唐 靜,胡 玲,劉 奉,李小山,趙梓亦,李國利
(重慶三峽醫(yī)藥高等專科學(xué)校 1.病原生物學(xué)與免疫學(xué)教研室; 2.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)部 病理學(xué)教研室;3.臨床醫(yī)學(xué)系, 重慶 404120; 4.成都中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院,四川 成都 641000)
腎缺血的灌注損傷發(fā)生機制復(fù)雜,與氧自由基增多、鈣離子濃度失衡和能量代謝障礙等密切相關(guān),也是導(dǎo)致急性腎衰竭的主要原因之一[1]。外科手術(shù)中腎缺血再灌注損傷是影響預(yù)后的主要原因之一。缺血再灌注可導(dǎo)致強烈的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(endoplasmic reticulum stress, ERS)并產(chǎn)生細胞凋亡[2],因此降低缺血再灌注損傷過程中的ERS非常重要。異氟醚是一種外科手術(shù)常用的修飾麻醉劑,對手術(shù)中產(chǎn)生的缺血再灌注損傷具有調(diào)節(jié)作用[3- 4,7]。本文研究了異氟醚對腎小管上皮細胞HK- 2低氧/復(fù)氧模型中ERS及其誘導(dǎo)的細胞凋亡的調(diào)控作用。
1.1.1 細胞:人腎小管上皮細胞系HK- 2(中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細胞資源中心)。
1.1.2 試劑 Trizol、實時熒光定量PCR預(yù)混液和SuperScript III RT-PCR試劑盒(Life Technology公司);DMEM完全培養(yǎng)基、0.25%胰蛋白酶、青鏈霉素和10%澳洲胎牛血清(Gibco公司);DNA序列和引物(上海生工生物技術(shù)公司合成);Annexin V/PI染色試劑盒(Sigma-Aldrich公司);Anti-GRP78、Anti-CHOP和anti-caspase- 12 (Abcam公司)。
1.2.1 細胞培養(yǎng)及分組處理:將細胞培養(yǎng)于10 cm培養(yǎng)皿中,DMEM完全培養(yǎng)基含有10%胎牛血清和100 U/mL青鏈霉素。細胞培養(yǎng)在5% CO2、飽和濕度、37 ℃的細胞培養(yǎng)箱內(nèi),每72 h更換培養(yǎng)基1次。當細胞匯合度達到80%~90%時傳代。
將匯合度50%的細胞置于經(jīng)95% N2-4.5% CO2-0.5% O2混合氣培養(yǎng)箱中放置4 h;加入2.56%異氟醚處理的細胞為異氟醚組;加入相同體積PBS處理的細胞為Mock組;常規(guī)條件培養(yǎng)的細胞為對照組。
1.2.2 LDH含量的測定:將不同時間點的培養(yǎng)上清液50 μL加入新的96孔細胞培養(yǎng)板中,再加入50 μL底物,室溫避光孵育30 min后,加入50 μL反應(yīng)終止液,混勻后室溫放置10 min,在490 nm下讀取吸光度值;然后檢測細胞總的LDH值。向原細胞培養(yǎng)孔中加入20 μL溶解酶,37 ℃孵育1 h后,每孔加入50 μL底物,室溫避光孵育30 min后,加入50 μL反應(yīng)終止液,混勻后室溫放置10 min,在490 nm下讀取吸光度值。計算方法為:上清液LDH分光光度計讀取數(shù)值除去總的LDH分光光度計讀取數(shù)值。
1.2.3 MTT法檢測細胞增殖:向培養(yǎng)于96孔細胞板中的細胞加入10 μL/孔MTT(125 mg/L),放置于細胞培養(yǎng)箱中37 ℃反應(yīng)2 h;去上清液,PBS沖洗3次并加入50 μL/孔二甲亞砜(DMSO),室溫避光孵育30 min,在570 nm下讀取吸光度值。
1.2.4 實時定量PCR檢測GRP78和CHOP mRNA:用Trizol提取目的細胞的總RNA,根據(jù)SuperScript Ⅲ RT-PCR試劑盒說明書操作,進行反轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR。PCR程序如下:95 ℃預(yù)變性10 min;95 ℃變性10 s,60 ℃退火和延伸1 min,循環(huán)40次。涉及的引物序列如下:GRP78,F(xiàn):5′-CATCACGCCGTCCTATGTC G-3′和R: 5′-CGTCAAAGACCGTGTTCTCG-3′;CHOP,F(xiàn): 5′-TCTTGACCCTGCTTCTCTGG-3′ 和R: 5′-GCTGT GCCACTTTCCTTTCA-3′;caspase- 12,F(xiàn):5′-CATCCAA CGGTGTTCTGGTC-3′和R: 5′-TTGCCTGCAATTTGA GCTGT-3′;β-actin,F(xiàn):5′-CATGTACGTTGCTATCC AGGC-3′和R:5′-CTCCTTAATGTCA CGCACGAT-3′。
1.2.5 Western blot檢測GRP78、CHOP和caspase- 12蛋白:目的細胞按1×106個細胞加入500 μL RIPA細胞裂解液的比例混合,并于液氮和37 ℃溫水浴反復(fù)凍融裂解3次。4 ℃,12 000×g離心10 min沉淀細胞碎片,收集上清液。常規(guī)方法制備8%~10% SDS-PAGE膠,120 V穩(wěn)定電壓電泳1.5 h分離蛋白;半干轉(zhuǎn)膜法(按恒流0.5 mA/cm2)進行轉(zhuǎn)印。將目的抗體按1∶1 000的比例稀釋,并室溫孵育2 h,用辣根過氧化物酶標記的相應(yīng)種屬的二抗孵育,ECL顯色,X線暗室曝光并顯影定影。
1.2.6 流式細胞儀檢測細胞凋亡:收集處理好的細胞,按照Annexin V-FITC/PI染色試劑盒說明書操作,并用流式細胞儀分析凋亡率。
低氧/復(fù)氧模型HK- 2細胞LDH釋放量較對照組增加,細胞增殖減少(P<0.05)。與mock組細胞相比,2.56 %異氟處理4和8 h的LDH降低,MTT升高(P<0.05)(圖1)。
低氧/復(fù)氧模型16HBE細胞中的凋亡率顯著高于未處理組細胞(P<0.05)。2.56%異氟醚處理4和8 h時使細胞凋亡率降低(P<0.05)(圖2,3)。
*P<0.05 compared with control group; △P<0.05 compared with Mock group圖1 異氟醚誘導(dǎo)的HK- 2細胞低氧/復(fù)氧模型LDH釋放量(A)和細胞增殖的變化(B)
圖2 異氟醚誘導(dǎo)的HK- 2細胞低氧/復(fù)氧模型凋亡的annexin V-FITC/PI熒光染色的影響Fig 2 Effect of isoflurane on hypoxia/reoxygenation induced apoptosis by annexin V-FITC/PI
*P<0.05 compared with mock group圖3 異氟醚誘導(dǎo)的HK- 2細胞對低氧/復(fù)氧誘導(dǎo)的凋亡率(%)的影響Fig 3 Effect of isoflurane on apoptosis induced by
與mock組比較,4和8 h異氟醚組細胞的GRP78及caspase- 12的mRNA和蛋白水平顯著升高(P<0.05),1 h異氟醚組變化不明顯(圖4)。各組中的CHOP的mRNA和蛋白水平無明顯變化。并且,4和8 h異氟醚組細胞的caspase- 3的剪切體比例降低。
*P<0.05 compared with 1 hour treated group; △P<0.01 compared with 1 hour treated group圖4 異氟醚誘導(dǎo)的HK- 2細胞低氧/復(fù)氧模型內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的標志蛋白GRP78,CHOP和caspase- 12的mRNA和蛋白水平變化Fig 4 Effect of isoflurane on GRP78, CHOP, caspase- 12 mRNA and protein levels in HK- 2 cell line induced by ER hypoxia/reoxygenation
手術(shù)造成的缺血再灌注損傷發(fā)生機制復(fù)雜。腎小管上皮細胞具有豐富的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)結(jié)構(gòu),在缺血再灌注過程中,細胞內(nèi)堆積大量氧自由基,引起Ca2+濃度失衡、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)功能障礙并激發(fā)ERS[5]。ERS對細胞起雙向調(diào)節(jié)作用。適度的ERS可以調(diào)節(jié)鈣離子濃度平衡、修復(fù)未折疊蛋白及回復(fù)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)正常分泌功能;而過度ERS則可通過誘導(dǎo)細胞凋亡,加重缺血再灌注損傷[6]。因此,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激的調(diào)控對缺血再灌注損傷的控制關(guān)系密切[7]。
本研究發(fā)現(xiàn),異氟醚對腎小管上皮細胞HK- 2的低氧/復(fù)氧模型具有保護作用。與未處理組相比,低氧/復(fù)氧模型HK- 2細胞凋亡率明顯增高,LDH增高,細胞增殖減少,說明低氧/復(fù)氧處理造成了細胞損傷及凋亡增加。異氟醚可以明顯減少LDH含量,加速細胞的增殖。提示異氟醚可以緩解低氧/復(fù)氧處理對HK- 2細胞的損傷。Annexin V/PI熒光雙標進一步確認了異氟醚的處理可以減緩低氧/復(fù)氧對HK- 2細胞的凋亡作用。RT-qPCR和半定量Western blot結(jié)果顯示,低氧/復(fù)氧處理促進了ERS,并誘導(dǎo)細胞凋亡。Caspase- 12的表達量增加進一步說明,低氧/復(fù)氧處理引起的細胞凋亡是通過ERS誘發(fā)的。異氟醚對低氧/復(fù)氧模型腎小管上皮細胞系的保護作用可能是通過調(diào)控ERS引起的細胞凋亡實現(xiàn)的。造模后短時間異氟醚對細胞凋亡無影響,而較長時間則明顯降低細胞凋亡,說明異氟醚對ERS的調(diào)控需要時間累積。而長時間異氟醚暴露并未明顯降低ERS,提示異氟醚的作用可能是直接抑制ERS引起的細胞凋亡通路。