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    微泡破壞及骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療犬急性心肌梗死模型的有效性

    2018-03-20 01:26:18柳淑云常學(xué)鋒劉旭光
    中國(guó)老年學(xué)雜志 2018年4期
    關(guān)鍵詞:傳代微泡造模

    柳淑云 常學(xué)鋒 劉旭光

    (北京市昌平區(qū)中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院心內(nèi)科,北京 102208)

    急性心肌梗死(AMI)是急性危重癥疾病。心肌細(xì)胞減少和缺血缺氧是導(dǎo)致心肌梗死晚期出現(xiàn)難治性心力衰竭等癥狀的主要因素。因此,增加有活性的心肌細(xì)胞數(shù)量是病因上治療心肌梗死的關(guān)鍵。研究表明,骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)能夠分化為心肌組織和血管,減輕心室重構(gòu)〔1〕。而且,最近的臨床試驗(yàn)表明,移植的異體BMSCs與自體BMSCs同樣可以安全有效地用于心肌細(xì)胞再生〔2〕。因此,BMSCs的移植為AMI的治療提供了希望。

    1 材料和方法

    1.1試劑 DAB顯色酶底物試劑盒購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司。 小鼠單克隆抗BrdU抗體購(gòu)自上海浩然生物技術(shù)有限公司。 L-DMEM培養(yǎng)基購(gòu)自北京雅安達(dá)生物技術(shù)有限公司;Percoll分離液(1.073 g/ml)、CD34和CD44兔單克隆抗體、2.5 mm×15 mm OTW球囊,購(gòu)自美國(guó)Gibco公司。

    1.2動(dòng)物 吉林大學(xué)白求恩醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心獲得24只健康比格犬,雌雄各半,體重16.0~17.5 kg。

    1.3BMSCs 準(zhǔn)備 取骨髓:將犬以5%戊巴比妥鈉1 ml/kg腹腔麻醉后,用20 ml注射器穿刺抽取犬肱骨骨髓10 ml,加入等體積肝素。離心純化BMSCs,獲得的單核細(xì)胞在直徑100 mm的培養(yǎng)皿中接種,培養(yǎng)液內(nèi)含20%磷酸鹽緩沖液(PBS)、0.1 mg/ml鏈霉素、100 U/ml青霉素的L-DMEM。在37.0℃,5%CO2下培養(yǎng)。 過(guò)24 h更換培養(yǎng)基。細(xì)胞生長(zhǎng)至68%以上時(shí),細(xì)胞以1∶3的比例傳代,48 h更換一次培養(yǎng)基。 用第三代細(xì)胞進(jìn)行測(cè)定,MTT比色檢測(cè)培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)規(guī)律。通過(guò)CD34和CD44陽(yáng)性細(xì)胞的免疫組化染色鑒定BMSCs。在移植前24 h,加入10 μl BrdU標(biāo)記液以標(biāo)記BMSCs。

    1.4犬AMI模型的制作 禁食8 h后,3%戊巴比妥鈉1 ml/kg腹腔麻醉實(shí)驗(yàn)動(dòng)物。以Sedinger技術(shù)穿刺右側(cè)股動(dòng)脈,置入6 F鞘管。將6 F導(dǎo)管(造影),自犬右股動(dòng)脈置入至主動(dòng)脈根部,注入適量造影劑優(yōu)維顯,顯示左冠狀動(dòng)脈前降支(LAD)。用BMW導(dǎo)絲推送6F OTW球囊導(dǎo)管至LAD遠(yuǎn)端,使之達(dá)第一間隔支和第二間隔支之間,抽除導(dǎo)絲,注入適量造影劑優(yōu)維顯,以4~6 amt充盈球囊堵塞LAD 4 h后撤除氣囊,造模完畢。

    1.5分組 模型成功7 d后,將狗隨機(jī)分為4組,每組6只,雌雄各半。(1)PBS組:5 ml生理鹽水沖洗后,用OTW球囊將LAD開(kāi)口完全堵塞,然后自中心腔由遠(yuǎn)及近于2 min內(nèi)注射PBS。(2)微泡+PBS組:LAD開(kāi)口,給予超聲輻射:經(jīng)股靜脈應(yīng)用微量泵以1.5 ml/min勻速緩慢靜脈注射2.0 ml聲諾維,同時(shí)啟動(dòng)超聲。超聲探頭固定于犬心臟左室乳頭肌水平,觀看短軸切面圖;時(shí)間觸發(fā)模式,觸發(fā)脈沖持續(xù)時(shí)間2 ms,幀頻(FPS)為0.48,觸發(fā)時(shí)間間隔2 s,機(jī)械指數(shù)(MI)1.33,作用時(shí)間11 min,深度9~10 cm,強(qiáng)度為1.1 W/cm2,頻率為1.2 MHz,其后操作同PBS組。(3)BMSCs組:以BMSCs取代PBS,余操作同PBS組。(4)微泡+BMSCs組:以BMSCs取代PBS,余操作同微泡+PBS組。

    1.6觀察指標(biāo) (1)細(xì)胞形態(tài)學(xué)、生長(zhǎng)特性、數(shù)目及鑒定;(2)BMSCs的體外免疫組化標(biāo)記;(3)造模時(shí)在指引導(dǎo)管內(nèi)通過(guò)注入適量造影劑,查看其在氣囊近端是否受阻,以清楚血流有無(wú)阻斷情況;(4)M型超聲、二維超聲心動(dòng)圖及心肌聲學(xué)造影(MCE)測(cè)量心功能、灌注缺損面積占左室總灌注面積的百分比(DA):MCE測(cè)量DA;M型超聲測(cè)量心功能,包括左室射血分?jǐn)?shù)(LVEF)、舒張末期容積(EDV)、收縮末期容積(ESV)、室壁增厚率(D)、短軸縮短率(FS)、室壁運(yùn)動(dòng)異常指數(shù)(WMSI)。造模前及造模后4 h、梗死相關(guān)冠狀動(dòng)脈再通后,分別進(jìn)行心肌造影。選擇每次造影心肌顯影達(dá)平臺(tái)時(shí)灌注缺損面積最小的圖像,應(yīng)用Matlab軟件計(jì)算DA%。

    1.7統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用SPSS16.0軟件,多組計(jì)量資料比較采用方差分析,兩組間比較采用t檢驗(yàn)。

    2 結(jié) 果

    2.1細(xì)胞形態(tài)學(xué)、生長(zhǎng)特性、數(shù)目及鑒定 原代培養(yǎng)BMSCs約12 h貼壁,一般3~4 d可以傳代一次。第2代細(xì)胞形態(tài)以長(zhǎng)梭形為主;傳代后呈漩渦生長(zhǎng)(圖1)。MTT細(xì)胞生長(zhǎng)曲線分析,培養(yǎng)第1、2、3代細(xì)胞的生長(zhǎng)規(guī)律基本一致,首先經(jīng)過(guò)1~2 d滯留期,第3天開(kāi)始進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,第7天達(dá)到平臺(tái)期,此時(shí)細(xì)胞數(shù)目不再增加(圖2),可行傳代。1 w后獲得BMSCs數(shù)量為1×107個(gè),3 w后傳代2次,從第3代細(xì)胞中可以獲得足夠數(shù)量的BMSCs:107個(gè)/盤,共24盤。

    圖1 第3代細(xì)胞(×100)

    圖2 MTT分析各代培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線

    2.2培養(yǎng)細(xì)胞的鑒定 CD34、CD44免疫細(xì)胞化學(xué)檢測(cè)顯示表面抗原CD34呈陰性表達(dá),CD44呈陽(yáng)性表達(dá)(圖3),這是BMSCs的特異標(biāo)志。

    2.3BMSCs的體外免疫組化標(biāo)記 在BrdU 摻入BMSCs 24 h后進(jìn)行免疫組化染色,細(xì)胞核染為棕褐色,證明 BrdU 已經(jīng)摻入細(xì)胞核中(圖4)。

    2.4造模成功 冠狀動(dòng)脈造影顯示LAD動(dòng)脈閉塞。阻塞部位為第一、二間隔支之間,其遠(yuǎn)端再無(wú)造影劑顯示,血流中斷,證實(shí)AMI模型建立成功(圖5)。MCE同步心電圖導(dǎo)聯(lián)V1表現(xiàn)出特征性AMI變化,包括弓背向上抬高的ST段與直立的T波連接以形成單個(gè)曲線和病理Q波(圖6)。

    2.5心功能和DA%的測(cè)量 各組造模后4 h心臟功能顯著降低,DA%顯著增加,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表1。

    圖3 免疫細(xì)胞化學(xué)檢測(cè)BMSCs的表面抗原(DAB染色,×200)

    圖4 BMSCs的體外免疫組化染色(DAB染色,×200)

    圖5 封堵前降支

    圖6 特征性AMI變化

    表1 各組EDV、LVEF、FS、D、WMSI和DA測(cè)量結(jié)果

    與造模前比較:1)P<0.05

    3 討 論

    通常AMI治療包括藥物治療和手術(shù)治療,主要手術(shù)方法包括冠狀動(dòng)脈內(nèi)植入支架和冠狀動(dòng)脈旁路移植術(shù)植入。盡管這些治療方法在挽救和改善患者生活質(zhì)量方面取得了成功,但沒(méi)有取代梗死區(qū)丟失的組織,即沒(méi)有從根本上解決問(wèn)題。由于心臟的再生能力很低,需要新的治療方法,以便在細(xì)胞和分子水平上培育新的組織并治愈心臟〔3〕。

    將足夠的BMSCs安全、準(zhǔn)確地歸巢到梗死區(qū)是從根本上治療AMI的關(guān)鍵。通過(guò)同軸整體交換型OTW導(dǎo)管經(jīng)梗死相關(guān)冠狀動(dòng)脈移植的BMSCs不僅定位準(zhǔn)確,而且風(fēng)險(xiǎn)較低,易于操作;診斷超聲介導(dǎo)的微泡破壞可以增加血管通透性,促進(jìn)BMSCs歸巢到心肌梗死區(qū)〔4~6〕。為此,本文建立了犬AMI模型,驗(yàn)證冠狀動(dòng)脈內(nèi)移植和超聲介導(dǎo)的微泡破壞的組合是否可以促進(jìn)BMSCs準(zhǔn)確和有效率地移植到梗死區(qū)。

    本研究結(jié)果表明,BMSCs的移植促進(jìn)BMSCs在心肌內(nèi)存活,提高α-肌動(dòng)蛋白表達(dá),增加了能夠有效收縮的心肌細(xì)胞數(shù)量,減少了心肌梗死面積和灌注缺陷面積,心臟功能得到了有效改善。

    心肌梗死發(fā)生后病變局部的微環(huán)境是細(xì)胞存活的最關(guān)鍵因素,他將影響移植細(xì)胞的黏附,遷移和定植能力及長(zhǎng)期存活〔7〕。因此選擇合適的移植時(shí)機(jī)非常重要。Gehrke等〔8〕發(fā)現(xiàn)在心肌梗死后第7天,血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)的分泌達(dá)到高峰,可能此時(shí)為移植細(xì)胞提供最充分的血供,且在心肌梗死7~15 d,纖維組織開(kāi)始生成,炎癥反應(yīng)較前減弱,可能此時(shí)對(duì)心肌的損害降至最低,此時(shí)移植細(xì)胞容易存活。

    本研究結(jié)果也證實(shí)了BMSCs移植后能夠存活和分化,這為心肌梗死的干細(xì)胞臨床治療提供了借鑒。

    1Du M,Schmull S,Zhang W,etal.C-kit(+)AT2R(+) bone marrow mononuclear cell subset is a superior subset for cardiac protection after myocardial infarction〔J〕.Stem Cells Int,2016;2016:4913515.

    2Hare JM,Fishman JE,Gorstenblith G,etal.Comparison of allogeneic vs autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells delivered by transendocardial injection in patients with ischemic cardiomyopathy〔J〕.JAMA,2012;308:2369-79.

    3Lister Z,Rayner KJ,Suuronen EJ.How biomaterials can influence various cell types in the repair and regeneration of the heart after myocardial infarction〔J〕.Front Bioeng Biotechnol,2016;4(1):62.

    4Fakoya AD.New delivery systems of stem cells for vascular regeneration in ischemia〔J〕.Front Cardiovasc Med,2017;4(1):7.

    5Liao YY,Chen ZY,Wang YX,etal.New progress in angiogenesis therapy of cardiovascular disease by ultrasound targeted microbubble destruction〔J〕.Biomed Res Int,2014;2014:872984.

    6Yousef M,Schannwell CM,Kostering M,etal.The BALANCE Study:clinical benefit and long-term outcome after intracoronary autologous bone marrow cell transplantation in patients with acute myocardial infarction〔J〕.J Am Coll Cardiol,2009;53(24):2262.

    7Wang J,de Veirman K,de Beule N,etal.The bone marrow microenvironment enhances multiple myeloma progression by exosome-mediated activation of myeloid-derived suppressor cells〔J〕.Oncotarget,2015;6(41):43992-4004.

    8Gehrke I,Gandhirajan RK,Poll-Wolbeck SJ,etal.Bone marrow stromal cell-derived vascular endothelial growth factor (VEGF) rather than chronic lymphocytic leukemia (CLL) cell-derived VEGF is essential for the apoptotic resistance of cultured CLL cells〔J〕.Mol Med,2011;17(7-8):619-27.

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