鄧光輝,羅珍連
(廣西民族大學 化學化工學院 廣西林產(chǎn)化學與工程重點實驗室,南寧530006)
金釵石斛(Dendrobium nobile Lindl)為蘭科屬多年附生草本植物,其入藥始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》,享有“仙草”之美譽,是名貴中藥材石斛的來源之一[1]。金釵石斛的主要有效成分有生物堿類化合物、酚類化合物、多糖等[2],其中,生物堿類成分是最早從石斛屬植物中分離得到的物質[3]。石斛堿為金釵石斛的特征性成分,具有止痛、解熱、降低心率和血壓、減慢呼吸、解巴比妥毒等作用[4-5],有較高的研究開發(fā)價值。2010年版《中國藥典》以石斛堿含量作為金釵石斛的質量控制指標[6]。
石斛堿的測定方法有氣相色譜法[7-8]和高效液相色譜法[9-10]。與高效液相色譜法相比,毛細管電泳-電化學發(fā)光法(CE-ECL)是一種高效快速、樣品消耗少、成本低的分離檢測技術[11-12]。CE-ECL已經(jīng)成功應用于生物堿研究[13-17],但尚未見到 CEECL測定金釵石斛堿的報道。本工作對金釵石斛中具有藥理活性成分的石斛堿進行提取,采用CEECL測定其含量。
MPI-A型毛細管電泳電化學發(fā)光檢測系統(tǒng),配未涂層石英毛細管(50μm×55cm)、直徑500μm鉑工作電極、Ag/AgCl參比電極和鉑輔助電極;PHS-3E型酸度計;KQ-100DB型數(shù)控超聲波清洗器;1810-B型自動雙蒸餾器。
Ru(bpy)32+溶液:5mmol·L-1,稱取適量三聯(lián)吡啶氯化釕六水合物,用水溶解配制成20mmol·L-1溶液,再用70mmol·L-1磷酸鹽緩沖溶液(PBS,pH 8.10)稀釋配制成5mmol·L-1。
標準儲備溶液:500mg·L-1,稱取石斛堿對照品5.0mg置于10mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容,搖勻,使用時用pH 8.10PBS進行稀釋。
石斛堿標準品純度99%,三聯(lián)吡啶氯化釕六水合物、甲醇、乙醇為分析純,試驗用水為二次蒸餾水,其他試劑均為分析純。
稱取金釵石斛粉末1.000 0g置于100mL錐形瓶中,加入乙醇50mL,稱定質量,超聲提取30min,冷卻,再稱定質量,用無水乙醇補足失重,濾液經(jīng)0.45μm乙酸纖維膜過濾備用。
依次 用 0.1mol·L-1NaOH 溶 液、水、10mmol·L-1PBS(pH 5.13)運行緩沖溶液將石英毛細管沖洗10min,將工作電極依次用0.3,0.05μm Al2O3粉末拋光,用水沖洗,再用水超聲清洗干凈,吹干,將電極與毛細管安裝在檢測池上,用光學顯微鏡調節(jié)毛細管與工作電極之間的距離為(100±5)μm。
在檢測池中加入5mmol·L-1Ru(bpy溶液,測定時將毛細管進樣端插入10mmol·L-1PBS(pH 5.13)中,待發(fā)光信號穩(wěn)定后,采用電動進樣,進樣電壓為10kV,進樣時間為10s,光電倍增管高壓為800V,檢測電位為1.17V,施加分離電壓為15kV進行分離檢測。
所有溶液在進入毛細管前經(jīng)0.45μm乙酸纖維素膜過濾,每2h換一次檢測池溶液,以保證試驗的穩(wěn)定性。
在檢測池中先加入5mmol·L-1Ru(bpy溶液進行循環(huán)伏安掃描,記錄電極電流和電化學發(fā)光曲線。加入3.4mg·L-1石斛堿溶液后,再進行循環(huán)伏安掃描,記錄電極電流和電化學發(fā)光曲線,結果見圖1。
圖1 循環(huán)伏安圖(a)和電化學發(fā)光曲線(b)Fig.1 Cyclic voltammograms(a)and the profile of electrochemiluminescence(b)
由圖1可知:三聯(lián)吡啶釕只有較小的電極電流和弱的電化學發(fā)光信號;當加入石斛堿后,電極電流和電化學發(fā)光信號都得到明顯的增強?;谑鷫A對三聯(lián)吡啶釕的電化學發(fā)光的增強作用,可建立毛細管電泳-電化學發(fā)光法測定石斛堿的含量。
2.2.1 檢測電位
采用恒電位法在1.0~1.35V(vs.Ag/AgCl)內(nèi)考察檢測電位對電化學發(fā)光(ECL)強度的影響,結果見圖2。
由圖2可知:當檢測電位升至1.17V時,石斛堿的ECL強度最大。因此,試驗選擇1.17V作為檢測電位。
圖3 Ru(bpy濃度對電化學發(fā)光強度的影響Fig.3 Effeet of concentration of Ru(bpy on ECL intensity
2.2.3 運行緩沖溶液的濃度和酸度
試驗考察了5~30mmol·L-1內(nèi)的運行緩沖溶液對ECL強度的影響,結果見圖4。
由圖4可知:隨著運行緩沖溶液濃度的增大,ECL強度逐漸增大;當其濃度為10mmol·L-1時,ECL強度達到最大;濃度高于10mmol·L-1時,ECL強度逐漸減小。因此,試驗選擇10mmol·L-1磷酸鹽緩沖溶液為運行緩沖溶液。
緩沖溶液的酸度也會影響毛細管電泳的分離效果和ECL強度,影響分析物的電離度,還會影響電滲流(EOF)的大小。試驗考察運行緩沖溶液在pH 3.50~8.50內(nèi)對ECL強度的影響,結果見圖5。
圖4 運行緩沖溶液濃度對電化學發(fā)光強度的影響Fig.4 Effect of concentration of the running buffer solution on ECL intensity
圖5 運行緩沖溶液酸度對電化學發(fā)光強度的影響Fig.5 Effect of acidity of the running buffer solution on ECL intensity
由圖5可知:當運行緩沖溶液pH為5.13時,ECL強度最大。因此,試驗選擇pH 5.13的10mmol·L-1磷酸鹽緩沖溶液為運行緩沖溶液。
2.2.4 檢測池中緩沖溶液的濃度和酸度
固定檢測池中磷酸鹽緩沖溶液濃度為60mmol·L-1,考察其 pH 在6.00~9.50內(nèi)對ECL強度的影響,結果見圖6。
由圖6可知:pH 為6.00~8.10時,ECL強度隨檢測池中磷酸鹽緩沖溶液pH增大而增大;pH為8.10~9.50時,ECL強度隨pH 增大而減小。因此,試驗選擇pH 8.10的磷酸鹽緩沖溶液。
選用pH 8.10磷酸鹽緩沖溶液,考察其濃度在50~90mmol·L-1內(nèi)對ECL強度的影響,結果見圖7。
由圖7可知:當檢測池中磷酸鹽緩沖溶液濃度為70mmol·L-1時,ECL強度達到最大。因此,試驗選擇檢測池中磷酸鹽緩沖溶液的濃度為70mmol·L-1。
圖2 檢測電位對電化學發(fā)光強度的影響Fig.2 Effect of detection potential on ECL intensity
2.2.5 分離電壓和進樣時間
試驗考察了分離電壓在10~18kV內(nèi)對ECL強度的影響。結果表明:當電壓在10~15kV內(nèi)逐漸升高時,ECL強度逐漸增大;當分離電壓高于15kV時,基線噪聲大。因此,試驗選擇分離電壓為15kV。
采用電動進樣,選擇進樣電壓為10kV,考察了進樣時間在5~15s內(nèi)對ECL強度的影響。結果表明:隨著進樣時間的增加,ECL強度逐漸增大;當進樣時間超過10s時,ECL強度增長緩慢且偏離線性、有拖尾現(xiàn)象。因此,試驗選擇進樣時間為10s。
圖6 檢測池中磷酸鹽緩沖溶液酸度對電化學發(fā)光強度的影響Fig.6 Effeet of acidity of PBS in detection cell on ECL intensity
圖7 檢測池中磷酸鹽緩沖溶液濃度對電化學發(fā)光強度的影響Fig.7 Effeet of concentration of PBS in detection cell on ECL intensity
在試驗條件下,石斛堿質量濃度在1.0~100mg·L-1內(nèi)與其峰面積呈線性關系,線性回歸方程為y=374.9 x-85.81(y為ECL信號的峰面積,x為石斛堿的質量濃度),相關系數(shù)為0.999 7。
以3倍信噪比計算方法的檢出限(3S/N)為0.045mg·L-1。
按試驗方法測定金釵石斛樣品中的石斛堿,對照品及樣品的電泳圖見圖8。
圖8 毛細管電泳圖Fig.8 Capillary electrophoresis charts
圖8 曲線3為金釵石斛樣品的電泳圖,圖中只有一個峰,與對照品的出峰時間一致,且加入石斛堿標準溶液后峰信號增強,見圖8曲線2,與石斛堿對照品電泳圖(圖8曲線1)進行比較可知,樣品譜峰為石斛堿。經(jīng)計算,該批金釵石斛中石斛堿質量分數(shù)為0.32%。
取已知含量的樣品提取液,按試驗方法進行加標回收試驗,測定值與回收率結果見表1。
表1 樣品分析結果和回收試驗結果(n=5)Tab.1 Results of tests for sample analysis and recovery(n=5)
本工作采用毛細管電泳-電化學發(fā)光法測定金釵石斛中石斛堿的含量,方法簡單、快速,與藥典規(guī)定的測定方法相比,本方法具有進樣量少、分析速率快、靈敏度高、設備低廉、裝置及操作簡單等優(yōu)點。
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