侯巧芝,吳建麗,張爽爽
(黃河科技學(xué)院 醫(yī)學(xué)院,鄭州 450063)
原花青素(Procyanidins,簡(jiǎn)稱(chēng)PC)是一類(lèi)黃烷醇單體及其聚合體形成的多酚類(lèi)物質(zhì),具有抗氧化、清除自由基等多種生理活性[1]。作為食品添加劑具有防腐、抗氧化等多重功效。甘蔗是我國(guó)制糖工業(yè)的主要原料之一,作為副產(chǎn)物的甘蔗皮含有大量的天然色素、蛋白質(zhì)和纖維等物質(zhì),若能有效地開(kāi)發(fā)利用能大大提高農(nóng)產(chǎn)品的附加值[2],同時(shí)有利于資源的循環(huán)利用。查閱文獻(xiàn)發(fā)現(xiàn)對(duì)甘蔗皮中原花青素的提取工藝及性質(zhì)的研究鮮有報(bào)道[3]。本研究利用超聲輔助通過(guò)單因素考察和正交試驗(yàn)確定甘蔗皮的原花青素提取的最佳工藝,并考察原花青素粗提液的總抗氧化性能。
甘蔗皮:鄭州市農(nóng)貿(mào)市場(chǎng)購(gòu)買(mǎi)。
TU-1810紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限公司;XFB-200粉碎機(jī) 吉首市中誠(chéng)制藥機(jī)械廠;7230G可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海永光精密儀器有限公司;干燥箱、藥典篩、分析天平、托盤(pán)天平、超聲波清洗器、恒溫水浴鍋。
無(wú)水乙醇、濃鹽酸、香草醛粉末、丙酮、甲醇、原花青素標(biāo)準(zhǔn)品:以上試劑均為AR級(jí),購(gòu)于上海阿拉丁試劑網(wǎng)。
1.2.1 甘蔗皮原花青素主要提取流程
甘蔗皮清洗→烘干→粉碎→過(guò)篩→提取→粗濾液→測(cè)其吸光度。
1.2.2 溶劑的選擇
取1 g甘蔗皮粉末9份于9支錐形瓶中,分別加入純的甲醇、乙醇和丙酮10 mL各3份于錐形瓶中,再各自加入10 mL蒸餾水,在溫度50 ℃,浸泡時(shí)間30 min和超聲時(shí)間30 min后抽濾,各自加入相同量的香草醛-硫酸顯色劑于532 nm處測(cè)吸光度。結(jié)果發(fā)現(xiàn)丙酮溶解性最好,乙醇次之,但考慮綠色化試驗(yàn)及實(shí)際的應(yīng)用,本試驗(yàn)選用乙醇作為溶劑。
1.2.3 波長(zhǎng)的確定
取1 g甘蔗皮粉末于錐形瓶中,加入60%乙醇,超聲30 min,水浴鍋50 ℃加熱20 min后,抽濾,加入顯色劑在400~800 nm進(jìn)行波長(zhǎng)掃描,在532 nm處有最大吸收,故本試驗(yàn)甘蔗皮中提取原花青素波長(zhǎng)定為532 nm。
1.2.4 原花青素標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制
精密稱(chēng)取原花青素標(biāo)準(zhǔn)品300 mg于50 mL容量瓶中用蒸餾水定容,超聲30 min后抽濾,再分別量取0,1.0,3.0,5.0,7.0,9.0 mL于10 mL容量瓶中用蒸餾水定容,加入顯色劑搖勻,在532 nm處測(cè)吸光度A,得到的線(xiàn)性回歸方程為 y=0.17742x+0.00293,R=0.9992,在濃度0.4~3.2 mg/mL范圍內(nèi)線(xiàn)性關(guān)系良好。
1.2.5 甘蔗皮中原花青素提取率的計(jì)算
提取率=C×V×n/m。
式中:C為根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)得出不同吸光度A所對(duì)應(yīng)的原花青素的濃度,mg/mL;V為測(cè)定提取液的原始體積,mL;n為稀釋的倍數(shù);m為甘蔗皮粉末的質(zhì)量,g。
1.3.1 甘蔗皮中原花青素的提取
取1.0 g甘蔗皮粉末按料液比1∶30加入體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇水溶液30 mL,于50 ℃水浴鍋中浸泡30 min后超聲30 min。抽濾后加入顯色劑,于532 nm處測(cè)其吸光度,并計(jì)算提取率。
1.3.2 單因素試驗(yàn)
在1.3.1項(xiàng)條件下進(jìn)行試驗(yàn),保證其他條件相同的情況下改變其中的一個(gè)條件,分別考察料液比[1∶10,1∶20,1∶30,1∶40,1∶50,1∶60 (g/mL)]、超聲時(shí)間(10,20,30,40,50,60 min)、溫度(10,20,30,40,50,60 ℃)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(0,30%,40%,50%,60%,70%)和浸泡時(shí)間(30,40,50,60,70,80 min)對(duì)提取率的影響。
1.3.3 正交試驗(yàn)
單因素試驗(yàn)選取料液比、超聲時(shí)間、溫度、浸泡時(shí)間為考察對(duì)象進(jìn)行四因素三水平正交試驗(yàn),見(jiàn)表1。
表1 L9(34)正交試驗(yàn)因素水平Table 1 L9(34) orthogonal experimental factors and levels table
1.3.4 總抗氧化活性試驗(yàn)——FRAP法[4]
FRAP法基于Fe3+-三吡啶三吖嗪(trypyridyl-s-triazine,簡(jiǎn)寫(xiě)為T(mén)PTZ)螯合物在酸性環(huán)境下被還原為Fe2+-TPTZ螯合物后呈現(xiàn)明顯的藍(lán)色,該螯合物在593 nm處具有最大吸收。通過(guò)檢測(cè)藍(lán)色產(chǎn)物的生成量可反映待測(cè)原花青素樣品的還原能力。
1.3.4.1 FeSO4標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)
準(zhǔn)確稱(chēng)取FeSO4111.2 mg溶于水中,加入18 mol/L硫酸0.25 mL再加水稀釋至50 mL定容,并置入小鐵釘。取上述溶液5 mL于50 mL容量瓶中,定容至50 mL,即為800 μmol/L FeSO4標(biāo)準(zhǔn)溶液。預(yù)先用小試管裝5 mL水,取5 mL FeSO4(800 μmol/L)標(biāo)準(zhǔn)溶液加入試管中,制得400 μmol/L標(biāo)準(zhǔn)溶液,按此方法依次進(jìn)行,制得0,100,200,300,400,500,600,700,800 μmol/L的FeSO4標(biāo)準(zhǔn)溶液。取不同濃度的FeSO4標(biāo)準(zhǔn)溶液0.2 mL,加入1.8 mL FRAP 工作液,混勻后于37 ℃反應(yīng)10 min,593 nm處測(cè)定吸光度,制定還原力標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。
1.3.4.2 總抗氧化能力測(cè)定
移取原花青素粗提液稀釋至不同濃度,準(zhǔn)確加入6 mL的FRAP,再加入600 μL的超純水混勻后置于37 ℃水浴鍋中放置10 min,于593 nm處測(cè)其吸光度。
2.1.1 料液比對(duì)提取率的影響
圖1 料液比對(duì)提取率的影響Fig.1 The effect of solid-liquid ratio on extraction yield
由圖1可知,提取率隨著料液比先增后減,料液比為1∶10,1∶20,1∶30時(shí)提取率較高,波動(dòng)較大;1∶40,1∶50對(duì)提取率影響不太明顯,所以選料液比為1∶10,1∶20,1∶30作為正交試驗(yàn)的條件。又因1∶10,1∶20需稀釋倍數(shù)較大,所以超聲時(shí)間、溫度等單因素試驗(yàn)均采用1∶30料液比作為條件。
2.1.2 超聲時(shí)間對(duì)提取率的影響
圖2 超聲時(shí)間對(duì)提取率的影響Fig.2 The effect of ultrasonic time on extraction yield
由圖2可知,超聲時(shí)間對(duì)提取率的影響呈現(xiàn)先增后減的趨勢(shì),30 min提取率達(dá)最大,原因可能與超聲時(shí)間短原花青素溶出不完全,超聲時(shí)間長(zhǎng)且在高溫的狀態(tài)下原花青素的結(jié)構(gòu)發(fā)生變化有關(guān)[5]。據(jù)此,正交試驗(yàn)超聲時(shí)間選取20,30,40 min。
2.1.3 溫度對(duì)提取率的影響
圖3 溫度對(duì)提取率的影響Fig.3 The effect of temperature on extraction yield
由圖3可知,溫度對(duì)原花青素的提取率有較大的影響,溫度為50 ℃時(shí)為最佳提取工藝溫度,所以選取提取率相對(duì)較大的50,60,70 ℃作為正交試驗(yàn)的3個(gè)水平。
2.1.4 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)提取率的影響
圖4 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)提取率的影響Fig.4 The effect of ethanol volume fraction on extraction yield
由圖4可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素的提取率影響不是很大,整體幅度較平緩,乙醇體積分?jǐn)?shù)為40%時(shí)提取率最大,所以本試驗(yàn)的乙醇體積分?jǐn)?shù)定為40%,乙醇體積分?jǐn)?shù)不作為正交試驗(yàn)的考察因素。
2.1.5 浸泡時(shí)間對(duì)提取率的影響
圖5 浸泡時(shí)間對(duì)提取率的影響Fig.5 The effect of soaking time on extraction yield
由圖5可知,隨著浸泡時(shí)間的增加,提取率呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),浸泡時(shí)間50 min時(shí)提取率達(dá)最大,原因可能與花青素的結(jié)構(gòu)變化有關(guān)。所以選取正交試驗(yàn)的3個(gè)水平為30,40,50 min。
表2 L9(34)正交試驗(yàn)因素水平結(jié)果Table 2 The results of L9(34) orthogonal experiment
由表2可知,各因素影響主次順序?yàn)椋毫弦罕?超聲時(shí)間>溫度>浸泡時(shí)間,最優(yōu)水平為A3B2C1D3,即料液比為1∶30 (g/mL),超聲時(shí)間為30 min,溫度為50 ℃,浸泡時(shí)間為50 min。
為了驗(yàn)證正交試驗(yàn)結(jié)果,采用上述最佳工藝條件進(jìn)行甘蔗皮原花青素提取試驗(yàn),即料液比1∶30 (g/mL),超聲時(shí)間30 min,溫度50 ℃,浸泡時(shí)間50 min,乙醇的體積分?jǐn)?shù)40%,實(shí)際測(cè)得的提取率平均值為23.15 mg/g,RSD值為0.8%,與正交試驗(yàn)最佳結(jié)果基本相同。表明正交試驗(yàn)所得最佳工藝條件準(zhǔn)確可行。
2.4.1 FeSO4標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)
圖6 FeSO4標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)Fig.6 The standard curve of FeSO4
由圖6可知,F(xiàn)eSO4濃度在 0.084~0.794 mmol/L范圍內(nèi)與吸光度A值線(xiàn)性關(guān)系良好,線(xiàn)性回歸方程為y=0.9732x+0.2328,相關(guān)系數(shù) R=0.9994。 因此以FRAP法在593 nm 處測(cè)定甘蔗皮中原花青素吸光度值,據(jù)此換算成FeSO4當(dāng)量濃度的方法是可行的。
2.4.2 總抗氧化能力測(cè)定
把測(cè)得不同濃度粗提液的吸光度值代入2.4.1項(xiàng)下FeSO4標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)換算成FeSO4當(dāng)量濃度,結(jié)果見(jiàn)圖7。
圖7 總抗氧化能力測(cè)定曲線(xiàn)Fig.7 Total antioxidant capacity measurement curve
由圖7可知,隨著甘蔗皮原花青素粗提液濃度的增加,其抗氧化活性增大,趨勢(shì)呈線(xiàn)性關(guān)系,線(xiàn)性相關(guān)方程為y=0.185x-0.2398,相關(guān)系數(shù)R=0.9991,擬合程度良好。
本試驗(yàn)采用超聲輔助通過(guò)單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)確定了原花青素提取的最佳工藝條件為料液比1∶30 (g/mL),超聲時(shí)間30 min,溫度50 ℃,浸泡時(shí)間50 min,乙醇體積分?jǐn)?shù)40%,平均提取率為23.15 mg/g??寡趸囼?yàn)結(jié)果表明原花青素的抗氧化活性隨著濃度的增大呈線(xiàn)性增強(qiáng)。該研究為甘蔗皮中原花青素的進(jìn)一步研究提供了理論依據(jù)。
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