì)算機(jī)斷層顯像(SPECT)探針99mTc-HYNIC-Rhein,在心肌壞死的快速成像和腫瘤治療反應(yīng)早期監(jiān)測方面顯示出良好的應(yīng)用潛力[10-11],但是 SPECT成像空間分辨率較低,難以準(zhǔn)確評估壞死的邊界。
磁共振成像(MRI)是臨床常用的成像手段,該技術(shù)具有時(shí)空分辨率高且沒有輻射的優(yōu)點(diǎn)。因此,本課題組構(gòu)建了基于大黃酸的不同長度烷烴鏈連接臂的 MRI對比劑 Gd-DO3A-Linker-Rhein(GdL1-3),實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明三者的弛豫率及水溶性表現(xiàn)出較大的差異,這說明連接臂的差異會對造影劑本身的理化性質(zhì)產(chǎn)生影響。同時(shí),該研究發(fā)現(xiàn)GdL1能夠在給藥后3 h對CA4P治療導(dǎo)致的大鼠皮下W256腫瘤壞死區(qū)域進(jìn)行成像[12],GdL3具有良好的成像壞死組織的潛力[13]。MRI技術(shù)靈敏度較低,需要大量的對比劑才能顯像,因此需要MRI對比劑具有良好的水溶性,但是GdL3的油水分配系數(shù)為-(0.71±0.01),其水溶性有待提高;另一方面,連接臂的差異會對造影劑的理化性質(zhì)產(chǎn)生影響[12,14],上述 MRI對比劑僅以烷烴鏈為連接臂構(gòu)建探針,因此更換不同種類的連接臂進(jìn)行更深入的研究,可能得到水溶性更好且保留壞死親和性的以大黃酸為基礎(chǔ)的MRI對比劑。
近年來,醚鏈(ether)被廣泛用于放射性探針的結(jié)構(gòu)修飾中以改善藥物的某些理化性質(zhì)和藥代動力學(xué)特性[14-16],因此本研究以大黃酸為基礎(chǔ),以較短的醚鏈(乙氧基乙基)為連接臂構(gòu)建壞死親和性 MRI對比劑 Gd-DO3A-Ether-Rhein(GdE1),考察其水溶性和弛豫率的改變、體內(nèi)外的壞死靶向性及MRI成像效果。
大黃酸(rhein,成都思天德生物有限公司);苯并三氮唑-N,N,N′,N′-四甲基脲六氟磷酸鹽(HBTU)、2-琥珀酰亞胺基-1,1,3,3-四甲基脲四氟硼酸酯(TSTU)(上海畢得醫(yī)藥科技有限公司)、N-乙基二異丙胺(DIPEA)、三氟乙酸(TFA);[2-(2-氨基乙氧基)乙基]氨基甲酸叔丁酯(上海畢得醫(yī)藥科技有限公司);1,4,7,10-四氮雜環(huán)十二烷-1,4,7,10-四乙酸三叔丁基酯[DOTA-tris(t-Bu)ester,美國 Macrocyclics公司];其他試劑均為市售分析純。
Echo speed Plus 1.5 T磁共振儀(美國GE公司);AW 4.3后處理工作站;NM120核磁共振造影劑弛豫分析與成像系統(tǒng)(蘇州紐邁分析儀器股份有限公司);Shandon冰凍切片(英國Thermo Fisher Scientific公司);全波長多功能酶標(biāo)儀(美國賽默飛世爾科技有限公司)。
人肝癌HepG2細(xì)胞株和人正常肝IO2細(xì)胞株購自上海細(xì)胞庫;雄性SD大鼠,體重(220±10)g,購買自上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動物有限責(zé)任公司,合格證號:SCXK(滬)2017-0005。研究中大鼠的護(hù)理符合美國國立衛(wèi)生研究院公布的《實(shí)驗(yàn)動物保健原則》No.85-23(1996年修訂),該項(xiàng)研究得到動物使用委員會和保健機(jī)構(gòu)的批準(zhǔn)。
2.1 10-{[6-(1,8-二羥基蒽醌-3-甲酰氨基)乙氧基乙基]氨基}羰酰甲基-1,4,7,10-四氮雜環(huán)十二烷-1,4,7-三乙酸合釓(Gd-DO3A-Ether-Rhein,即GdE1)的合成
2.1.1 化合物1的合成 在500 mL圓底燒瓶中加入大黃酸1.24 g(4.36 mmol)和130 mL乙腈,緩慢滴加[2-(2-氨基乙氧基)乙基]氨基甲酸叔丁酯863μL(4.36 mmol),再加入2-琥珀酰亞胺基-1,1,3,3-四甲基脲四氟硼酸酯(TSTU)1.45 g(4.82 mmol),并滴加N-乙基二異丙胺(DIPEA)2 mL(11.5 mmol)至反應(yīng)液,室溫?cái)嚢?24 h,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除掉溶劑,經(jīng)過硅膠柱純化(二氯甲烷-甲醇,70∶1)得到黃色固體化合物1(1.08 g,52.43%)。
2.1.2 化合物2的合成 在50 mL圓底燒瓶中依次加入化合物 1 800 mg(1.70 mmol)、三氟乙酸1 mL和二氯甲烷10 mL,室溫條件下反應(yīng)6 h,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除掉溶劑,加入無水乙醚10 mL,抽濾,濾餅經(jīng)45℃真空干燥得到黃色濾餅化合物2粗產(chǎn)物,粗產(chǎn)物不進(jìn)行純化。
2.1.3 化合物3的合成 稱取苯并三氮唑-N,N,N′,N′-四甲基脲六氟磷酸鹽(HBTU)631 mg(1.66 mmol)、1,4,7,10-四氮雜環(huán)十二烷-1,4,7,10-四乙酸三叔丁基酯866 mg(1.51 mmol)于50 mL圓底燒瓶中,加入DMF 5 mL室溫?cái)嚢枞芙?,滴加N-乙基二異丙胺(DIPEA)527μL(3.0 mmol),室溫?cái)嚢?~10 min后,將化合物 2粗品(560 mg,1.51 mmol)的DMF(5 mL)溶液滴加到上述反應(yīng)液中,室溫?cái)嚢?2 h,反應(yīng)結(jié)束后,減壓除去溶劑,得到褐色油狀產(chǎn)物化合物3,不進(jìn)行純化,直接進(jìn)行下一步反應(yīng)。
2.1.4 配體 10-{[6-(1,8-二羥基蒽醌-3-甲酰氨基)乙氧基乙基]氨基}羰酰甲基-1,4,7,10-四氮雜環(huán)十二烷-1,4,7-三乙酸(DO3A-Ether-Rhein,即 E1)的合成 將上述褐色油狀產(chǎn)物化合物3置于250 mL茄型瓶中,分別加入二氯甲烷9mL和三氟乙酸3 mL,室溫條件下反應(yīng)6 h,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除掉溶劑得到粗產(chǎn)物,粗產(chǎn)物經(jīng)過反相色譜柱純化(流動相為甲醇-水,60∶40)得到黃色固體 DO3A-Ether-Rhein(E1)(865.1 mg,74.82%,該產(chǎn)率由“2.1.2”中化合物1投料量計(jì)算得到)。
2.1.5 Gd-DO3A-Ether-Rhein(GdE1)的合成 將六水合氯化釓250 mg(0.67 mmol)和 E1 500 mg(0.66 mmol)溶于去離子水 10 mL中,用 1 mol/L氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH至近中性,室溫?cái)嚢?2 h后停止反應(yīng),減壓除去溶劑,所得產(chǎn)物經(jīng)反相色譜柱純化(流動相為甲醇-水,80∶20)得到黃色固體 Gd-DO3A-Ether-Rhein(GdE1)(468.2 mg,77.79%)。
2.2 弛豫率測定及體外磁共振成像
參考文獻(xiàn)[13]的方法,以 PBS(pH 7.4)為溶劑,將 GdE1配制成 5個(gè)濃度(0.125,0.25,0.5,1.0,2.0 mmol/L)的樣品,分別檢測5個(gè)樣品對應(yīng)的縱向弛豫時(shí)間t,以濃度為橫坐標(biāo)、1/t為縱坐標(biāo)擬合直線,得到直線的斜率即為r1,利用 NM120(0.5 T)核磁共振造影劑弛豫分析與成像系統(tǒng)對上述5個(gè)樣品進(jìn)行成像,設(shè)置參數(shù):重復(fù)時(shí)間160ms,層厚0.7 mm,回波時(shí)間13.5 ms。Gd-DOTA弛豫率的檢測方法與GdE1相同。
2.3 油水分配系數(shù)(lgP)的測定
采用搖瓶法進(jìn)行測量[17],以pH 7.4正辛醇飽和的PBS為溶劑將GdE1配制成不同濃度的樣品,從不同濃度的樣品中各量取3 mL分別在435 nm下測量吸收度,標(biāo)記為A0。測量A0后,再分別加入PBS飽和的正辛醇溶液3 mL,在室溫下劇烈渦旋15 min,然后在14 000 r/min條件下離心5 min,測量PBS層吸收度,標(biāo)記為A1,根據(jù)公式lgP=lg[(A0-A1)/A1]計(jì)算油水分配系數(shù)(lgP),每個(gè)藥物測量3次。
Scheme 1 Synthesis of Gd-DO3A-Ether-Rhein(GdE1)
分別取人肝癌HepG2細(xì)胞和人正常肝IO2細(xì)胞進(jìn)行消化傳代,在96孔板中接種細(xì)胞(1×104個(gè)/孔),等細(xì)胞出現(xiàn)貼壁現(xiàn)象,吸走培養(yǎng)基,加入無血清組織的的DMEM培養(yǎng)細(xì)胞8 h,分別加入12.5,25,50,100,200μmol/L的 GdE1,空白組(Control)加入無血清的 DMEM,孵育細(xì)胞24 h,吸走培養(yǎng)基,每孔加入 MTT 20μL(5 mg/mL),孵育細(xì)胞4 h,將上清液除去,每孔加入DMSO 150μL,在490 nm處用酶標(biāo)儀測定吸收度,計(jì)算細(xì)胞活力,實(shí)驗(yàn)按照相同的方法進(jìn)行3次。Gd-DOTA的細(xì)胞毒檢測方法與GdE1相同。
在6孔細(xì)胞培養(yǎng)板上加入人肝癌HepG2細(xì)胞,每孔5×105個(gè),在含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基中培養(yǎng),在培養(yǎng)箱中過夜(37℃,5%CO2)。
在57℃條件下孵育1 h誘導(dǎo)細(xì)胞壞死[18],將經(jīng)高熱處理的細(xì)胞與未經(jīng)高熱處理的細(xì)胞分別取出,離心后將上清液除去,分別加入不含血清的培養(yǎng)基100μL和 GdE1(3×10-3mmol/L)100μL,振蕩混勻后在細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育30 min,接下來離心10 min(1 000 r/min),吸走上清液,用 PBS洗滌1次,再加入干凈的PBS充分混勻,放在樣品瓶中進(jìn)行磁共振成像。
微波消融是一種常見的誘導(dǎo)組織壞死的手段,根據(jù)文獻(xiàn)方法[19],本次實(shí)驗(yàn)選取6只220~240 g大鼠,腹腔注射戊巴比妥鈉(40 mg/kg)麻醉,將微波消融針插入大鼠左腿的肌肉中,30 W維持20 s引發(fā)大腿肌肉壞死,為避免感染,在每只大鼠的肌肉內(nèi)注射了1.6×105IU的青霉素。
將肌肉壞死模型大鼠分為兩組:對照組(Gd-DOTA)3只,給藥組(GdE1)3只。起初采用T1WI和T2WI掃描6只大鼠的腿部,兩組均按照0.1 mmol/kg的濃度給藥,給藥后進(jìn)行 CET1WI掃描,掃描后利用GE AW4.3工作站處理數(shù)據(jù)。參數(shù)設(shè)置為[13]:T1W SE序列:TE 24 ms,TR 550 ms;CE-T1W SE序列:TE 60 ms,TR 550 ms;T2W FSE序列:TE 88 ms,TR 2920 ms。間隔0.2 mm,層厚3mm,F(xiàn)OV 100×100 cm2,NEX 2次,矩陣224×192。
在相同截面同一位置的肌肉MRI圖像上挑選感興趣區(qū)域(ROI),對該區(qū)域不同時(shí)間點(diǎn)的信號值(SI)進(jìn)行測量,根據(jù)公式 CR=SInecrosis/SInormal計(jì)算壞死肌肉與正常肌肉的對比度(CR),分別計(jì)算給藥后各時(shí)間點(diǎn)的CR。
在MRI掃描結(jié)束前6 h每組取1只大鼠尾靜脈注射0.05%伊文思藍(lán)溶液0.4 mL,掃描結(jié)束后將給予伊文思藍(lán)的大鼠進(jìn)行安樂死,使其平躺固定在大鼠紙板上,置于-20℃冰箱冰凍8 h,隨后在大體切片機(jī)上進(jìn)行切片,當(dāng)切到與MRI圖像對應(yīng)的層面時(shí)用數(shù)碼相機(jī)進(jìn)行拍照。
在上述冷凍大鼠體內(nèi)取出部分相關(guān)肌肉組織,用冰凍切片機(jī)切成10μm薄片,將薄片進(jìn)行HE染色,染色后用數(shù)碼相機(jī)進(jìn)行拍照,最后在顯微鏡下觀察肌肉細(xì)胞的形態(tài)。
通過1H NMR、13C NMR、ESI-MS鑒定其結(jié)構(gòu)。1H NMR(300 MHz,DMSO-d6)δ:11.80(2H,s,-OH),8.99(s,1H,-NH),8.50(s,1H,-NH),7.85~7.72(m,4H,Ar-H),7.40(d,1 H,J=9.0 Hz,Ar-H),3.92(m,2H,CH2-O),3.81(m,2H,-OCH2),3.61~2.81(m,12H,6×CH2),1.42~1.24(m,16H,8×CH2)。13C NMR(75 MHz,DMSO-d6) δ:191.35,171.37,164.19,161.23,141.54,137.51,124.52,122.42,119.38,117.55,68.40,54.84,54.00,53.10,50.52,48.77,39.23,38.78。分子式:C35H44N6O13。ESI-MSm/z:757.3[M+H]+。
圖1-A呈現(xiàn)了不同濃度的GdE1以及Gd-DOTA的成像圖,從左到右濃度逐漸增加,由此可知在0~2 mmol/L濃度范圍內(nèi),隨著造影劑的濃度的增加,信號逐漸增強(qiáng)。從圖1-B可以看出GdE1在PBS中的r1(5.45,R2>0.99)顯著高于臨床上常用的磁共振對比劑Gd-DOTA(4.08,R2>0.99)。
測得GdE1的lgP為-(1.66±0.09)。
圖2-A可以看出在12.5~200μmol/L濃度范圍內(nèi),GdE1組和Gd-DOTA組的HepG2細(xì)胞存活率均與空白組沒有顯著性差異(P>0.05),說明在此濃度范圍內(nèi)GdE1和Gd-DOTA對人肝癌HepG2細(xì)胞沒有毒性。圖2-B中可以看出,在12.5~25μmol/L濃度范圍內(nèi),GdE1組和 Gd-DOTA組的IO2細(xì)胞存活率均與空白組沒有顯著性差異(P>0.05),說明在低濃度范圍內(nèi) GdE1和Gd-DOTA對人正常肝IO2細(xì)胞沒有毒性。但是在 50~200μmol/L濃度范圍內(nèi),GdE1組的IO2細(xì)胞存活率均與空白組相比具有顯著性差異(P<0.05);在 100~200μmol/L濃度范圍內(nèi),Gd-DOTA組的細(xì)胞存活率與空白組相比具有顯著性差異(P<0.05)。因此,相比于肝癌細(xì)胞,GdE1與Gd-DOTA在正常肝細(xì)胞中的安全性較低。
圖3顯示,在與GdE1共同孵育30 min以后,壞死細(xì)胞的亮度明顯比活細(xì)胞的亮度高,同時(shí)壞死細(xì)胞的信號強(qiáng)度(4 369±70)顯著高于活細(xì)胞(2 555±84)(P<0.05),這些現(xiàn)象表明 GdE1能夠被壞死細(xì)胞特異性攝取。
Figure 1 Relaxation measurement and images of GdE1(upper panels)and Gd-DOTA(lower panels)in PBS(pH 7.4)with different conditions(0.125,0.25,0.5,1.0,2.0 mmol/L)A:Images ofGdE1 and Gd-DOTA;B:Relaxivity of GdE1 and Gd-DOTA
Figure 2 MTT assay of GdE1 and Gd-DOTA with different conditions(0,12.5,25,50,100,200μmol/L)A:MTT in the human hepatocellular carcinoma HepG2 cells(±s,n=3);B:MTT in the human normal hepatic IO2 cells(±s,n=4)*P<0.05,**P<0.01 vs control group
Figure 3 MR images of the human hepatocellular carcinoma HepG2 cellsA:HepG2 treated with GdE1 for 30 min;B:HepG2 heated in 57°C for 1 h and then treated with GdE1 for 30 min
如圖4-A所示,GdE1組在給藥后1 h,壞死肌肉信號強(qiáng)度明顯高于正常肌肉,但壞死組織的邊界有些模糊;等到了給藥后3 h,壞死肌肉與正常肌肉信號的壞死比(CR)達(dá)到2.00±0.12(圖4-B),顯著高于給藥后0 h(1.27±0.03)(P<0.05),且壞死區(qū)域邊界十分清晰;給藥后3~9 h,CR逐漸下降,且給藥后3~5 h內(nèi)CR大于1.71,在這個(gè)時(shí)間范圍內(nèi)依然能夠清楚區(qū)分壞死組織與正常組織,但給藥9 h后CR降低至1.37±0.23(圖4-B),此時(shí)壞死肌肉區(qū)域的信號強(qiáng)度已經(jīng)與正常肌肉相差無幾;圖4-A中GdE1組最右邊一列大體切片圖像表明成功制造了壞死肌肉模型,伊文思藍(lán)能夠與體內(nèi)壞死組織特異性結(jié)合,并將壞死組織染成藍(lán)色,圖片中藍(lán)色區(qū)域?yàn)榧∪鈮乃啦课弧?/p>
圖4-A中,Gd-DOTA組最右邊一列表明肌肉壞死模型的成功制造,藍(lán)色區(qū)域?yàn)榧∪鈮乃啦课?,但在給藥后1~9 h并沒有觀察到肌肉壞死區(qū)域有明顯的信號增強(qiáng);圖4-B表明,Gd-DOTA組的CR在給藥后0 h達(dá)到最高為1.23±0.02,而在給藥后1~9 h壞死比相差不大(CR都接近于1.00),可能是由于Gd-DOTA在體內(nèi)代謝很快,在給藥后1 h內(nèi)已經(jīng)完全從壞死組織中清除,失去了對壞死組織的成像能力。
圖4-C的HE染色結(jié)果在組織化學(xué)層面證明了模型的成功,正常肌肉區(qū)域細(xì)胞排列緊密,細(xì)胞完整性較好,而壞死肌肉區(qū)域細(xì)胞的完整性遭到破壞且排列順序混亂。
以上結(jié)果表明,GdE1能夠被壞死肌肉特異性攝取,且停留時(shí)間較長,能夠在給藥后3~5 h對壞死區(qū)域進(jìn)行成像;而Gd-DOTA則在給藥后1 h內(nèi)快速從壞死組織中清除,這進(jìn)一步說明了GdE1具有壞死親和性。
本研究以大黃酸為底物,以較短的醚鏈(乙氧基乙基)為連接臂構(gòu)建了MRI對比劑Gd-DO3A-E-ther-Rhein(GdE1)。研究結(jié)果表明,GdE1水溶性良好且弛豫率較高,在體內(nèi)外均表現(xiàn)出良好的壞死靶向性,能夠通過MRI成像微波消融誘導(dǎo)的大鼠肌肉壞死部位,在壞死相關(guān)疾病的診斷中表現(xiàn)出良好的應(yīng)用潛力。
與之前報(bào)道的以烷烴鏈為連接臂的探針GdL1-3相比,GdE1的理化性質(zhì)顯著發(fā)生改變。為提高磁共振對比劑水溶性,可以在分子結(jié)構(gòu)中引入極性基團(tuán),有報(bào)道在疏水性基團(tuán)與Gd-DTPA之間引入親水性基團(tuán)磷酸二酯能夠降低化合物的疏水性[20]。本研究中 GdE1(lgP=-1.66±0.09)水溶性高于以烷烴鏈為連接臂的GdL2(lgP=-1.32±0.01)和 GdL3(lgP=-0.71±0.01),說明分子結(jié)構(gòu)中引入親水性的醚鏈能夠提高分子探針的水溶性;此外,之前的研究中,以乙基為連接臂的GdL1(lgP=-2.15±0.01)水溶性最好,以丁基為連接臂的GdL2次之,以己基為連接臂的GdL3最差[12],而新構(gòu)建的GdE1水溶性低于GdL1,可能是因?yàn)檫B接臂長度越短分子的水溶性越好。弛豫率方面,GdE1(r1=5.45)顯著低于 GdL1-3(r1分別為 7.28,7.35和8.03),可能是因?yàn)閷⑼闊N鏈替換為醚鏈增加了順磁性螯合物整體的旋轉(zhuǎn)擴(kuò)散速率[20],或者醚鏈在水中沒有完全伸展導(dǎo)致水分子與Gd3+的接觸減少[21],這些因素都會導(dǎo)致弛豫率的降低,具體的原因還有待深入的研究。
與之前以烷烴鏈為連接臂的探針GdL1和GdL3相比,GdE1在壞死組織中的保留時(shí)間明顯減少。GdL1能夠在給藥后3~12 h對壞死肝臟進(jìn)行MRI成像,該時(shí)段內(nèi)的 CR均大于1.95±0.15[12];此外,GdL3在給藥后12 h壞死與正常肝臟的CR為2.36±0.20[13],依然維持在較高水平,這表明兩者在壞死組織中有很長的保留時(shí)間。本研究中,GdE1成像時(shí)間窗僅為給藥后3~5 h,可見將分子結(jié)構(gòu)中的烷烴鏈替換為醚鏈會導(dǎo)致造影劑在壞死組織中被較快清除。之前的研究表明,以大黃酸為基礎(chǔ)構(gòu)建的造影劑的壞死親和性可能是由于分子與壞死組織中暴露的DNA結(jié)合所致[11-12],因此,GdE1在壞死組織中保留時(shí)間的減少可能是因?yàn)榉肿优c壞死組織中的DNA結(jié)合能力下降,目前GdE1與DNA的體外結(jié)合實(shí)驗(yàn)正在進(jìn)行中。
本研究表明,對于 Gd-DO3A-Linker-Rhein探針,更換連接臂種類會改變分子探針的理化性質(zhì)及其在壞死組織中的保留時(shí)間,后續(xù)可以將哌啶或甘氨酸鏈[14]作為連接臂繼續(xù)研究。此外,本研究僅在細(xì)胞和肌肉壞死模型中評價(jià)了GdE1的壞死靶向性,今后可以在心肌梗死模型[11]、肝臟缺血再灌注模型或藥物誘導(dǎo)的腫瘤壞死模型[22]中進(jìn)一步評價(jià)該探針的壞死親和性。