時(shí)玉霞,李茹柳,鄧 嬌,王東旭,朱易平,胡 玲,陳蔚文
(廣州中醫(yī)藥大學(xué)脾胃研究所,廣東 廣州 510405)
胃腸黏膜通過上皮細(xì)胞遷移、增殖、分化、凋亡等以維持黏膜完整性的動(dòng)態(tài)平衡,胃腸黏膜是人體更新速度最快的組織,胃腸上皮細(xì)胞增殖是維持胃腸黏膜完整性的生理特征之一[1]。檢測(cè)細(xì)胞增殖的方法包括間接觀察DNA合成含量和直接檢測(cè)細(xì)胞代謝活性等。檢測(cè)細(xì)胞存活狀況的方法有3H-TdR參入法、MTT法、WST法、CCK-8法等,但這些方法都不能實(shí)時(shí)動(dòng)態(tài)地觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況,且受多種因素的影響[2]。實(shí)時(shí)細(xì)胞分析儀(real-time cell analyzer,RTCA)是實(shí)時(shí)觀察細(xì)胞貼壁狀態(tài)的電感應(yīng)儀,細(xì)胞貼壁于E-Plate板底部時(shí),其電極電阻值會(huì)發(fā)生相應(yīng)變化,并轉(zhuǎn)化為細(xì)胞生長(zhǎng)指數(shù)[3],可通過細(xì)胞指數(shù)曲線的方式實(shí)時(shí)觀察細(xì)胞生長(zhǎng)(主要是增殖)情況,且較少受其它因素干擾。表皮生長(zhǎng)因子(epidermal growth factor, EGF)可刺激細(xì)胞生長(zhǎng)因子受體酪氨酸磷酸化以促進(jìn)細(xì)胞增殖,在胃腸道,EGF可增加上皮細(xì)胞鳥氨酸脫羧酶(ornithine decarboxylase,ODC)活性,刺激黏膜DNA合成,維持胃腸黏膜上皮正常功能[4]。本實(shí)驗(yàn)以RTCA建立小腸上皮細(xì)胞(IEC-6)生長(zhǎng)模型,以EGF作為促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)的工具藥,觀察不同培養(yǎng)條件對(duì)IEC-6細(xì)胞生長(zhǎng)的影響及EGF的藥效,為建立IEC-6細(xì)胞增殖藥理實(shí)驗(yàn)?zāi)P吞峁﹨⒖肌?/p>
1.1試劑重組人EGF(批號(hào)0815AFC05,美國(guó)Peprotech公司);胎牛血清(批號(hào)1671324)、高糖DMEM(批號(hào)8115346)、雙抗Pen Strep(批號(hào)1677648),均為美國(guó)Gibco公司產(chǎn)品;海藻糖D-Trehalose(分子質(zhì)量:378.33,批號(hào)T-5251,美國(guó)Sigma公司);其他試劑均為分析純。
1.2儀器xCELLigence RTCA DP(實(shí)時(shí)動(dòng)態(tài)細(xì)胞分析儀)、E-Plate 16(批號(hào)20140224),均為瑞士羅氏公司產(chǎn)品;3111型CO2培養(yǎng)箱(美國(guó)Thermo Scientific公司)。
1.3細(xì)胞大鼠小腸隱窩細(xì)胞(IEC-6)購(gòu)自American Type Culture Collection(ATCC),批號(hào)58541019。選擇22~24代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
2.1EGF的配制EGF試劑開蓋前先離心試劑管(10 000 r·min-1,30 s),加滅菌超純水200 μL到該試劑管,靜置5 min使其充分溶解,再加80 μL含5%海藻糖的PBS溶液,配成終濃度0.1 g·L-1的EGF,分裝,-20 ℃凍存?zhèn)溆谩:罄m(xù)稀釋EGF時(shí),均用含5%海藻糖的PBS溶液。
2.2細(xì)胞培養(yǎng)IEC-6細(xì)胞以2×104cells/cm2接種于25 cm2培養(yǎng)瓶,培養(yǎng)基為高糖DMEM含10% FBS和1%雙抗;培養(yǎng)條件為37℃,飽和濕度,5% CO2。細(xì)胞生長(zhǎng)至80%~90%時(shí),以每孔1×104個(gè)細(xì)胞接種于E-Plate 16板,每孔加入200 μL含10%血清和1%雙抗的DMEM,培養(yǎng)24 h后,培養(yǎng)液換成200 μL無(wú)血清DMEM繼續(xù)培養(yǎng)20 h(即血清饑餓20 h)。
3.110%血清濃度時(shí)EGF對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響按“2.2”培養(yǎng)方法,血清饑餓20 h后,每孔更換200 μL培養(yǎng)液;空白對(duì)照組為含10%血清的DMEM 200 μL,受試藥組分別加入終濃度為1、10、100 μg·L-1EGF的10%血清的DMEM 200 μL,每組3個(gè)復(fù)孔,分別觀察給藥后24、48、72 h細(xì)胞指數(shù)(cell index,CI);各組細(xì)胞指數(shù)及其生長(zhǎng)曲線圖由儀器配套軟件自動(dòng)計(jì)算并導(dǎo)出。由Fig 1、Tab 1結(jié)果可見,細(xì)胞加藥后24、48、72 h,EGF各劑量組細(xì)胞指數(shù)與空白組比較均P>0.05,表明EGF在10%血清濃度時(shí)對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)無(wú)明顯影響。提示培養(yǎng)液含10%血清時(shí),不能反映EGF促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)的藥效。
Fig 1 Efficacy of EGF on cell growthunder serum concentration of 10%
Tab 1 Efficacy of EGF on cell growth underserum concentration of 10%(±s, n=3)
3.2無(wú)血清培養(yǎng)時(shí)(0%血清)EGF對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響按“2.2”培養(yǎng)方法,血清饑餓20 h后,每孔更換200 μL DMEM;“5%血清空白組”為培養(yǎng)液加入含5%血清的DMEM,“0%血清空白組”加入不含血清的DMEM,給藥組分別加入含終濃度1、10、100 μg·L-1EGF的不含血清DMEM;每組3個(gè)復(fù)孔,觀察給藥后24、48、72 h細(xì)胞生長(zhǎng)指數(shù)。由Fig 2、Tab 2結(jié)果可見,無(wú)血清培養(yǎng)可致細(xì)胞生長(zhǎng)明顯抑制(0%血清空白組細(xì)胞指數(shù)與5%血清空白組比較,在24、48、72 h均P<0.01);EGF對(duì)無(wú)血清培養(yǎng)所致的細(xì)胞生長(zhǎng)抑制有一定改善作用(1、10 μg·L-1的EGF組與0%血清空白組比較,細(xì)胞指數(shù)在48、72 h均P<0.01),說明EGF對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,但不能使其恢復(fù)至正常水平(與5%血清組比較,均P<0.01)。提示培養(yǎng)液不含血清時(shí),不能較好反映EGF促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)的藥效。Fig 2結(jié)果還提示,5%血清能較好維持細(xì)胞生長(zhǎng),但也不利于體現(xiàn)EGF促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)的藥效,應(yīng)適當(dāng)調(diào)低血清濃度,以利于反映EGF藥效。
Fig 2 Efficacy of EGF on cell growth underserum concentration of 0%
3.3不同血清濃度(0%、0.5%、1%)對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響按“2.2”培養(yǎng)方法,血清饑餓20 h后,每孔更換200μL DMEM,設(shè)0%、0.5%、1%血清濃度組,每組3個(gè)復(fù)孔,觀察加入不同濃度血清培養(yǎng)24、48、72 h后細(xì)胞生長(zhǎng)指數(shù)。由Fig 3、Tab 3結(jié)果可見,不同濃度血清可致細(xì)胞生長(zhǎng)產(chǎn)生明顯差異。無(wú)血清培養(yǎng)(0%血清)可明顯抑制細(xì)胞生長(zhǎng);1%血清濃度可維持細(xì)胞指數(shù)處于上升階段約48 h,后續(xù)則細(xì)胞指數(shù)逐漸下降;0.5%血清濃度可維持細(xì)胞指數(shù)處于上升或平臺(tái)階段約36 h,后續(xù)則細(xì)胞指數(shù)逐漸下降。提示0.5%血清既不會(huì)對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)產(chǎn)生明顯抑制,也不會(huì)由于促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)時(shí)間較長(zhǎng)而不利于反映EGF藥效。
Tab 2 Efficacy of EGF on cell growth under serum concentration of 0%(±s, n=3)
##P<0.01vs5% serum group;**P<0.01vsserum-free group
Fig 3 Efficacy of different serum concentrations on cell growth
GroupCellindex0h24h48h72h0%serum4.98±0.173.25±0.171.34±0.070.83±0.060.5%serum4.67±0.986.33±0.47??5.08±0.73??3.96±0.68??1%serum4.02±0.356.47±0.05??6.88±0.08??5.72±0.20??
**P<0.01vsserum-free group
3.40.5%血清濃度時(shí)EGF對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響按“2.2”培養(yǎng)方法,血清饑餓20 h后,每孔更換200 μL培養(yǎng)液;空白對(duì)照組為含0.5%血清的DMEM,受試藥組為在含0.5%血清的DMEM中分別加入EGF,使其終濃度為1、10、50、100 μg·L-1。每組3個(gè)復(fù)孔,觀察加藥24、48、72 h后細(xì)胞生長(zhǎng)指數(shù)。由Fig 4、Tab 4可見,加藥24 h內(nèi),EGF各劑量組與空白對(duì)照組生長(zhǎng)曲線基本相似(加藥24 h時(shí)EGF各組細(xì)胞指數(shù)與空白對(duì)照組比較均P>0.05);加藥48~72 h,空白對(duì)照組細(xì)胞生長(zhǎng)曲線明顯下降,EGF 1、10 μg·L-1組細(xì)胞生長(zhǎng)曲線基本維持在平臺(tái)期,EGF 50、100 μg·L-1組細(xì)胞生長(zhǎng)曲線則緩慢下降,EGF各組細(xì)胞指數(shù)與空白組比較均P<0.01。提示0.5%血清培養(yǎng)時(shí)可體現(xiàn)EGF促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)的藥效,其中1、10 μg·L-1組藥效較優(yōu);為進(jìn)一步驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選擇EGF(10 μg·L-1) 進(jìn)行重復(fù)實(shí)驗(yàn)。
Fig 4 Efficacy of EGF on cell growth underserum concentration of 0.5%
Tab 4 Efficacy of EGF on cell growth underserum concentration of 0.5%(±s, n=3)
**P<0.01vscontrol
3.50.5%血清濃度時(shí)EGF(10μg·L-1)對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響按“2.2”培養(yǎng)方法,血清饑餓20 h后,每孔更換200 μL培養(yǎng)液,空白對(duì)照組為含0.5%血清的DMEM,受試藥組在含0.5%血清的DMEM中加入EGF,使其終濃度為10 μg·L-1。每組3個(gè)復(fù)孔,觀察加藥24、48、72 h后細(xì)胞生長(zhǎng)指數(shù)。由Fig 5、Tab 5結(jié)果可見,加藥48 h后,空白對(duì)照組細(xì)胞生長(zhǎng)曲線明顯下降,EGF組(10 μg·L-1)細(xì)胞生長(zhǎng)曲線基本維持在平臺(tái)期,加藥48、72 h時(shí),EGF組生長(zhǎng)指數(shù)與空白對(duì)照組比較P<0.05或P<0.01,與Fig 4、Tab 4的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相似,重復(fù)驗(yàn)證了0.5%血清濃度時(shí)可反映EGF促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)藥效的結(jié)果。
Fig 5 Efficacy of EGF(10 μg·L-1)on cell growthunder serum concentration of 0.5%
GroupConcentration/μg·L-1Cellindex0h24h48h72hControl-4.67±0.986.33±0.475.10±0.713.96±0.68EGF104.66±0.846.35±0.106.49±0.20?6.57±0.23??
*P<0.05,**P<0.01vscontrol
胃腸黏膜具有消化、吸收、分泌和免疫屏障等功能,細(xì)胞增殖是維持胃腸黏膜完整性和正常功能的重要因素,也是胃腸黏膜損傷修復(fù)的重要環(huán)節(jié)[5]。促進(jìn)上皮細(xì)胞增殖是胃腸黏膜損傷修復(fù)藥物如益氣健脾中藥白術(shù)、黃芪等的藥理作用之一[6]。本課題組以RTCA檢測(cè)白術(shù)多糖對(duì)IEC-6細(xì)胞生長(zhǎng)的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在培養(yǎng)液含10%血清條件下,白術(shù)多糖促進(jìn)細(xì)胞增殖的作用較弱[7],與本實(shí)驗(yàn)Fig 1和Tab 1結(jié)果相似,即在培養(yǎng)液含10%血清時(shí),較難反映受試藥促進(jìn)細(xì)胞增殖的作用。對(duì)IEC-6細(xì)胞的研究表明,無(wú)血清培養(yǎng)24 h后,培養(yǎng)液再加入5%血清,可通過增加細(xì)胞多胺和DNA合成等途徑,促進(jìn)細(xì)胞增殖[8],表明培養(yǎng)液所含血清是促進(jìn)細(xì)胞增殖的因素之一,因此,可能對(duì)受試藥的藥效結(jié)果產(chǎn)生干擾。本實(shí)驗(yàn)觀察不同實(shí)驗(yàn)條件(包括血清濃度)對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的影響,為建立適合反映受試藥對(duì)細(xì)胞增殖影響的藥理模型提供參考。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,血清濃度較高時(shí)(5%~10%血清),由于血清本身對(duì)細(xì)胞增殖的促進(jìn)作用,可能會(huì)掩蓋受試藥(如EGF)促進(jìn)細(xì)胞增殖的藥效;而培養(yǎng)液不含血清時(shí)(0%血清),由于細(xì)胞增殖受到明顯抑制,也不利于較好體現(xiàn)受試藥促進(jìn)細(xì)胞增殖的藥效;而血清濃度0.5%左右時(shí),較有利于體現(xiàn)受試藥對(duì)細(xì)胞增殖的影響。綜上結(jié)果,本實(shí)驗(yàn)在實(shí)時(shí)細(xì)胞分析儀建立IEC-6細(xì)胞生長(zhǎng)(增殖)藥理實(shí)驗(yàn)?zāi)P偷膮⒖挤桨笧椋杭?xì)胞以含10%血清培養(yǎng)24 h,再無(wú)血清培養(yǎng)(即血清饑餓)20 h,然后加受試藥,并以含0.5%血清培養(yǎng)48~72 h,可觀察到受試藥對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)(增殖)影響的藥效。
目前,常用的檢測(cè)細(xì)胞增殖方法如3H-TdR參入法、MTT法、WST法、CCK-8法等[9],都是檢測(cè)特定時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞增殖的情況,而RTCA采用電子阻抗技術(shù)檢測(cè)貼壁細(xì)胞黏附于E-plate板底部時(shí)電阻值的變化,并將變化的電阻值轉(zhuǎn)換為細(xì)胞指數(shù),從而可在數(shù)十甚至數(shù)百小時(shí)中,動(dòng)態(tài)反映細(xì)胞生長(zhǎng)(增殖)等情況[3],避免了僅進(jìn)行單個(gè)時(shí)間點(diǎn)觀察藥效的缺點(diǎn),可以動(dòng)態(tài)觀察受試藥對(duì)細(xì)胞增殖的影響,是細(xì)胞藥理實(shí)驗(yàn)的較好方法[10]。
本課題組在小腸上皮細(xì)胞(IEC-6)建立了細(xì)胞遷移藥理實(shí)驗(yàn)?zāi)P蚚11],以柱前衍生高效液相色譜法建立了檢測(cè)IEC-6細(xì)胞多胺含量的方法[12],以流式細(xì)胞儀建立了IEC-6細(xì)胞膜電位檢測(cè)方法[13],并觀察了益氣健脾中藥通過影響多胺信號(hào)通路而促進(jìn)細(xì)胞遷移的作用[14]。本實(shí)驗(yàn)又以實(shí)時(shí)細(xì)胞分析儀建立了IEC-6細(xì)胞增殖藥理實(shí)驗(yàn)?zāi)P?,為更好地探討受試?如益氣健脾中藥)的藥理作用提供參考。
[致謝:本實(shí)驗(yàn)是在國(guó)家中醫(yī)藥管理局三級(jí)實(shí)驗(yàn)室“中藥藥理(消化)實(shí)驗(yàn)室”(由廣州中醫(yī)藥大學(xué)脾胃研究所建設(shè))和廣州中醫(yī)藥大學(xué)國(guó)家重點(diǎn)學(xué)科“中醫(yī)內(nèi)科學(xué)”實(shí)驗(yàn)室(脾胃研究所是該學(xué)科組成部分)完成,在此對(duì)實(shí)驗(yàn)室各位同學(xué)和老師表示感謝!]
[1] Liu L,Ouyang M,Rao J N, et al. Competition between RNA-binding proteins CELF1 and HuR modulates MYC translation and intestinal epithelium renewal[J].MolBiolCell, 2015,26(10): 1797-810.
[2] 石 淙, 萬(wàn)臘根. 細(xì)胞增殖的檢測(cè)方法[J]. 實(shí)驗(yàn)與檢驗(yàn)醫(yī)學(xué), 2012,45(2):153-5.
[2] Shi C,Wan L G. The detection method of cell proliferation[J].ExpLabMed, 2012,45(2):153-5.
[3] Rakers S,Imse F,Gebert M. Real-time cell analysis: sensitivity of different vertebrate cell cultures to copper sulfate measured by xCELLigence?[J].Ecotoxicology, 2014,23(8): 1582-91.
[4] 廖小金. 表皮生長(zhǎng)因子結(jié)構(gòu)和生物學(xué)效應(yīng) [J]. 海峽藥學(xué), 2006,18(5):14-7.
[4] Liao X J. Epidermal growth factor structure and biological effects[J].StraitPharmJ, 2006,18(5):14-7.
[5] Gao J H, Guo L J, Huang Z Y, et al. Roles of cellular polyamines in mucosal healing in the gastrointestinal tract [J].JPhysiolPharmacol, 2013,64(6): 681-93.
[6] 胡 燦,李茹柳,莫全毅,等. 白術(shù)和黃芪不同提取部位對(duì)小腸上皮細(xì)胞增殖的影響 [J]. 中藥新藥與臨床藥理,2010,21(2):156-60.
[6] Hu C, Li R L, Mo Q Y, et al. Effects of different extract parts from Rhizoma atractylodis macrocephalae and Radix astragali on proliferation of intestinal epithelial cells[J].TraditChinDrugResClinPharmacol, 2010,21(2):156-60.
[7] 王一寓,李茹柳,宋厚盼,等. 白術(shù)多糖提取物對(duì)IEC-6細(xì)胞遷移及細(xì)胞生長(zhǎng)的影響 [J]. 中藥藥理與臨床,2014,30(4):51-4.
[7] Wang Y Y, Li R L, Song H P, et al. The effect of polysaccharides from Atractylodes macrocephala on IEC-6 cell migration and growth[J].TraditChinDrugResClinPharmacol, 2014,30(4):51-4.
[8] Liu L, Li L, Rao J N, et al. Polyamine-modulated expression of c-myc plays a critical role in stimulation of normal intestinal epithelial cell proliferation.[J].AmJPhysiolCellPhysiol, 2005,288(1):C89-9.
[9] 蘇程程, 向國(guó)安, 馬永強(qiáng),等. 基于5-乙炔基-2’-脫氧尿苷參入法的不同細(xì)胞增殖檢測(cè)方法比較[J]. 武警后勤學(xué)院學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2016,25(1):21-4.
[9] Su C C, Xiang G A, Ma Y Q, et al. Comparison of different cell proliferation detection methods based on 5-acetylene-2’-deoxyuridine infiltration method[J].JLogistUnivPAP(MedSci), 2016,25(1):21-4
[10] 侯雪芹, 張曉晶, 王 奇,等. 體外抗AD藥物篩選中MTT、Edu和RTCA法的比較研究[J]. 時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥, 2015,26(3):741-3.
[10] Hou X Q, Zhang X J, Wang Q, et al. Comparative study of MTT Edu and RTCAinvitroanti-AD drug screening[J].LishizhenMedMaterMedRes, 2015,26(3):741-3.
[11] Hu C,Li R L,Lu W B, et al. Studies on cell migration model in intestinal epithelial restitution for pharmacological research [J].JChinMedMater, 2011,34(5): 738-46.
[12] 隨晶晶,盧文彪,李茹柳,等. 高效液相色譜法檢測(cè)小腸上皮細(xì)胞多胺含量[J]. 中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2011,27(9):1309-12.
[12] Sui J J,Lu W B,Li R L,et al.Determination of polyamines in rat intestinal epithelial cell line IEC-6 by RP-HPLC[J].ChinPharmacolBull, 2011,27(9):1309-12.
[13] 宋厚盼,李茹柳,王一寓,等.小腸上皮細(xì)胞遷移過程中膜電位檢測(cè)方法的建立及應(yīng)用[J]. 中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2013,29(12):1758-61.
[13] Song H P,Li R L,Wang Y Y, et al. Establishment and application of membrane potential detection method for intestinal epithelial cell migration[J].ChinPharmacolBull,2013,29(12):1758-61.
[14] 李茹柳,陶玉珠,曾 丹,等. 黨參、甘草糖提取物對(duì)小腸上皮細(xì)胞遷移多胺信號(hào)通路的影響[J]. 中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2016,32(2):245-51.
[14] Li R L,Tao Y Z,Zeng D,et al.Effect of Codonopsis and Glycyrrhizae saccharide extracts on polyamine-dependent signaling pathway during cell migration in IEC-6 [J].ChinPharmacolBull,2016,32(2):245-51.