文輝忠 梁英彩 肖程月 邱子情 李娟
摘 要 以荔枝皮為原料制備碳量子點(CQDs),此CQDs具有類過氧化物酶活性,可催化H2O2氧化3,3',5,5'-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)產(chǎn)生顯色反應(yīng),而半胱氨酸(CySH)能還原TMB的氧化產(chǎn)物(ox-TMB)使其褪色。基于上述原理,建立了以CQDs為類過氧化物酶的CySH測定方法。以TMB為底物,考察了pH值和溫度等因素對CQDs催化性能的影響。實驗結(jié)果表明,當(dāng)TMB濃度為0.25 mmol/L時,在pH=3.5、反應(yīng)溫度40℃、反應(yīng)時間10 min、 0.5 mmol/L H2O2及 0.5 μg/mL CQDs等條件下,體系吸光度的減少值(ΔA)與半胱氨酸濃度在0.05~4.00 μmol/L范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系,檢出限為0.02 μmol/L(3σ/k)。血清中的常見氨基酸不干擾測定,實際血清樣品中半胱氨酸的加標(biāo)回收率為94.0%~104.0%。
關(guān)鍵詞 碳量子點; 模擬酶; 半胱氨酸
1 引 言
半胱氨酸(CySH)是組成人體蛋白質(zhì)的氨基酸中唯一具有巰基的氨基酸,它是生物體內(nèi)的還原劑,參與蛋白質(zhì)和谷胱甘肽的合成,具有保護細(xì)胞免受毒物損害等功能,是與疾病相關(guān)的一種重要的生理調(diào)節(jié)因子[1~3]。因此,對半胱氨酸含量進行分析測定具有重要意義。目前,有關(guān)半胱氨酸含量的測定方法主要有高效液相色譜法[4]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[5]、毛細(xì)管電泳法[6]、熒光法[7]及電化學(xué)法[8]]等。這些方法具有選擇性好、靈敏度高等優(yōu)點,但需要昂貴的儀器或冗長的樣品預(yù)處理、復(fù)雜的操作過程。因此,發(fā)展簡單、快速、廉價的半胱氨酸測定方法很有必要。近年來,隨著納米科學(xué)和納米技術(shù)的不斷發(fā)展,納米材料在分析測定中的應(yīng)用日益廣泛?;诮鸹蜚y納米粒子團聚后發(fā)生顏色變化的光度分析法已應(yīng)用于半胱氨酸的定量測定[9,10]。研究表明,貴金屬納米顆?;蚪饘傺趸锛{米顆粒具有類過氧化物酶特性,可催化H2O2氧化3,3',5,5'-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)產(chǎn)生顯色反應(yīng); 而半胱氨酸分子結(jié)構(gòu)中含有巰基,具有較強的還原性,能還原TMB的氧化產(chǎn)物(ox-TMB)使其褪色,從而引起吸光度降低[11]。基于上述原理,研究者開發(fā)了以金納米簇[12]、Fe3O4納米纖維[13]及NiO納米花[14]等為類過氧化物酶的半胱氨酸測定新方法。
碳量子點(CQDs)是一種新型納米材料,具有成本低、熒光發(fā)射強度高、毒性低及生物相容性好等優(yōu)點,在化學(xué)分析[15, 16]和生物傳感[17, 18]等研究領(lǐng)域得到了廣泛應(yīng)用。2011年,Shi等[19]發(fā)現(xiàn)從蠟燭煙灰制備的CQDs具有類過氧化物酶活性,可催化H2O2氧化TMB產(chǎn)生顯色反應(yīng),開創(chuàng)了CQDs應(yīng)用于H2O2及葡萄糖測定研究的新領(lǐng)域。近年來,類似研究屢見報道,如Lin等[20]制備氮摻雜的CQDs用于H2O2及葡萄糖的測定; Wang等[21] 以鴨血為原料,制備多元素?fù)诫s的CQDs用于葡萄糖的比色測定。本研究以荔枝皮為原料制備CQDs,此CQDs具有類過氧化物酶活性,可催化H2O2氧化TMB產(chǎn)生顯色反應(yīng); 而半胱氨酸能還原TMB的氧化產(chǎn)物(ox-TMB)使其褪色[11]?;谏鲜鲈?,發(fā)展一種以CQDs為類過氧化物酶的半胱氨酸測定方法,并應(yīng)用于實際樣品分析。與其它來源的類過氧化物酶相比,以丟棄的荔枝皮為原料制備的CQDs類過氧化物酶具有成本低、催化活性強和穩(wěn)定性高等特點。
2 實驗部分
2.1 儀器與試劑
UV-4802型紫外可見分光光度計(上海龍尼柯儀器有限公司); H1850離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司); DHG-9146A型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(上海精宏實驗設(shè)備有限公司); Nicolet iS5傅立葉變換紅外光譜儀(美國賽默飛世爾科技有限公司); RF-5301型熒光分光光度計(日本島津公司);? Tecnai G2 F20 S-Twin透射電鏡 (美國FEI 公司)。
2.2 實驗方法
2.2.1 CQDs的制備 將洗凈烘干后的荔枝皮置于坩堝中,用電爐碳化后磨碎; 粉末用丙酮洗滌3次,干燥后,得碳粉。CQDs的制備參照文獻[22]方法并略有改動:稱取0.5 g干燥碳粉,加入到150 mL 5 mol/L HNO3溶液中, 在140℃下回流12 h; 然后,用Na2CO3溶液調(diào)節(jié)至pH 7.0,在去離子水中透析2天。在透析后的溶液中加入丙酮,在16000 r/min下離心15 min; 棄去上清液,固體沉淀在真空干燥箱中干燥,準(zhǔn)確稱重,分散于去離子水中,用離心超濾管超濾除去大顆粒,得棕色CQDs溶液; 最后,用去離子水稀釋得到50 μg/mL CQDs溶液,于4℃保存, 備用。
2.2.2 半胱氨酸的測定 在10 mL比色管中,依次加入0.5 mL 5.0 mmol/L TMB、1.0 mL 5.0 mmol/L H2O2、0.1 mL 50 μg/mL CQDs、1.0 mL CySH溶液,充分混合,用0.2 mol/L HAc-NaAc緩沖溶液(pH=3.5)定容至 10 mL, 在40℃水浴中反應(yīng)10 min,測定吸收光譜,記錄652 nm處的吸光度值(A)。同樣條件下做不加CySH的試劑空白(A0)實驗,計算吸光度差ΔA=A0- A。
3 結(jié)果與討論
3.1 CQDs的表征
由CQDs的透射電鏡圖(圖1A)可見,制備的CQDs分散性好,顆粒呈球狀,粒度分布均勻,主要分布在2~5 nm范圍內(nèi),平均直徑為3.1 nm。圖1B中, 0.21 nm的晶格間距與石墨的(100)晶面相符[23]。圖1C是不同激發(fā)波長下CQDs的熒光發(fā)射光譜,當(dāng)激發(fā)波長從360 nm逐漸增加到500 nm時,CQDs的熒光發(fā)射峰從470 nm紅移至550 nm,呈現(xiàn)明顯的激發(fā)依賴的熒光特性,與文獻[24,25]報道的結(jié)果一致。圖1D為CQDs的紅外光譜圖, 3367和1396 cm1處分別出現(xiàn)OH的伸縮振動和彎曲振動峰,1130和1608 cm1處分別出現(xiàn)CO和CO的伸縮振動峰[26], 表明CQDs表面含有親水基團OH和COOH, 保證了CQDs良好的水溶性。
3.2 CQDs的催化活性及CySH的測定原理
在pH=3.5的HAc-NaAc緩沖溶液中,以TMB為顯色底物,考察了CQDs的催化活性及CySH對顯色反應(yīng)的影響。由圖2可見,當(dāng)溶液中只有H2O2和TMB 存在時,溶液顏色接近無色,對應(yīng)的吸收光譜在652 nm 處有一個弱吸收峰(圖2a),說明H2O2能使TMB發(fā)生微弱的顯色反應(yīng); 當(dāng)H2O2和TMB混合溶液中存在CQDs時,體系顏色為深藍色,對應(yīng)的吸收光譜在652 nm處有氧化態(tài)TMB (ox-TMB)的特征吸收峰(圖2b),說明所制備的CQDs具有類過氧化物酶的催化特性,能夠催化H2O2 氧化TMB 產(chǎn)生顯色反應(yīng)。其原因可能是CQDs表面帶負(fù)電荷,而TMB在pH=3.5的酸性介質(zhì)中帶正電,可通過靜電作用吸附于CQDs表面。由于CQDs良好的電子轉(zhuǎn)移能力,TMB氨基上的孤對電子可通過CQDs轉(zhuǎn)移給H2O2,即CQDs可以加速電子供體TMB 與電子受體H2O2之間的電子轉(zhuǎn)移,提高H2O2的分解速率[27]。在H2O2、TMB和CQDs混合溶液中加入CySH后,體系顏色變淺,652 nm處的特征峰吸收波長不變,但吸收強度降低(圖2c),這是因為CySH具有較強的還原性,能還原ox-TMB使其褪色[11]。進一步研究表明,652 nm處的吸光度隨CySH濃度的升高而降低(圖2d)。據(jù)此可建立一種通過吸光度變化(ΔA=A0- A)測定CySH濃度的分析方法。
3.3 反應(yīng)條件的優(yōu)化
考察了溶液的pH值、反應(yīng)溫度等條件對CQDs 類過氧化物酶催化活性的影響,并對反應(yīng)時間及H2O2的濃度進行了優(yōu)化(圖3)。H2O2氧化TMB的顯色反應(yīng)都是在酸性條件下進行[28~31],因此首先考察了不同pH值的酸性緩沖溶液(HAc-NaAc)對反應(yīng)體系ΔA值的影響(圖3A)。實驗結(jié)果表明,CQDs類過氧化物酶活性的最適酸度為pH=3.5。反應(yīng)溫度對CQDs催化活性的影響見圖3B, 40℃時CQDs的催化活性最高。如圖3C所示,在40℃的水浴中反應(yīng)8 min后,ΔA趨于穩(wěn)定,因此選擇混合反應(yīng)10 min后測定體系的吸收值。由圖3D可見,H2O2濃度在0.5~0.6 mmol/L范圍內(nèi)時,ΔA值大且穩(wěn)定,因此選擇H2O2的濃度為0.5 mmol/L。
3.4 方法的分析性能及樣品分析
當(dāng)CySH的濃度為3.0 μmol/L時,分別考察了濃度均為30 μmol/L的甘氨酸(Gly)、組氨酸(His)、蘇氨酸(Thr)、丙氨酸(Ala)、賴氨酸(Lys)、精氨酸(Arg)、苯丙氨酸(Phe)、纈氨酸(Val)、蛋氨酸(Met)、胱氨酸(Cys)等常見氨基酸對分析結(jié)果的影響。因其它氨基酸分子中不含巰基,不能將ox-TMB還原,對分析結(jié)果幾乎沒有影響(圖4),說明本方法檢測CySH的選擇性良好。
在優(yōu)化的實驗條件下,測定不同濃度CySH存在時體系的響應(yīng)信號。由圖5可見,隨著CySH濃度的增加,體系在652 nm 處ox-TMB的特征吸收峰波長不變,吸收強度逐漸減弱; 當(dāng)CySH濃度在0.05~4.00 μmol/L范圍內(nèi)時,與ΔA呈良好的線性關(guān)系,回歸方程為ΔA=0.1569C (μmol/L) + 0.051,相關(guān)系數(shù)R2=0.993,方法檢出限(3σ/k)為0.02 μmol/L。表1列出了以不同材料為類過氧化物酶的半胱氨酸檢測方法的分析性能,可見本方法的檢出限較低,線
4 結(jié) 論
以荔枝皮為原料制備了CQDs, 基于CQDs的類過氧化物酶特性,可催化H2O2氧化TMB產(chǎn)生顯色反應(yīng)及CySH能還原TMB的氧化產(chǎn)物(ox-TMB)使其褪色的原理,建立了一種以CQDs為類過氧化物酶的CySH測定方法。本方法選擇性好,靈敏度高,應(yīng)用于血清中CySH的測定,效果良好。本研究不僅為具有催化活性的CQDs的制備提供了一種有效方案,也為進一步拓展CQDs的應(yīng)用提供了新思路。
References
1 Yu Y W, Yang J, Xu X H, Jiang Y L, Wang B X. Sens. Actuators B, 2017, 251: 902-908
2 Wang Y Y, Liang R X, Liu W, Zhao Q B, Zhu X Y, Yang L, Zou P, Wang X X, Ding F, Rao H B. Sens. Actuators B,? 2018,? 273: 1627-1634
3 WANG Xue, YANG Kun-Cheng, MAO Zhi-Yuan, HUANG Cheng-Zhi, WANG Jian. Chinese J. Anal. Chem.,? 2016,? 44(10): 1482-1486王 雪, 楊焜誠, 毛智遠, 黃承志, 王 健. 分析化學(xué), 2016,? 44(10): 1482-1486
4 Xiao Q Y, Gao H L, Yuan Q P, Lu C, Lin J M. J. Chromatogr. A,? 2013,? 1274: 145-150
5 Kuster A, Tea I, Sweeten S, Roze J C, Robins R J. Anal. Bioanal. Chem.,? 2008,? 390: 1403-1412
6 Alexander V I, Edward D V, Boris P L, Aslan A K. J. Chromatogr. B,? 2015,? 1004: 30-36
7 Xia L L, Zhao Y, Huang J X, Gu Y Q, Wang P. Sens. Actuators B,? 2018,? 270: 312-317
8 Cao F, Huang Y K, Wang F, Kwak D K, Dong Q C, Song D H, Zeng J, Lei Y. Anal. Chim. Acta,? 2018,? 1019: 103-110
9 Zhang Y,Jiang J J, Li M, Gao P F, Zhou Y, Zhang G M, Shuang S M, Dong C. Talanta,? 2016,? 161: 520-527
10 Huang J T, Yang X X, Zeng Q L, Wang J. Analyst,? 2013,? 138(18): 5296-5302
11 Xue Z H, Wang X F, Rao H H, Liu X H, Lu X Q. Anal. Biochem., ?2017,? 534: 1-9
12 Wang Y W, Tang S R, Yang H H, Song H B. Talanta,? 2016,? 146: 71-74
13 Chen S H, Chi M Q, Zhu Y, Gao M, Wang C, Lu X F. Appl. Surf. Sci.,? 2018,? 440: 237-244
14 Ray C, Dutta S, Sarkar S, Sahoo R, Roy A, Pal T. J. Mater. Chem. B,? 2014,? 2(36): 6097-6105
15 Lin X M, Gao G M, Zheng L Y, Chi Y W, Chen G N. Anal. Chem.,? 2014,? 86(2): 1223-1228
16 Su A M, Zhong Q M, Chen Y Y, Wang Y L. Anal. Chim. Acta,? 2018,? 1023: 115-120
17 Cheng C G, Shi Y N, Li M, Xing M, Wu Q L. Mater. Sci. Eng. C,? 2017,? 79: 473-480
18 Zhang Q Q, Chen B B, Zou H Y, Li Y F, Huang C Z. Biosens. Bioelectron.,? 2018,? 100: 148-154
19 Shi W B, Wang Q L, Long Y J, Cheng Z L, Chen S H, Zheng H Z, Huang Y M. Chem. Commun.,? 2011,? 47(23): 6695-6697
20 Lin L P, Song X H, Chen Y Y, Rong M C, Zhao T T, Wang Y R, Jiang Y Q, Chen X. Anal. Chim. Acta,? 2015,? 869: 89-95
21 Wang B, Liu F, Wu Y Y, Chen Y F, Weng B, Li C M. Sens. Actuators B,? 2018,? 255: 2601-2607
22 ZHONG Qing-Mei, HUANG Xin-Hong, QIN Qing-Min, SU An-Mei, CHEN Yu-Ye, LIU Xin-Yu, WANG Yi-Lin. Chinese J. Anal. Chem.,? 2018,? 46(7): 1062-1068
鐘青梅, 黃欣虹, 覃慶敏, 蘇安梅, 陳羽燁, 劉馨宇, 王益林. 分析化學(xué), 2018,? 46(7): 1062-1068
23 Dong Y Q, Wang R X, Li H, Shao J W, Chi Y W, Lin X M, Chen G N. Carbon,? 2012,? 50: 2810-2815
24 Dong Y Q, Chen C Q, Lin J P, Zhou N N, Chi Y W, Chen G N. Carbon,? 2013,? 56: 12-17
25 Su A M, Zhong Q M, Chen Y Y, Wang Y L. Anal. Chim. Acta,? 2018,? 1023: 115-120
26 Liu P P, Zhang C C, Liu X, Cui P. Appl. Surf. Sci.,? 2016,? 368: 122-128
27 Liu M, Zhao H M, Chen S. Yu H T, Quan X. ACS Nano,? 2012,? 3( 6) : 3142-3151
28 Mu C L, Lu H F, Bao J, Zhang Q L. Spectrochim. Acta A,? 2018,? 201: 61-66
29 Ni P J, Sun Y J, Dai H C, Jiang S, Lu W D, Wang Y L, Li Z, Li Z. Sens. Actuators B,? 2016,? 226: 104-109
30 Wang J, Fang X, Zhang Y H, Cui X Q, Zhao H, Li X J, Li Z X. Colloids Surf. A,? 2018,? 555: 565-571
31 Lin J, Ni P J, Sun Y J, Wang Y L, Wang L, Li Z. Sens. Actuators B,? 2018,? 255: 3472-3478
32 Wu S, Lan X Q, Huang F F, Luo Z Z, Ju H X, Meng C G, Duan C Y. Biosens. Bioelectron.,? 2012,? 32: 293-296