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    超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定牛奶中利巴韋林殘留量

    2018-11-30 05:29:48王紫竹鄒唯嘉
    中國乳業(yè) 2018年10期
    關(guān)鍵詞:乙酸銨工作液利巴韋

    文/王紫竹 周 鑫 鄒唯嘉

    (天津市乳品食品監(jiān)測中心)

    利巴韋林又稱病毒唑,為核苷類似物,獸醫(yī)臨床上常用于腺病毒、流感病毒、呼吸道合胞病毒等感染性疾病的防治,可用于奶牛傳染性鼻氣管炎、牛惡性卡他熱、牛潰瘍性乳頭炎、牛副流感等疾病的治療及預(yù)防。因其毒性及藥物濫用存在影響人類健康和生態(tài)平衡的潛在危害,2005年原農(nóng)業(yè)部第560號公告廢止了利巴韋林及其鹽、酯以及單復(fù)方制劑的獸藥用途,禁止銷售及在畜禽養(yǎng)殖過程中使用利巴韋林制劑或原料藥,在動物性食品中不得檢出。

    1 材料與方法

    1.1 儀器和設(shè)備

    超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(配ESI源,LC30A-8050A);電子分析天平(0.001 g);高速冷凍離心機(jī);超聲波儀;恒溫水浴鍋;渦旋振蕩器;pH計;氮吹儀;固相萃取裝置;PBA固相萃取柱(Cleanert PBA,100 mg,3 mL)。

    1.2 藥品和試劑

    標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)信息見表1。酸性磷酸酯酶(活力≥0.4 unit/mg),三氯乙酸,氨水,均為分析純;乙酸銨,乙腈,甲醇,甲酸,均為色譜純;實驗用水為超純水。

    1.3 溶液的配制

    1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液

    準(zhǔn)確稱取利巴韋林標(biāo)準(zhǔn)品約10 mg(精確至0.1 mg),置于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度,搖勻后得到約1 mg/mL的儲備液。用移液管準(zhǔn)確移取上述儲備液100 μL,置于100 mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度,搖勻后得到濃度約為1 μg/mL的工作液。

    準(zhǔn)確稱取內(nèi)標(biāo)利巴韋林-13C5約10 mg(精確至0.1 mg),置于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容至刻度,搖勻后得到約1 mg/mL的內(nèi)標(biāo)儲備液。用移液管準(zhǔn)確移取上述內(nèi)標(biāo)儲備液100 μL,置于100 mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度,搖勻后得到濃度約為1 μg/mL的內(nèi)標(biāo)工作液。

    利巴韋林標(biāo)準(zhǔn)儲備液與內(nèi)標(biāo)儲備液置于-18 ℃條件下保存,有效期6個月,標(biāo)準(zhǔn)工作液與內(nèi)標(biāo)工作液置于0~5 ℃條件下保存,有效期為2 周。

    表2 液相色譜梯度洗脫條件

    1.3.2 三氯乙酸溶液

    稱取20 g三氯乙酸,加入約950 mL水使其溶解,用氨水調(diào)節(jié)pH值至4.8±0.1,再用水定容至1 L,得到濃度為20 g/L的三氯乙酸溶液。

    1.3.3 酸性磷酸酯酶溶液

    準(zhǔn)確稱取酸性磷酸酯酶10 mg,置于100 mL容量瓶中,用水溶解并定容至刻度,搖勻后得到100 μg/mL的酸性磷酸酯酶解液,置于0~5 ℃條件下保存。

    1.3.4 乙酸銨緩沖溶液

    稱取18.12 g乙酸銨固體,加入約950 mL水使其溶解,用氨水調(diào)節(jié)pH值至8.5±0.1,再用水定容至1 L,得到濃度為0.25 mol/L的乙酸銨緩沖溶液。

    1.3.5 甲酸水溶液

    用移液槍吸取2 mL甲酸,加入500 mL水中,得到濃度約為100 mmol/L甲酸水溶液。

    1.4 試驗方法

    1.4.1 樣品前處理

    (1)提取

    稱取5 g(精確至0.01 g)牛奶樣品,置于50 mL離心管中,用移液槍加入100 μL內(nèi)標(biāo)工作液(濃度為1 μg/mL),渦旋混合30 s,加入10 mL三氯乙酸溶液和3 mL乙腈,渦旋混勻2 min,在超聲波儀中超聲5 min,于4 ℃條件下10 000 r/min下離心5 min,取上清液于25 mL容量瓶中,再加入5 mL三氯乙酸溶液重復(fù)提取一次,離心后合并上清液至容量瓶中,用三氯乙酸溶液定容至25 mL。

    (2)酶解

    用移液管準(zhǔn)確移取5 mL提取液,加入1 mL乙酸銨溶液,渦旋混勻30 s,再加入100 μL酸性磷酸酯酶溶液,加蓋后渦旋1 min,于37 ℃恒溫水浴中培養(yǎng)2 h。取出后冷卻至室溫。用氨水調(diào)pH值至8.5±0.1,于4 ℃條件下10 000 r/min離心5 min,取上清液備用。

    (3)凈化

    用3 mL乙腈、1 mL甲酸水溶液和3 mL乙酸銨緩沖溶液依次活化固相萃取柱;用移液管準(zhǔn)確移取(1)中提取的上清液5 mL上樣,自然流速過柱,待上清液流過固相萃取柱后,依次用3 mL乙酸銨緩沖溶液和3 mL水淋洗,真空抽干5 min;用2 mL甲酸水溶液洗脫至氮吹杯中,40 ℃條件下用氮氣吹干;用2 mL乙腈溶解殘渣,0.22 μmPTFE濾膜過濾至樣品瓶中,待液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定。

    1.4.2 儀器條件

    (1)色譜條件

    色譜柱為BEH HILIC柱(1.7μm,2.1 mm×100 mm);色譜柱柱溫為35 ℃,進(jìn)樣量為2 μL;流動相A為5 mmol/L乙酸銨溶液(含0.2%甲酸),流動相B為乙腈,流速為0.35 mL/min。梯度洗脫條件見表2。(2)質(zhì)譜條件

    離子源及電離方式為電噴霧離子源(ESI),正離子檢測模式;霧化氣為氮氣,流量3.0 L/min;干燥氣為空氣,流量為10 L/min;加熱氣為空氣,流量為10 L/min;碰撞氣為氬氣,壓力為270 KPa;接口溫度為300 ℃;脫溶劑管溫度為250 ℃;加熱塊溫度為400 ℃。其它條件見表3。

    表3 利巴韋林及內(nèi)標(biāo)物的定性、定量離子對及其它質(zhì)譜條件

    表4 相對離子豐度的允許偏差

    1.4.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線測定液的配制

    用移液管分別移取0.01、0.05、0.20、0.50、0.80、1.00 mL標(biāo)準(zhǔn)工作液于6 個10 mL容量瓶中,再向6 個容量瓶中分別加入0.2 mL內(nèi)標(biāo)工作液,用乙腈稀釋至刻度,配制6 個標(biāo)準(zhǔn)曲線測定液,濃度分別為1.00、5.00、20.00、50.00、80.00、100.00 ng/mL。

    1.4.4 定性分析

    在上述相同的試驗條件下,樣品中待測物質(zhì)與對應(yīng)濃度標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的保留時間偏差在±2.5%之內(nèi),且樣品色譜圖中待測物質(zhì)的定性離子相對離子豐度相對于相近濃度的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)符合表4要求,則可判定該樣品中存在利巴韋林。

    1.4.5 樣品添加回收率和精密度測定

    (1)空白樣品

    選取牛奶樣品,按照前處理方法及步驟進(jìn)行試驗,以確定本底中利巴韋林的含量低于檢出限,可作為空白試樣進(jìn)行樣品添加回收率的測定。

    (2)準(zhǔn)確度和精密度

    利巴韋林檢驗確定加標(biāo)水平為①1.00 μg/kg和②10.00 μg/kg,其中①為測定低限、②為線性范圍內(nèi)高濃度水平10 倍測定低限。根據(jù)前處理步驟中稱樣量、稀釋及定容步驟換算樣液濃度分別為①1.00 ng/mL和②10.0 ng/mL,利巴韋林實際樣液濃度分別為①0.96 ng/mL和②9.60 ng/mL。

    1.4.6 靈敏度測定

    取利巴韋林標(biāo)準(zhǔn)工作液適量,添加到空白牛奶樣品中,使牛奶中利巴韋林含量分別為0.20、0.50和1.00 μg/kg,按前處理步驟進(jìn)行試驗后,測定利巴韋林定量離子對的信噪比(S/N)及相應(yīng)添加濃度,以S/N≥3時的添加濃度為方法檢出限。

    2 試驗結(jié)果

    2.1 色譜圖

    空白牛奶樣品和牛奶添加樣品中利巴韋林和利巴韋林-13C5的定性及定量離子對色譜圖見圖1-a和1-b所示,牛奶添加樣品中利巴韋林和內(nèi)標(biāo)物峰型良好,與雜質(zhì)峰分離度較好,基質(zhì)干擾小。

    2.2 線性關(guān)系及范圍

    標(biāo)準(zhǔn)曲線線性范圍為1.00~100.00 ng/mL,以內(nèi)外標(biāo)濃度比值作為橫坐標(biāo),內(nèi)外標(biāo)響應(yīng)峰面積比值作為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性方程及r2。如圖2所示,r2為0.9971,線性關(guān)系良好。

    2.3 方法回收率及精密度

    空白牛奶添加利巴韋林的回收率及精密度測定結(jié)果見表4。在①和②的添加水平上,利巴韋林的回收率范圍在82.6%~115%,變異系數(shù)分別為3.45%和1.72%,結(jié)果符合《實驗室質(zhì)量控制規(guī)范 食品理化檢測》(GB/T 27404-2008)附錄F中關(guān)于檢測方法確認(rèn)的技術(shù)要求的規(guī)定。

    2.4 檢出限

    圖1 -a 空白牛奶樣品中利巴韋林和利巴韋林-13C5色譜圖

    圖1 -b 添加濃度為10 μg/kg牛奶樣品中利巴韋林和利巴韋林-13C5色譜圖

    圖2 利巴韋林標(biāo)準(zhǔn)曲線圖

    本方法試驗條件下,當(dāng)空白牛奶樣品中利巴韋林的濃度為0.50 μg/kg時,其色譜峰信噪比S/N≥3,此濃度即為檢出限。

    3 結(jié)論及討論

    3.1 試驗采用酶解方法將利巴韋林代謝物酶解成利巴韋林原藥形式,再用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法進(jìn)行儀器分析,從而可以準(zhǔn)確測定利巴韋林的殘留總量。PBA固相萃取柱對牛奶基質(zhì)中存在的雜質(zhì)去除效果較強,利巴韋林檢測靈敏度較高。

    3.2 利巴韋林的極性較大,在一般常用的反相C18色譜柱上保留作用不強,峰型較差,換為HILIC柱后,利巴韋林有了較好的保留,峰型有了極大改善。

    3.3 牛奶中基質(zhì)較復(fù)雜,采用液質(zhì)方法進(jìn)行測定時基質(zhì)干擾較大,僅用外標(biāo)法定量結(jié)果準(zhǔn)確度較低,采用利巴韋林同位素作為內(nèi)標(biāo)加入試驗過程,用內(nèi)標(biāo)法定量,可以很大程度消除牛奶基質(zhì)效應(yīng)的影響,提高了方法定量準(zhǔn)確度。

    3.4 通過試驗數(shù)據(jù)可以看出,本實試驗法有較好的準(zhǔn)確度和精密度,能夠滿足對牛奶中利巴韋林殘留分析的要求。C

    表5 利巴韋林不同濃度水平加標(biāo)回收率及精密度

    平行樣編號實測樣液濃度(ng/mL) 1.091 1.079 1.103 1.003 1.077 1.030 1.064 3.45添加水平 1 2 3 4 5 6 平均值 變異系數(shù)(%)①樣品濃度1.00 μg/kg(樣液濃度0.96 ng/mL) 回收率(%) 114 112 115 104 112 107 111實測樣液濃度(ng/mL) 8.284 8.132 7.952 8.204 8.145 7.931 54.208 1.72②樣品濃度10.00 μg/kg(樣液濃度9.60 ng/mL)回收率(%) 86.3 84.7 82.8 85.5 84.8 82.6 84.5

    [3] 鄭鋅,湯曉艷,周劍,等. 超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定雞血漿中利巴韋林及其主要代謝物[J]. 分析測試學(xué)報,2015,34(7):819-823.

    [4] 朱永林,邵德佳,蔣天梅,等. 高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定雞肝中利巴韋林及其代謝物殘留總量[J]. 中國獸藥雜志,2008,42(7):22-25.

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