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      CXCL13激活小膠質(zhì)細(xì)胞參與瑞芬太尼誘發(fā)疼痛過敏

      2018-07-26 06:26:46張熙王光杰張娟薛銳
      實用醫(yī)學(xué)雜志 2018年13期
      關(guān)鍵詞:趨化因子膠質(zhì)過敏

      張熙 王光杰 張娟 薛銳

      1湖北醫(yī)藥學(xué)院附屬人民醫(yī)院麻醉科(湖北十堰 442000);2湖北醫(yī)藥學(xué)院附屬太和醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科(湖北十堰 442000)

      阿片誘發(fā)的痛覺過敏(opioids?induced hyperal?gesia,OIH)是指輸注阿片類藥物引起的痛域降低。OIH不僅促進(jìn)痛覺感知,引起痛覺異常,甚至出現(xiàn)慢性疼痛癥狀[1]。阿片誘發(fā)痛覺過敏的發(fā)生速度與阿片類藥物特性密切相關(guān),藥物作用時間越短,耐受發(fā)生越迅速,瑞芬太尼是一種超短效的μ?受體激動劑,因其起效迅速、作用時間短。因此瑞芬太尼較其他阿片類藥物發(fā)生痛覺過敏更快,而這種耐受和痛覺過敏又呈劑量依賴性[2]。但瑞芬太尼誘發(fā)的痛覺過敏機制仍不清楚,因此了解其具體發(fā)生機制仍是臨床鎮(zhèn)痛用藥關(guān)注的難題。趨化因子CXC配體13(CXCL13)屬于CXC趨化因子家族,已經(jīng)被證明在神經(jīng)損傷后產(chǎn)生的快速而持久的觸覺和熱感覺異常中,通過上調(diào)脊髓束中的炎癥因子產(chǎn)生表達(dá)[3]。CXCL13在神經(jīng)系統(tǒng)中存在表達(dá),并通過激活神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞參與神經(jīng)病理性痛、炎性痛等慢性疼痛的形成與維持[4]。但CXCL13是否與瑞芬太尼誘發(fā)的痛覺過敏有關(guān)尚無定論,因此,本研究旨在觀察CXCL13在瑞芬太尼誘發(fā)的痛覺過敏中的表達(dá)情況,并進(jìn)一步探討其如何參與其痛覺過敏的過程。

      1 材料與方法

      1.1 動物分組及處理 選擇成年健康SD大鼠(SPF級)20只,體質(zhì)量200~250 g,雌雄不限,由湖北醫(yī)藥學(xué)院實驗動物中心提供。隨機分為4組,每組8只:切口痛組(C組),瑞芬太尼組(R組),NC?siRNA慢病毒組(NC組)和CXCL13?siRNA慢病毒組(CX組)。腹腔注射10%水合氯醛(350 mg/kg)麻醉后,參照Brenman法[5]建立疼痛模型。尾靜脈泵注I組:生理鹽水10 μg/(kg·min),持續(xù)1 h;R組:鹽酸瑞芬太尼注射液(宜昌仁福制藥公司)10 μg/(kg·min),持續(xù)1 h;NC組:鞘內(nèi)注射注射NC?siRNA慢病毒(上海吉凱基因化學(xué)技術(shù)有限公司)10 μL(108TU/mL)30 min后,尾靜脈泵注瑞芬太尼10 μg/(kg·min),持續(xù)1 h;CX組:鞘內(nèi)注射CXCL13?siRNA慢病毒(上海吉凱基因化學(xué)技術(shù)有限公司)10 μL(108TU/mL)30 min后,尾靜脈泵注瑞芬太尼10 μg/(kg·min),持續(xù)1 h。

      1.2 機械痛閾檢測 分別于造模前1 h,術(shù)后2、6、12、24 h時采用von FreyTM動態(tài)足底觸覺測量儀(UGO公司,意大利)測定大鼠機械縮足閾值(MWT)。大鼠置于金屬籠(10 cm×10 cm×15 cm),適應(yīng)環(huán)境20 min,處于靜息狀態(tài)時,開始測定,von Frey絲由下向上垂直刺激右側(cè)足底中部皮膚,設(shè)定20 s內(nèi)刺激逐漸由0升高為50 g,當(dāng)出現(xiàn)快速縮足反應(yīng)時,刺激自動停止,記錄壓力值,共測3次,間隔5 min,取其平均值作為大鼠機械縮足閾值(MWT)。

      1.3 免疫熒光雙標(biāo)檢測 痛閾測定結(jié)束后,麻醉下取L4~6脊髓組織常規(guī)固定,30%蔗糖脫水至沉底,冰凍連續(xù)切片(厚15 μm),加入封閉液,室溫孵育30 min,PBS漂洗后,同時加入CXCL13抗體(1∶500,beyotime公司,美國)和抗大鼠NeuN抗體(1∶1 000,Millipore公司,美國),孵育,洗滌,加熒光標(biāo)記二抗,室溫孵育,洗滌,用50%甘油封片。激光共聚焦熒光顯微鏡(Zeiss,德國)觀察CXCL13在神經(jīng)元上的表達(dá)和小膠質(zhì)細(xì)胞活化情況。

      1.4 Western blot檢測 CXCL13和 Iba?1蛋白表達(dá) 取L4~6脊髓,加組織裂解液,經(jīng)冰浴勻漿后抽提總蛋白,用BCA法進(jìn)行蛋白濃度定量,取上樣蛋白 50 μg(20 μL),經(jīng) 10%SDS?PAGE 凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,室溫封閉,加入β?actin(1∶3 000,Chemicon公司,美國)、CXCL13抗體(1∶1 000,beyotime公司,美國)和 Iba?1抗體(1∶1 000,beyotime公司,美國),過夜,TBST洗膜,加二抗(1:5 000,北京中杉金橋公司),室溫孵育,洗膜,曝光。分光密度比值反映CXCL13和Iba?1的蛋白表達(dá)。

      1.5 RT?PCR法檢測CXCL13和Iba?1的mRNA表達(dá) 從組織樣本提取總mRNA。采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將mRNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,遵循PCR引物設(shè)計原則,以GAPDH作為內(nèi)參,引物由上海生物工程公司合成,序列見表1。擴增條件:94℃預(yù)變性5 min,94 ℃ 30 s,54 ℃30 s,72 ℃ 20 s,共45個循環(huán),72℃延伸10 min。計算CXCL13和Iba?1與內(nèi)參照GAPDH的比值作為目的基因的相對表達(dá)量。

      表1 CXCL13、Iba?1和GAPDH引物序列Tab.1 Sequences of CXCL13、Iba?1 and GAPDH primers

      1.6 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 22.0統(tǒng)計學(xué)軟件進(jìn)行分析,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      2 結(jié)果

      2.1 MWT比較 四組大鼠術(shù)前1 h MWT值比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05);與I組比較,R組、NC組和CX組術(shù)后2 h MWT值隨時間增加顯著下降(P<0.05),至術(shù)后24 h時降至最低;與R組、NC組比較,CX組術(shù)后6 h MWT值顯著升高(P<0.05),并持續(xù)至術(shù)后24 h;R組與NC組MWT值在各對應(yīng)時間點差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表2。

      表2 各組大鼠術(shù)后不同時點MWT的比較Tab.2 The comparison of MWT value in various groups of rats(n=5) x ± s,g

      2.2 免疫熒光雙標(biāo)表達(dá)情況 免疫熒光顯示:疼痛發(fā)生時CXCL13在神經(jīng)元中出現(xiàn)表達(dá),瑞芬誘發(fā)痛覺過敏模型大鼠(R組)脊髓中CXCL13表達(dá)升高;CXCL13?siRNA慢病毒脊髓注射后(CX組)CX?CL13的表達(dá)明顯減少;R組脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞明顯活化,CX組其活化則明顯減少。見圖1。

      圖1 CXCL13在各組大鼠脊髓中的表達(dá)分布Fig.1 The expression distribution of CXCL13 in the spinal cord of various groups of rats

      2.3 CXCL13和Iba?1蛋白表達(dá)及mRNA表達(dá)情況 與I組比較,R組、NC組的CXCL13和Iba?1蛋白表達(dá)及mRNA表達(dá)水平明顯上調(diào)(P<0.05);與R組、NC組比較,CX組的CXCL13和Iba?1蛋白表達(dá)及mRNA表達(dá)水平顯著下調(diào)(P<0.05)。見圖2、表3。

      圖2 各組大鼠脊髓CXCL13、Iba?1蛋白表達(dá)的比較Fig.2 The comparison of expression of CXCL13 and Iba?1 protein in the spinal cord of various groups of rats(n=5,x ± s)

      表3 各組大鼠脊髓CXCL13、Iba?1的mRNA表達(dá)的比較Tab.3 Comparison of mRNA expression of CXCL13 and iba?1 in the spinal cord of various groups of rats(n=5) ± s

      表3 各組大鼠脊髓CXCL13、Iba?1的mRNA表達(dá)的比較Tab.3 Comparison of mRNA expression of CXCL13 and iba?1 in the spinal cord of various groups of rats(n=5) ± s

      注:與I組比較,aP <0.05;與R組、NC組比較,bP<0.05

      組別I組R組NC組CX組F值P值CXCL13 1.20±0.20 1.70±0.16a 1.72±0.22a 0.36±0.11 64.955 0.000 Iba?1 1.54±0.11 2.54±0.18 2.58±0.26 2.00±0.16 35.300 0.000

      3 討論

      圍術(shù)期使用阿片藥物可以加重術(shù)后痛覺過敏,約有20%的患者術(shù)后劇痛難以控制,導(dǎo)致術(shù)后并發(fā)癥和死亡率的增加,部分患者將發(fā)展為術(shù)后慢性病理性疼痛,從而嚴(yán)重影響患者日后的生存質(zhì)量[6]。

      本實驗中注射瑞芬太尼后出現(xiàn)疼痛靈敏性增高,持續(xù)泵注瑞芬太尼后2 h出現(xiàn)疼痛閾值降低,于24 h達(dá)到高峰,這與臨床上瑞芬太尼誘發(fā)痛覺過敏始于麻醉蘇醒后2 h,并于24~48 h達(dá)到高峰的研究基本一致[7]。

      神經(jīng)炎癥反應(yīng)的主要機制是炎癥介質(zhì),包括促炎細(xì)胞因子和趨化因子,增強了外周神經(jīng)系統(tǒng)和中樞神經(jīng)系統(tǒng)不同區(qū)域的痛覺信號[8]。越來越多的研究發(fā)現(xiàn)脊髓趨化因子在神經(jīng)損傷后慢性疼痛進(jìn)展中的作用[9-10]。CXCL13在裸鼠脊髓神經(jīng)損傷后表達(dá)增高[11];并且CXCL13已經(jīng)被證實涉及骨癌痛以及嗎啡的鎮(zhèn)痛耐受機制[12]。本研究發(fā)現(xiàn)切口痛組大鼠脊髓中CXCL13產(chǎn)生表達(dá),并在瑞芬太尼誘導(dǎo)疼痛過敏組的表達(dá)被上調(diào);BAGAEVA等[13]的研究也表明,CXCL13在健康的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中無表達(dá),但在病理條件下的腦和脊髓中表達(dá)升高。在鞘內(nèi)注射CXCL13?siRNA慢病毒后大鼠的機械痛域值顯著增高,大鼠對疼痛耐受程度增強。這些結(jié)果表明CXCL13可能參與了瑞芬太尼誘導(dǎo)痛覺過敏。

      阿片類藥物嗎啡引起的鎮(zhèn)痛耐受和痛覺過敏中也發(fā)現(xiàn)了脊髓膠質(zhì)細(xì)胞的激活[14]。本研究在瑞芬太尼誘導(dǎo)疼痛過敏模型中CXCL13在脊髓膠質(zhì)細(xì)胞中表達(dá)較切口痛模型組增多,而在CXCL13?siRNA組表達(dá)減少。這提示CXCL13可能通過激活脊髓膠質(zhì)細(xì)胞參與瑞芬太尼誘導(dǎo)的痛覺過敏。

      為了進(jìn)一步證實脊髓膠質(zhì)細(xì)胞的激活是否參與了瑞芬太尼誘導(dǎo)的痛覺過敏,本研究檢測了小膠質(zhì)細(xì)胞特異性標(biāo)記物Iba?1的表達(dá),發(fā)現(xiàn)在瑞芬太尼誘導(dǎo)的痛覺過敏大鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞特異性標(biāo)記物Iba?1表達(dá)較切口痛模型組增高,但在鞘內(nèi)注射CXCL13?siRNA慢病毒后Iba?1表達(dá)顯著降低,表明CXCLl3的表達(dá)和小膠質(zhì)細(xì)胞的活化具有同步性,這證實了CXCL13對小膠質(zhì)細(xì)胞的活化是調(diào)節(jié)瑞芬太尼誘導(dǎo)痛覺過敏的重要環(huán)節(jié)。其作用機制可能是瑞芬太尼誘發(fā)疼痛過敏過程中神經(jīng)元通過免疫反應(yīng)調(diào)控小膠質(zhì)細(xì)胞的活性,小膠質(zhì)細(xì)胞釋放的趨化因子又進(jìn)一步激活小膠質(zhì)細(xì)胞,使突觸后脊髓背角痛覺傳遞神經(jīng)元的敏感性和反應(yīng)性增強,引起中樞敏化,導(dǎo)致慢性疼痛。

      綜上所述,CXCL13可能通過小膠質(zhì)細(xì)胞的激活參與了瑞芬太尼誘發(fā)痛覺過敏,抑制CXCL13能夠有效抑制瑞芬太尼誘導(dǎo)痛覺過敏的發(fā)生。因此,CXCL13可能成為治療瑞芬太尼誘導(dǎo)痛覺過敏的有效靶點。

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