鄧雪萍,楊 博
(1.清遠(yuǎn)職業(yè)技術(shù)學(xué)院食品藥品學(xué)院,廣東 清遠(yuǎn) 511510;2.華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510006)
在健康植物組織內(nèi)部通常生存著一些微生物,但不會(huì)導(dǎo)致宿主植物有明顯的感染癥狀,稱為植物內(nèi)生菌[1]。有研究報(bào)道,植物的根、莖、葉、花、果實(shí)和種子經(jīng)過表面消毒后,均能分離到內(nèi)生菌。植物內(nèi)生菌能產(chǎn)生種類多樣的活性成分,經(jīng)證實(shí),這些活性成分大多為抗腫瘤活性類[2-3]、抗菌類活性類[4-5]、抗糖尿病物質(zhì)類[2]、活性酶類[6-7]、抗氧化活性類[8]、殺蟲活性類[9-10]、促植物生長(zhǎng)類[11]等。因此,內(nèi)生菌在生物防治、醫(yī)藥衛(wèi)生等領(lǐng)域的應(yīng)用潛力非常大,國(guó)內(nèi)外對(duì)內(nèi)生菌的相關(guān)研究也越來越多[10]。
小葉榕(Ficus microcarpa L.f.)是常綠小喬木,樹冠傘形或圓形,葉色深綠,入藥主要用其葉。小葉榕的葉片含有多種藥用成份,如黃酮、三萜類、齊墩果酸、脂肪族化合物和甾體化合物等,經(jīng)證實(shí),小葉榕水提取物和醇提取物有止咳平喘作用,對(duì)治療心血管疾病、抗炎、抑菌等方面都有顯著效果[12]。目前,還沒查詢到國(guó)內(nèi)外對(duì)小葉榕內(nèi)生菌的相關(guān)研究資料。本試驗(yàn)從清遠(yuǎn)職業(yè)技術(shù)學(xué)院校內(nèi)種植的小葉榕中分離純化內(nèi)生菌,并篩選抗菌活性菌株,鑒定到菌種,為尋找天然抗菌物質(zhì)提供有用資源。
植物樣本:選取清遠(yuǎn)職業(yè)技術(shù)學(xué)院校內(nèi)種植的小葉榕的不同植株,采集健康的莖和葉片。
培養(yǎng)基:營(yíng)養(yǎng)瓊脂(NA),營(yíng)養(yǎng)肉湯(NB),高氏一號(hào)培養(yǎng)基,馬鈴薯葡萄糖(PDA)培養(yǎng)基,發(fā)酵培養(yǎng)基(1%葡萄糖、2%酵母粉、0.3% 磷酸氫二鉀、0.05%氯化鈉,pH 7.0)。
篩選指示菌:金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilus)、銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)、大腸埃希菌(Escherichia coli)、白色念珠菌(Candida albicans)、黑曲霉(Aspergillus niger),均由清遠(yuǎn)職業(yè)技術(shù)學(xué)院應(yīng)用微生物研究所提供。
1.2.1 小葉榕內(nèi)生菌的分離純化 用無菌剪刀剪取植株頂端健康的莖段和嫩葉,用干凈的保鮮袋裝好,立即進(jìn)行下述處理(如不能立即處理,則將樣本置于4℃冰箱中1周內(nèi)處理):莖段和葉片均采用75%酒精-0.1%升汞法表面消毒,印跡法和最終洗滌水法相結(jié)合檢驗(yàn)消毒效果。分離內(nèi)生菌時(shí),莖段采用組織塊法,葉片采用組織勻漿法[13],具體操作見圖1~圖3,所有操作均為無菌操作。對(duì)照平板7 d內(nèi)有菌生長(zhǎng)或分離平板在7 d內(nèi)無菌生長(zhǎng),均判定表面消毒無效;對(duì)照平板7 d內(nèi)無菌生長(zhǎng)且分離平板在7 d內(nèi)有菌生長(zhǎng),則判定表面消毒有效。逐日觀察對(duì)照平板和分離平板,一旦發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)基中有菌長(zhǎng)出,及時(shí)分離純化到對(duì)應(yīng)培養(yǎng)基,28(±1)℃(內(nèi)生真菌)或36(±1)℃(內(nèi)生細(xì)菌)培養(yǎng)3~7 d。重復(fù)以上步驟,直至分離到純培養(yǎng)物。
圖1 莖段內(nèi)生菌分離步驟
圖2 葉片內(nèi)生菌分離步驟
圖3 對(duì)照平板制備流程
1.2.2 抗菌活性內(nèi)生菌的篩選 發(fā)酵濾液的制備:內(nèi)生菌解凍復(fù)蘇后,取5環(huán)到5 mL無菌生理鹽水制備菌懸液,按1%的接種量接入發(fā)酵培養(yǎng)基,在34(±1)℃、160 r/min搖床中培養(yǎng)72 h。發(fā)酵液8 000 r/min離心10 min,上清液用0.45 μm的無菌微孔濾膜過濾除菌后得發(fā)酵濾液,用作抑菌試驗(yàn)[13-15],3次重復(fù)(本試驗(yàn)只對(duì)分離得到的兩株內(nèi)生細(xì)菌進(jìn)行抗菌活性篩選)。
杯碟法檢測(cè)發(fā)酵濾液抗細(xì)菌、抗酵母菌活性:將指示菌金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、銅綠假單胞菌、大腸埃希菌接種于NA平板,36(±1)℃培養(yǎng)24 h;白色念珠菌接種于PDA平板,28(±1)℃培養(yǎng)48 h。選取單菌落混懸于滅菌生理鹽水,使指示菌液最終濁度與0.5號(hào)麥?zhǔn)蠘?biāo)準(zhǔn)比濁管相同,此時(shí)菌懸液中菌數(shù)大概為1.5×108CFU/mL[13,16]。在平板上均勻涂布指示菌液,5 min后用無菌鑷子夾取無菌牛津杯放入平板上,每塊平板可放3~4個(gè)牛津杯,牛津杯之間的距離相等。牛津杯內(nèi)加入200 μL發(fā)酵濾液,蓋上皿蓋,用無菌生理鹽水做對(duì)照。以上均在28(±1)℃暗處培養(yǎng)48 h,培養(yǎng)完畢,取出牛津杯,測(cè)量抑菌圈直徑。
菌落生長(zhǎng)速率法檢測(cè)發(fā)酵濾液抗絲狀真菌活性:黑曲霉為指示菌,將1 mL發(fā)酵濾液加入到無菌培養(yǎng)皿中,倒入9 mL已冷卻至40℃左右的PDA培養(yǎng)基,充分搖勻,冷卻后,將直徑6 mm、28(±1)℃培養(yǎng)48 h的黑曲霉菌塊接種于該平板中央,蓋上皿蓋,以不加發(fā)酵濾液的10 mL PDA培養(yǎng)基作為對(duì)照,試驗(yàn)平板和對(duì)照平板均在28(±1)℃暗處培養(yǎng)3~5 d,每天用游標(biāo)卡尺測(cè)量菌落直徑,計(jì)算內(nèi)生菌發(fā)酵濾液對(duì)黑曲霉菌絲生長(zhǎng)的抑制率(%)[17-18]。
1.2.3 抗菌活性內(nèi)生菌的鑒定 培養(yǎng)特征、菌體形態(tài)觀察及生理生化特性試驗(yàn):本試驗(yàn)僅對(duì)分離得到的抗菌活性內(nèi)生細(xì)菌QYPT-B01進(jìn)行鑒定。將內(nèi)生菌株接種到NA斜面、NA平板、NB肉湯,34(±1)℃培養(yǎng)2~5 d,觀察內(nèi)生菌的培養(yǎng)特征,并進(jìn)行革蘭氏染色、芽孢染色和生化反應(yīng),按《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[19]中的方法進(jìn)行操作和鑒定:抑菌圈直徑0~5 mm 表示無抑制作用,6~15 mm 表示弱抑制作用,>15 mm 表示強(qiáng)抑制作用。
16S rDNA基因序列測(cè)定:將內(nèi)生細(xì)菌菌株接種到營(yíng)養(yǎng)肉湯,34(±1)℃下160 r/min培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期后,12 000 r/min離心5 min,在菌體沉淀中加入50 mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)800 μL和32 μL溶菌酶,使溶菌酶最終濃度為2~4 mg/mL,振蕩均勻;37(±1)℃保溫30~60 min至菌液呈牛乳狀;加入65 μL 25%SDS,顛倒混勻,50~60℃水浴10 min至溶液完全清亮;加入200~400 μL氯仿-異戊醇(24∶1)溶液,充分振蕩混勻,冰上放置10 min;12 000 r/min條件下離心10 min后,取上清液;加入0.7~1倍體積異丙醇,顛倒混勻,將白色絮狀沉淀挑出至70%乙醇中洗滌兩次,吹干,溶于適量的超純水中,振蕩溶解,置于-20℃冰箱中。按上述方法提取基因組DNA后,以其為模板,設(shè)計(jì)引物為 P16sF1:5′-AGAGTTTGATCCTGGC TCAGAACGAACGCT-3′;P16sB1:5′-TACGG CTACCTTGTTACGACTCACCCC-3′。PCR 的程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s;48℃退火30 s;72℃延伸1.5 min;30個(gè)循環(huán)后72℃延伸10 min,4℃保溫。PCR產(chǎn)物以1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),切割目標(biāo)條帶,使用Roche Applied Science試劑盒純化電泳產(chǎn)物。PCR反應(yīng)擴(kuò)增出的16S rDNA片段經(jīng)純化后,委托上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)公司測(cè)序。利用NCBI網(wǎng)站中的Blast工具( http://www.ncbi.nlm.nih.gov),將QYPT-B01菌株的16S rDNA序列與Genbank中已知細(xì)菌的16S rDNA序列進(jìn)行比較,尋找與目的基因序列同源性最高的己知分類地位的菌種,并得到同源性相似百分比。Matsulci[20]研究認(rèn)為,凡是16S rDNA可變區(qū)序列同源性大于97.5%便可認(rèn)為是同一個(gè)種,所以本試驗(yàn)以同源性大于97.5%為菌種的鑒定標(biāo)準(zhǔn),進(jìn)一步利用MGTA7.0.26軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,確定該菌的分類地位。
從小葉榕植物樣本中分離得到7株絲狀真菌和2株細(xì)菌。將分離得到的9株內(nèi)生菌進(jìn)行體外培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)有一株絲狀真菌不能生長(zhǎng)(表1)。
表1 小葉榕內(nèi)生菌的分離純化結(jié)果
分離得到的一株小葉榕內(nèi)生細(xì)菌(命名為QYPT-B01)發(fā)酵濾液對(duì)革蘭氏陰性菌銅綠假單胞菌和大腸埃希菌有較強(qiáng)的抑制作用(圖4,封三;表2),其中對(duì)銅綠假單胞菌的抑菌圈直徑達(dá)23.28(±0.286)mm,對(duì)革蘭氏陽性菌金黃色葡萄球菌有較弱的抑制作用,而對(duì)枯草芽孢桿菌沒有抑制作用。QYPT-B01菌株發(fā)酵濾液對(duì)白色念珠菌沒有抑制作用,對(duì)黑曲霉的生長(zhǎng)有很強(qiáng)的抑制作用(圖5,封三;表3),培養(yǎng)3 d后該菌株發(fā)酵濾液對(duì)黑曲霉菌絲生長(zhǎng)的抑制率達(dá)77.25(±0.212)%,培養(yǎng)5 d后抑菌率達(dá)82.39(±0.140)%。在培養(yǎng)過程中,對(duì)照平板黑曲霉菌落厚、菌絲多且強(qiáng)壯、形成大量黑色孢子,而試驗(yàn)平板菌落薄、菌絲少且纖細(xì)、沒有孢子形成,培養(yǎng)4 d后菌落大小不再有變化。試驗(yàn)分離到的另一株內(nèi)生細(xì)菌對(duì)5種指示菌均無抑制作用。
表2 QYPT-B01菌株發(fā)酵濾液對(duì)4種指示菌的抑菌效果
表3 QYPT-B01菌株發(fā)酵濾液對(duì)黑曲霉菌絲生長(zhǎng)的抑制效果
2.3.1 培養(yǎng)特征、菌體形態(tài)觀察及生理生化特性試驗(yàn)結(jié)果 QYPT-B01菌株在34(±1)℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3 d后,在NA斜面上其菌苔呈灰白色,邊緣不規(guī)則,向四周擴(kuò)展,表面有皺褶、干燥、不透明;在NA平板上其菌落灰白色,較大,扁平,邊緣不規(guī)則,菌落向四周擴(kuò)展明顯,呈樹根狀,表面有皺褶、干燥、不透明;在NB肉湯液面形成一層灰白色的菌膜,培養(yǎng)液仍澄清。革蘭氏染色呈陽性,顯微鏡下觀察呈直桿狀,芽孢近中生,孢子囊不膨大。菌株的主要生理生化特征見表4。結(jié)合培養(yǎng)特征、形態(tài)觀察和生理生化特性,初步鑒定QYPT-B01菌株為芽孢桿菌屬。
2.3.2 16S rDNA測(cè)序結(jié)果 QYPT0-B1菌株的16S rDNA經(jīng)PCR擴(kuò)增,用1%瓊脂糖凝膠電泳對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物分析,結(jié)果見圖6。從圖6可以看出,QYPT-B01菌株的16S rDNA擴(kuò)增片斷長(zhǎng)約1.5 kb,細(xì)菌16S rDNA的長(zhǎng)度一般為1.550(±0.200)kp。將PCR產(chǎn)物測(cè)序,得到全長(zhǎng)為1.426 kp的16S rDNA序列。該序列與GenBank中的細(xì)菌16S rDNA序列比較,獲得同源序列為芽孢桿菌屬(Bacillus)的16S rDNA序列,其相似性達(dá)到98%。QYPT-B01菌株的16S rDNA序列與66株枯草芽孢桿菌16S rDNA序列的相似性也達(dá)98%(表5)?;赒YPT-B01菌株和芽孢桿菌屬的10個(gè)模式菌株的16S rDNA序列,利用MEGA7.0.26 軟件中的Neighbor-Joining方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,1 000次隨機(jī)抽樣,計(jì)算自引導(dǎo)值(Bootstrap)以評(píng)估系統(tǒng)進(jìn)化樹的置信度。從建立的系統(tǒng)發(fā)育樹(圖7)可以看出,QYPTB01和枯草芽孢桿菌的進(jìn)化距離最靠近。結(jié)合培養(yǎng)特征、形態(tài)觀察和生理生化特性,最終鑒定內(nèi)生細(xì)菌QYPT-B01為枯草芽孢桿菌。
表4 內(nèi)生細(xì)菌QYPT-B01菌株與枯草芽孢桿菌主要生理生化特征比較
圖6 QYPT-B01菌株16S rDNA的PCR擴(kuò)增結(jié)果
從小葉榕植物樣本中分離得到7株絲狀真菌和2株細(xì)菌,將分離得到的9株內(nèi)生菌進(jìn)行體外培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)有一株絲狀真菌不能生長(zhǎng)。可能是由于某些內(nèi)生菌的生長(zhǎng)需要依賴宿主植物提供的環(huán)境條件,所以在普通培養(yǎng)基上難以生長(zhǎng),需進(jìn)一步研究適合其生長(zhǎng)的植物體外培養(yǎng)條件。
對(duì)分離得到的兩株內(nèi)生細(xì)菌進(jìn)行初篩,發(fā)現(xiàn)QYPT-B01菌株發(fā)酵培養(yǎng)72 h,其發(fā)酵濾液對(duì)銅綠假單胞菌和大腸埃希菌有較強(qiáng)的抑制作用,抑菌試驗(yàn)平板培養(yǎng)48 h,對(duì)銅綠假單胞菌的抑菌圈直徑達(dá)23.28(±0.286)mm,對(duì)金黃色葡萄球菌的抑制作用較弱。QYPT-B01菌株發(fā)酵濾液對(duì)黑曲霉菌絲的生長(zhǎng)有很強(qiáng)的抑制作用,試驗(yàn)平板培養(yǎng)5 d后抑菌率達(dá)82.39(±0.140)%。綜上所述,小葉榕QYPT-B01菌株能產(chǎn)生主要針對(duì)革蘭氏陰性菌和絲狀真菌的抗菌活性物質(zhì),具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。對(duì)抗菌能力較強(qiáng)的內(nèi)生細(xì)菌QYPT-B01菌株進(jìn)行了培養(yǎng)特征和菌體形態(tài)觀察、生理生化特性試驗(yàn)、16S rDNA基因序列測(cè)定和系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建,最終鑒定該菌株為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)。
表5 QYPT-B01菌株與6株枯草芽孢桿菌的16S rRNA基因同源性比較
圖7 QYPT-B01菌株在Bacillus屬中的系統(tǒng)發(fā)育地位
小葉榕由于易生長(zhǎng),遮陰效果好,所以分布十分廣泛,也是街道、公園、綠地、公路、企事業(yè)單位常用的園林景觀植物。但是受氣候、栽培因素等影響,小葉榕極易發(fā)生病蟲害,如槐尺蛾、刺蛾、灰白蠶蛾、榕木虱、榕管薊馬、葉斑病、煤污病、炭疽病等[21]。傳統(tǒng)的治療方法有合理密植、科學(xué)修剪、化學(xué)藥劑噴注和生物防治等方法,目前主要是用化學(xué)藥劑噴霧法[22]。從保護(hù)生態(tài)環(huán)境和可持續(xù)發(fā)展的角度看,生物防治是最好的防治方法,對(duì)人、畜、植物均安全,主要包括保護(hù)有益天敵和使用生物農(nóng)藥兩種措施。小葉榕內(nèi)生菌QYPT-B01是枯草芽孢桿菌,具有防治植物病害的作用,國(guó)內(nèi)外已經(jīng)成功研制出一批枯草芽孢桿菌菌劑[23-24]。國(guó)內(nèi)已開發(fā)并投入生產(chǎn)的枯草芽孢桿菌商品制劑有麥豐寧、百抗、紋曲寧、依天得、亞寶等。QYPT-B01內(nèi)生菌能產(chǎn)生抑菌活性物質(zhì),今后可進(jìn)一步研究該活性代謝產(chǎn)物對(duì)植物病原菌的拮抗作用,以開發(fā)具生防作用的微生物菌劑。植物與動(dòng)物和人類一樣,均屬于真核系統(tǒng),而內(nèi)生菌能寄生在植物體內(nèi),說明內(nèi)生菌產(chǎn)生的活性物質(zhì)毒性較低或無毒,否則宿主組織會(huì)受損傷甚至死亡,可見,植物本身已對(duì)活性成分進(jìn)行了初篩,利用QYPT-B01內(nèi)生菌作為生防菌劑的來源優(yōu)勢(shì)明顯,具有良好的應(yīng)用前景。
綜上可知,今后可進(jìn)一步研究QYPT-B01菌株發(fā)酵液中活性物質(zhì)的組分及其對(duì)植物病原菌的拮抗作用,以進(jìn)一步開發(fā)生物防治菌劑。
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