汪雨 郭軍 陳壯
摘? 要:以本地綠茶為研究對(duì)象,采用苯酚-硫酸法測(cè)定茶葉多糖含量,通過(guò)研究不同因素條件下的提取率,確定最佳工藝為:超聲提取功率70W,提取時(shí)間1h,提取溫度60℃,料液比1∶30,提取次數(shù)3次;通過(guò)紫外光譜圖和紅外光譜圖,確定多糖中存在特征官能團(tuán)。
關(guān)鍵詞:茶多糖;超聲;提取
中圖分類(lèi)號(hào) TS272.4文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A文章編號(hào) 1007-7731(2019)12-0025-4
茶葉是世界上幾大重要飲料之一,我國(guó)茶資源豐富,是最早飲茶的國(guó)家,經(jīng)過(guò)幾千年的傳承和延續(xù),飲茶在我國(guó)已經(jīng)成為一種文化[1],飲茶與人體健康的響應(yīng)機(jī)制是眾多學(xué)者關(guān)注的對(duì)象[2,3]。茶葉多糖是茶葉中由大量單糖通過(guò)糖苷鍵連接而成的天然大分子活性物質(zhì),具有多種保健效果,是茶葉中的關(guān)鍵性功能成分之一,具有抗氧化、抗衰老、增強(qiáng)免疫力功能。茶葉多糖以降低血糖血壓和防治糖尿病成為研究的熱點(diǎn)[4,5],較其它保健品具有吸收快、代謝徹底、無(wú)殘留等優(yōu)點(diǎn),基本無(wú)毒副作用[6]。本文通過(guò)苯酚-硫酸法測(cè)定茶葉多糖的濃度,探究改變外在實(shí)驗(yàn)條件,研究茶葉多糖提取率,并對(duì)茶葉多糖的結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,為優(yōu)化茶葉多糖的提取工藝和茶葉多糖的制備提供一定的理論依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 材料與儀器 茶葉購(gòu)于茶農(nóng),把準(zhǔn)備好的干茶葉放入粉碎機(jī)中粉碎,將粉碎后過(guò)30目篩的茶葉粉末裝好備用;無(wú)水乙醇、正丁醇、濃硫酸、苯酚、三氯乙烷、異戊醇等分析純,上海國(guó)藥生產(chǎn)。
恒溫水浴鍋(HH-8):金壇市杰瑞電器有限公司;小型超微粉碎機(jī)(WK-150A):山東省青州市精誠(chéng)機(jī)械制造有限公司;真空干燥箱(OZF-0690):上海新苗醫(yī)療機(jī)械制造有限公司;電子天平(FA2104N):上海箐海儀器有限公司;臺(tái)式低速離心機(jī)(TDZ4):湖南赫西儀器有限公司;可見(jiàn)分光光度計(jì)(722):上海奧普勒儀器有限公司;傅立葉變換紅外光譜儀(Nicolet iS-200):美國(guó)。
1.2 實(shí)驗(yàn)步驟
1.2.1 茶多糖測(cè)定方法 用苯酚-硫酸法[7]來(lái)測(cè)定茶葉多糖的濃度,以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品,配制成100mg/L的葡萄糖溶液。
茶葉多糖的提取率公式:提取率(%)=(C×稀釋倍數(shù)×V×10-6)/m×100
式中:C為分光光度計(jì)間接測(cè)定的茶葉多糖的濃度;單位:mg/L;V為提取液體積;位:mL;m為樣品質(zhì)量;單位:g。
1.2.2 不同超聲功率和時(shí)間下提取多糖
1.2.2.1 不同超聲波功率提取多糖 稱取待測(cè)10.0g茶葉粉5份,加入蒸餾水,在溫度為60℃和超聲功率分別為0、50、60、70、80W條件下提取1h。提取液用4層紗布過(guò)濾后靜置3h,抽濾,濾液經(jīng)離心,然后測(cè)定茶葉多糖濃度和提取率。
1.2.2.2 不同超聲時(shí)間提取多糖 稱取待測(cè)10.0g茶葉粉5份,加入蒸餾水,在溫度60℃和功率70W條件下提取,超聲提取時(shí)間分別為0.5、1、1.5、2、2.5h,提取液用4層紗布過(guò)濾后靜置3h,抽濾,濾液離心,然后測(cè)定茶葉多糖濃度和提取率。
1.2.3 超聲條件下單因素實(shí)驗(yàn)
1.2.3.1 溫度對(duì)提取率的影響 稱量10.0g茶葉粉5份,加入蒸餾水,在功率70W條件下,放置于溫度不同的同一型號(hào)的超聲波清洗儀中,設(shè)定水溫分別為50、60、70、80、90℃,浸提1h,提取液用4層紗布過(guò)濾后靜置3h,抽濾,濾液離心,然后測(cè)定茶葉多糖濃度和提取率。
1.2.3.2 料液比對(duì)提取率的影響 稱量10.0g茶葉粉5份,分別加入100、200、300、400、500mL的蒸餾水,在功率70W條件下放置于60℃的超聲波清洗儀中,浸提1h,提取液用4層紗布過(guò)濾后靜置3h,抽濾,濾液離心,然后測(cè)定茶葉多糖濃度和提取率。
1.2.3.3 提取次數(shù)對(duì)提取率的影響 稱量10.0g茶葉粉5份,加入蒸餾水,放置于60℃超聲波清洗儀中,在功率70W條件下,分別提取1、2、3、4、5次,一次1h,提取液用4層紗布過(guò)濾后靜置3h,抽濾,濾液離心,然后測(cè)定茶葉多糖濃度和提取率。
1.2.4 茶葉多糖脫蛋白 把多糖溶于20mL的蒸餾水中,并用三氯甲烷和正丁醇(4∶1)配制4份各10mL的sevag試劑,分別加入到多糖溶液中。充分振蕩30min后放入到離心機(jī)上以3000r/min的速度離心1min。然后留下上清液,繼續(xù)加入相當(dāng)于多糖溶液1/3體積的sevag試劑,重復(fù)上述操作3次。向剩下的多糖溶液中加入2倍的無(wú)水乙醇,冷藏靜置2h,然后離心3min,用水洗滌沉淀后,加入丙酮脫水,真空冷凍干燥12h,得到除掉蛋白的多糖。
1.2.5 紅外與紫外實(shí)驗(yàn) 取少量除去蛋白的多糖,加蒸餾水溶解,在200~700nm的波長(zhǎng)范圍內(nèi)進(jìn)行紫外實(shí)驗(yàn),保存所得光譜。取2mg精糖放入研缽中,并加入200mgKBr在研缽中充分研磨壓片,然后在4000~400cm-1處進(jìn)行紅外光譜實(shí)驗(yàn)。
2 結(jié)果與分析
2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線 依據(jù)分光光度法在波長(zhǎng)490nm處測(cè)定吸光度A490,繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖1所示,得回歸方程為:A=0.0128C-0.0547,R=0.9987。
2.2 不同因素對(duì)多糖提取率的影響
2.2.1 不同超聲波功率對(duì)提取率的影響 由圖2可知,隨著超聲波功率的增加,茶葉多糖提取率也呈現(xiàn)上升趨勢(shì),當(dāng)超聲波功率大于70W之后,提取率增加不明顯,沒(méi)有超聲情況下提取率最低。
2.2.2 不同超聲時(shí)間對(duì)提取率的影響 由圖3可知,茶葉多糖提取率隨著超聲浸提時(shí)間的增加而逐漸升高,1h后,提取率增加緩慢,而隨著時(shí)間的延長(zhǎng)生產(chǎn)成本會(huì)增加,因此浸提時(shí)間應(yīng)選在1h適宜。超聲波可在液體中產(chǎn)生空穴作用,空穴作用產(chǎn)生的沖擊波和射流可破壞植物細(xì)胞和細(xì)胞膜結(jié)構(gòu),從而增加細(xì)胞內(nèi)溶物通過(guò)[8,9]。經(jīng)過(guò)超聲浸提比不經(jīng)過(guò)超聲浸提得到的多糖要多,而且超聲提取的時(shí)間加長(zhǎng)會(huì)增加多糖的提取,因此可以推斷出超聲在一定程度上有利于茶葉多糖的提取。
2.2.3 超聲提取溫度與提取率的關(guān)系 由圖4可知,伴隨溫度的升高,多糖的提取率漸漸升高,這表明溫度愈高對(duì)茶葉細(xì)胞的破壞作用愈大,有益于多糖的浸出。但在90℃左右時(shí),雖然提取率達(dá)到1.63%,但茶葉提取液的粘度變得過(guò)大,這也許是因?yàn)椋阂皇遣枞~細(xì)胞在高溫下會(huì)處于“崩潰”、溶解的狀況;二是茶葉多糖中含有的淀粉在90℃時(shí)會(huì)處于糊化的狀態(tài),茶葉提取液就形成一種粘稠的糊狀,而這種高黏的液體對(duì)固液分離不利[10,11]。所以在茶葉多糖的工業(yè)化生產(chǎn)中,提取溫度不得超過(guò)90℃,在60℃時(shí)提取的多糖與在70℃時(shí)提取的多糖質(zhì)量相差不大,隨著提取溫度的升高,分子熱運(yùn)動(dòng)會(huì)變得更為劇烈,多糖提取率也會(huì)隨之增加。由于多糖是活性物質(zhì),溫度過(guò)高易破壞其結(jié)構(gòu),影響其生物活性,會(huì)對(duì)后面試驗(yàn)造成不利影響,所以初步推出60℃和70℃為最佳浸提溫度。
2.2.4 料液比對(duì)提取率的影響 由圖5可知,隨著料液比的增加,多糖的提取率也會(huì)漸漸增加,但當(dāng)料液比到達(dá)1∶30后,多糖的提取率的增加就變得遲緩。而體積的增加會(huì)延長(zhǎng)濃縮時(shí)間,生產(chǎn)成本增加,所以料液比選擇在1∶30較好。
2.2.5 提取次數(shù)對(duì)提取率的影響 由圖6可知提取次數(shù)對(duì)多糖提取率的影響也較為突顯,當(dāng)提取次數(shù)從1到3次時(shí),多糖提取率增加快速,從3到5次時(shí),多糖提取率上升相當(dāng)遲緩。所以,從節(jié)約成本和提高效率方面考慮提取次數(shù)選擇3次適宜。
2.3 茶葉多糖的紅外表征 圖7是茶葉多糖在4000~400cm-1的波長(zhǎng)范圍內(nèi)的紅外光譜圖,對(duì)照以上結(jié)果可知3650~3150cm-1處的較寬吸收峰是O—H和N—H伸縮振動(dòng)峰,在2910cm-1周?chē)嬖诘姆鍨榧谆ā狢H3)和次甲基(—CH2)的C—H伸縮振動(dòng)的信號(hào),1650cm-1處的峰是多糖水合吸收振動(dòng)吸收峰,是由糖環(huán)上的糖苷鍵和酰氨基上的C[]O伸縮振動(dòng)引起的,1360cm-1處的吸收峰是C—H鍵的變角振動(dòng),1240cm-1處的峰是C—O—C非對(duì)稱伸縮振動(dòng)峰[12]。887cm-1是吡喃糖苷的特征吸收峰,652cm-1出現(xiàn)吸收峰,表明茶多糖結(jié)構(gòu)中存在酰胺基。
2.4 茶葉多糖的紫外表征 由圖8~11用紫外掃描儀在200~700nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)進(jìn)行掃描得到的結(jié)果可知:該紫外吸收光譜圖在200~280nm波長(zhǎng)處有吸收峰,說(shuō)明其中含有肽鍵,表明多糖內(nèi)含有蛋白質(zhì)和核酸[13]。在圖4中,溫度升高會(huì)增加多糖的產(chǎn)量,但是溫度過(guò)高會(huì)破壞多糖結(jié)構(gòu)影響其活性,而且60℃和70℃下提取出的多糖相差很少,從節(jié)約能源的角度看,60℃為最佳浸提溫度。在圖7中可以看出,紅外光譜的在1650cm-1左右出現(xiàn)吸收峰,這是多糖中C[]O伸縮振動(dòng)引起的,但同時(shí)也是酰氨基上的C[]O伸縮振動(dòng)引起的,這說(shuō)明多糖中有蛋白質(zhì)的存在[14]。由圖8,圖9,圖10,圖11可以看出,207nm處為茶多糖的特征吸收峰,274nm處為蛋白質(zhì)吸收峰,無(wú)超聲情況下,50℃和60℃時(shí)蛋白質(zhì)的吸收峰較低,但是在70℃時(shí)蛋白質(zhì)的吸收峰較高,說(shuō)明溫度增加了蛋白質(zhì)的提取,在該溫度下超聲提取時(shí),蛋白質(zhì)的吸收峰明顯降低,可能是超聲引起了蛋白質(zhì)的變性,從而引起蛋白質(zhì)溶解度降低,說(shuō)明超聲對(duì)蛋白質(zhì)提取有抑制作用。
4 結(jié)論
本實(shí)驗(yàn)對(duì)茶多糖提取工藝進(jìn)行研究,通過(guò)對(duì)超聲提取功率、提取時(shí)間、提取溫度、料液比、提取次數(shù)進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),得出最佳提取功率是70W,提取時(shí)間為1h,提取溫度是60℃,料液比為1∶30,提取次數(shù)為3次。通過(guò)紅外光譜和紫外光譜實(shí)驗(yàn)確定多糖中存在特征官能團(tuán),確定茶多糖是一種含有吡喃環(huán)和糖醛酸的蛋白多糖復(fù)合物[15]。
參考文獻(xiàn)
[1]陳藝瑞,王川.“中國(guó)藏茶”的飲茶禮儀及飲茶程序[J].歷史教學(xué)(下半月刊),2017(07):50-53.
[2]劉鳳瓊,鄢靈君,陳法,等.飲茶與牙齦癌發(fā)病關(guān)系的病例對(duì)照研究[J].腫瘤防治研究,2017,44(02):138-141.
[3]Chen K,Chen D,Lan C,et al. Does green tea consumption increase urinary oxalate excretion? Results of a prospective trial in healthy men[J]. International Urology and Nephrology,2017(3):1-5.
[4]Cao H. Polysaccharides from Chinese tea: recent advance on bioactivity and function[J]. International Journal of Biological Macromolecules,2013,62(11):76-79.
[5]Chen G,Yuan Q,Saeeduddin M,et al. Recent advances in tea polysaccharides: Extraction,purification,physicochemical characterization and bioactivities[J]. Carbohydrate Polymers,2016,153:663-678.
[6]黃謙,朱明揚(yáng),羅林根,等.基于主成分分析法的茶葉多糖提取工藝優(yōu)化[J]. 食品工業(yè)科技,2018(17):206-211.
[7]謝普軍,黃立新,張彩虹,等.蒲公英茶與葉的化學(xué)成分測(cè)定分析[J].食品工業(yè)科技,2014,35(15):346-351.
[8]余婉莎.桑枝多糖提取與結(jié)構(gòu)分析及生物活性探究[D].重慶:西南大學(xué),2018.
[9]李英.超聲波輔助制備稻稈羧甲基纖維素及其吸附性能的研究[D].無(wú)錫:江南大學(xué),2018.
[10]許子競(jìng),石謙,羅樹(shù)常.金花茶葉多糖的分離純化及組成分析[J].天然產(chǎn)物研究與開(kāi)發(fā),2017,29(07):1148-1153.
[11]曲偉,劉莊,張照康,等.毛尖茶葉多糖的提取分離及其活性測(cè)定[J].天然產(chǎn)物研究與開(kāi)發(fā),2016(8):1262-1265.
[12]劉芳,趙聲蘭,陳朝銀.質(zhì)譜分析多糖結(jié)構(gòu)的方法學(xué)進(jìn)展[J].藥物分析雜志,2011,31(8):1612-1618.
[13]謝明勇,聶少平.天然產(chǎn)物活性多糖結(jié)構(gòu)與功能研究進(jìn)展[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2010,10(2):1-11.
[14]高小榮,劉培勛.多糖結(jié)構(gòu)分析研究進(jìn)展[J].天津藥學(xué),2003,15(6):68-72.
[15]張艷.茶多糖的分離純化及其含片的制備工藝研究[D].合肥:安徽農(nóng)業(yè)大學(xué),2014.
(責(zé)編:王慧晴)